林祥超,高志強,張鶴曉,張 康,郭金玉,牛建蕊,張樂萃(.青島農業大學動物科技學院,山東青島6609;.北京出入境檢驗檢疫局,北京通州0006;.北京森康生物技術開發有限公司,北京懷柔000;.中國農業科學院蘭州畜牧與獸藥研究所,甘肅蘭州70050)
?
豬圓環病毒2型ORF- 2全基因重組腺病毒的構建與鑒定
林祥超1,高志強2,張鶴曉2,張康3,郭金玉1,牛建蕊4,張樂萃1
(1.青島農業大學動物科技學院,山東青島266109;2.北京出入境檢驗檢疫局,北京通州100026;3.北京森康生物技術開發有限公司,北京懷柔101400;4.中國農業科學院蘭州畜牧與獸藥研究所,甘肅蘭州730050)
摘要:擴增豬圓環病毒2型的ORF-2全基因(702 bp),將目的片段與缺陷型腺病毒穿梭質粒pacAd5 CMV K-NpA連接,構建重組穿梭質粒CMV-ORF-2。將穿梭質粒與骨架質粒pacAd5 9.2-100經限制性內切酶Pac I線性化后共轉染293T細胞,進行細胞內重組。7~15 d后獲重組腺病毒rAd5 CMV-ORF-2與對照組重組腺病毒rAd5 CMV-GFP。使用293細胞進行病毒增殖,對增殖穩定的rAd5 CMV-ORF-2進行鑒定;rAd5 CMV-ORF-2 TCID50為107.5/50 μL,用該代次rAd5 CMV-ORF-2進行PCV-2陽性血清中和試驗,結果表明,重組腺病毒成功,PCV-2陽性血清不能中和重組腺病毒。
關鍵詞:豬圓環病毒2型;ORF-2;缺陷型重組腺病毒
豬圓環病毒(porcine circovirus,PCV),依據病毒的核酸序列差異可將病毒分為豬圓環病毒1型(PCV-1)和豬圓環病毒2型(PCV-2)。PCV-2是引發斷奶仔豬多系統消耗綜合征(post-weaning multisystemic wasting syndrome,PMWS),豬皮炎與腎病綜合征(porcine dermatitis and nephropathy syndrome,PDNS)等疾病的主要病原[1]。在PCV-2型的基因序列中ORF-1和ORF-2是兩個主要閱讀框。ORF-1編碼的Rep蛋白與病毒的復制相關,ORF-2編碼Cap蛋白,是PCV-2的主要結構蛋白,并具有特異性表位,能夠刺激機體產生保護性抗體[2]。因此,PCV-2型的ORF-2 Cap蛋白被廣泛研究應用于PCV-2型的檢測與疫苗的研發[3]。
隨著腺病毒作為載體研究的日益完善,其自身感染宿主細胞廣泛,病毒滴度高,安全性好等優點在基因工程疫苗領域得到廣泛關注[4]。近年來的各項研究表明,缺陷型人5型重組腺病毒載體表達蛋白用于疫苗研制具有良好的應用前景[5]。因此,結合復制缺陷型腺病毒載體,進行PCV-2 Cap蛋白的表達,為進一步研制PCV-2型新型疫苗提供參考數據。
1.1主要材料和試劑PCV-2型陽性病料、PCV-2陽性血清、293T、293細胞株由青島農業大學保存;復制缺陷型腺病毒表達系統RAPAd?CMV Adenoviral Expression System,購自美國Cell Biolabs公司。
1.2引物依據GenBank多組PCV-2序列,設計擴增引物:P1:5′-GGGGTACCATGGCGTATCCAAG GAGGCGTTACC-3′酶切位點Kpn I;P2:5′-CCCAAGCTTTTAGGGTTTAAGTGGGGGGTCTTTA-3′酶切位點Hind III。
1.3T-ORF-2重組質粒的構建提取陽性病料中PCV-2 DNA,使用擴增引物進行ORF-2擴增,擴增產物ORF-2與T-Vector pMD-19連接,構建T-ORF-2重組質粒,對T-ORF-2進行測序。
1.4重組腺病毒的構建、包裝與增殖連接腺病毒穿梭載體pacAd5 CMV K-NpA與ORF-2,獲得重組腺病毒穿梭載體CMV-ORF-2。對CMVORF-2進行雙酶切、測序鑒定后,使用Pac I酶線性化CMV-ORF-2、對照穿梭質粒CMV-GFP及骨架質粒pacAd5 9.2-100,分別轉染293T細胞,轉染7~15 d出現明顯病變,收獲重組腺病毒P0,使用293細胞進行病毒增殖,獲得增殖穩定的重組腺病毒rAd5 CMV-ORF-2與對照組重組腺病毒rAd5 CMV-GFP。
1.5重組腺病毒rAd5 CMV-ORF-2鑒定提取rAd5 CMV-ORF-2、rAd5 CMV-GFP、健康293細胞總RNA,使用擴增引物進行RT-PCR鑒定。
1.6Westen Blot鑒定取rAd5 CMV-ORF-2接毒細胞、rAd5 CMV-GFP接毒細胞和健康293細胞混合SDS Buffer后沸水煮10 min,SDS-PAGE電泳后進行Western Blot鑒定。
1.7TCID50的測定與陽性血清中和試驗取P7 代rAd5 CMV-ORF-2,對照組rAd5 CMV-GFP病毒液進行TCID50測定。根據TCID50測定結果,進行rAd5 CMV-ORF-2、rAd5 CMV-GFP中和試驗。
2.1ORF-2擴增與T-ORF-2雙酶切結果擴增獲得大小為702 bp的目的片段(見圖1),重組穿梭質粒CMV-ORF-2雙酶切得到大小為702 bp的目的片段(見圖2),與預期大小相符。CMV-ORF-2與T-ORF-2測序結果一致,與國內分離株(AY424401.1)核苷酸序列同源性為100%。另外,使用腺病毒載體擴增引物CMV-F進行通測,腺病毒載體序列正確,無移碼、突變、缺失,保證了重組目的片段ORF-2的正確表達。

圖1 ORF- 2基因擴增MI:DL-2 000;1:擴增ORF-2全基因PCR產物;2:陰性對照

圖2 CMV- ORF- 2質粒雙酶切M1:DL-15 000;M2:DL-2 000;1:CMV-ORF-2雙酶切結果;2:PCV-2病毒DNA擴增結果
2.2RT-PCR鑒定結果rAd5 CMV-ORF-2組提取RNA擴增目的條帶與CMV-ORF-2擴增條帶大小一致(702 bp)。rAd5 CMV-GFP與健康293細胞提取RNA無擴增條帶(見圖3),證明重組腺病毒能夠有效感染宿主293細胞,進行有效轉錄。
2.3Western Blot鑒定結果SDS-PAGE試驗未見明顯特意條帶,Western Blot結果可見大小為30kD左右的目的蛋白(見圖4),蛋白大小與PCV-2-ORF-2 Cap蛋白大小相符,因此,目的蛋白能夠真核表達,且具有良好的反應原性。
2.4TCID50測定與中和試驗結果10-6稀釋度全部病變,10-7稀釋度有3孔出現病變,依據Reed-Muench法計算,P7代rAd5 CMV-ORF-2的TCID50為107.5/50 μL。使用多份PCV-2陽性血清進行中和試驗。試驗表明,PCV-2陽性血清不能中和rAd5 CMV-ORF-2。

圖3 RT- PCR鑒定1:rAd5 CMV-GFP組細胞;2:rAd5 CMV-GFP擴增結果;3:CMV-ORF-2擴增產物;M:DL-2 000;4:健康293細胞擴增結果

圖4 Western- Blot鑒定1:rAd5 CMV-ORF-2擴增結果;2:健康293細胞;3:rAd5 CMV-ORF-2接毒細胞;M:蛋白預染Marker
PCV-2-ORF-2編碼PCV-2核衣殼Cap蛋白,是PCV-2的主要免疫性蛋白。因此,在PCV-2診斷與疫苗研制方面具有重要地位[6]。研究表明[7],PCV相同基因型不同毒株間序列同源性大于90%,不同基因型毒株間同源性僅為68%~79%,各個國家存在的PCV也存在較大差異[8]。本試驗中,從陽性病料中分離獲得的PCV-2型與國內分離株(AY424401.1)堿基同源性為100%,但與其他PCV-2毒株還存在差異。
腺病毒包裝與增殖過程中發現,293T細胞的轉染效率較293細胞高,但病毒增殖效率很低,而293細胞的轉染率較低。因此,選擇用293T細胞進行轉染,293細胞進行增殖。試驗表明,效果較好,病毒滴度最高能夠達到108.37/50 μL TCID50。實驗發現,轉染包裝階段細胞代次及細胞狀態至關重要。建議使用代次低,狀態好的細胞進行。在病毒收獲時發現,上清中存在重組腺病毒,且病毒含量低于細胞中病毒含量,因此,在進行病毒增殖過程中,為了能夠更快達到病毒擴增效果,離心收集接毒細胞進行反復凍融作為母液進行前期下一代擴增,在病毒毒力穩定后,僅收集細胞毒量與收集細胞與培養基混合液毒力差別不大。
在TCID50測定中,病毒在10-8稀釋度時已不能引起細胞病變,但在相同稀釋度的對照組rAd5 CMV-GFP,仍能夠觀察到有熒光,因此在病毒濃度或含量較低的情況下,可使用建立的熒光定量PCR方法進行鑒定(此方法待發表),在10-9稀釋度時仍能準確檢測出病毒,適合病毒增殖初期時的檢測,也可以比較直觀的觀察病毒增殖情況。
使用PCV-2陽性血清不能中和重組腺病毒,這可能與腺病毒表達的靶蛋白不存在于重組病毒粒子表面有關,避免了母源抗體對PCV-2重組疫苗免疫效果的干擾。近年來,腺病毒已經廣泛應用于人類基因治療中[5],并且在自然條件下豬體內不存在針對人5型腺病毒載體的特異性抗體,避免其他免疫原對機體產生的刺激和影響。因此,腺病毒作為疫苗載體及相關診斷方法的研究將有良好的前景與優勢。
參考文獻:
[1] Lekcharoensuk P,Morozov I,Paul P S,et al.Epitope mapping of the major capsid protein of type2 porcine circovirus(PCV2)by using chimeric PCV1 and PCV2[J].J Virol,2004,78:8135-8145.
[2] Jizong Li,Tianqi Yu,Xiaobo Wang,et al.Comparative efficacy of experimental inactivated and live- attenuated chimeric porcine circovirus(PCV)1-2b vaccines derived from PCV1 and PCV2b isolates originated in China[J].Virology journal,2015,12:113-124. [3] Kamstrup S,Barfoed A M,Frimann T H,et al . Immunisation against PCV2 structural protein by DNA vaccination of mice[J] . Vaccine,2004,22:1358-1361.
[4] Basavaraj Binjawadag,Varun Dwived,Cordelia Manickam,et al. Adjuvanted poly(lactic-co-glycolic)acid nanoparticle-entrapped inactivated porcine reproductive and respiratory syndrome virus vaccine elicits cross-protective immune response in pigs[J] .International Journal of Nanomedicine,2014,9:679-694.
[5] Pogranichnyy R M,Yoon K J,Harms P A,et al.Characterization of immune response of young pigs to porcine circovirus type 2 infection[J].Viral immunol,2000,13:143-153.
[6] Liu J,Chen I,Du Q,et al.The ORF3 protein of porcine circovirus type 2 is involved in viral pathogenesis in vivo[J] . J Virol,2006,80(10):5065-5073.
[7] Nawagitgul P,Morozov I,Bolin S R,et al.Open reading frame 2 of porcine circovirus type 2 encodes a major capsid protein[J] . J Gen Virol,2000,81(Pt 9):2281-2287.
[8] Pi?eyro PE1,Kenney SP2,Giménez-Lirola LG,et al.Expression of antigenic epitopes of porcine reproductive and respiratory syndrome virus(PRRSV)in a modified live-attenuated porcine circovirus type 2(PCV2)vaccine virus(PCV1-2a)as a potential bivalent vaccine against both PCV2 and PRRSV[J] . Virus Research,2015,210:154-164.
Construction and Identification of Recombinant Adenovirus Containing the ORF- 2 Complete Geneof Type2 Porcine Circovirus
LIN Xiang-chao1,GAO Zhi-qiang2,ZHANG He-xiao2,ZHANG Kang3,GUO Jin-yu1,NIU Jian-rui4,ZHANG Le-cui1
(1.Animal Science and Technology College,Qingdao Agricultural University,Qingdao 266109,China;2.Beijing Entry-exit Inspection and Quarantine Bureau,Beijing 100026,China;3.Beijing Senkang Biotech Development Co.,Ltd,Beijing 101400,China;4.Lanzhou Institute of Husbandry and Pharmaceutical Sciences of CAAS,Lanzhou 730050,China)
Abstract:The 702 bp ORF 2 of PCV-2 was amplified and cloned into the defective adenovirus shuttle plasmid pacAd5 CMV K-NpA to construct recombinant shuttle plasmid CMV-ORF2.The shuttle plasmid and backbone plasmid pacAd5 9.2-100 were linearized using the restriction enzyme Pac I,and were then cotransfect into 293T cells.The ORF2 complete genome recombinant adenovirus rAd5 PCV-2 and the control CMV-GFP recombinant adenovirus rAd5 were obtained 7 to 15 days later.The recombinant viruses were propagated and identified in 293 cells . The recombinant viruses were stable in propagation and the TCID50of rAd5 CMV-ORF2 was 107.5/50 μL.The PCV-2 positive sera and rAd5 CMV-ORF2 were used in neutralization test.The results showed that the construction succeeded and PCV-2 positive sera could not neutralize the recombinant adenovirus.
Key words:Porcine circovirus type 2;ORF-2;Defective recombinant adenovirus
Corresponding author:ZHANG Le-cui
通訊作者:張樂萃,E-mail:lczhang@qau.edu.cn
作者簡介:林祥超(1989-),女,碩士生,研究方向為動物病毒學,E-mail:muyangzhao@126.com
基金項目:質檢公益性行業科研項目(201310253)
收稿日期:2015-08-26
中圖分類號:S852.65+1
文獻標志碼:A
文章編號:0529- 6005(2016)01- 0024- 03