999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

HIV腦內存儲庫
——功能性治愈的另一障礙

2016-03-25 09:10:41孫永濤
傳染病信息 2016年6期
關鍵詞:系統(tǒng)

康 文,孫永濤

HIV腦內存儲庫
——功能性治愈的另一障礙

康 文,孫永濤

減小HIV感染者體內病毒儲存庫的規(guī)模是實現(xiàn)HIV功能性治愈的基礎?!癝hock and kill”(趕盡殺絕)策略首先激活靜息的病毒儲存庫,進而通過強化的聯(lián)合抗逆轉錄病毒治療或聯(lián)合治療性免疫以清除這些病毒儲存庫。HIV可在中樞神經系統(tǒng)內的血管旁巨噬細胞、小膠質細胞和星狀細胞形成潛伏感染,這些腦內病毒儲存庫也須要被清除。然而,中樞神經系統(tǒng)是隔離于外周其他部位的獨立的HIV藥理學避難所。不但如此,腦內潛伏感染的細胞也與體內主要的病毒儲存庫記憶性T細胞不同。由于大腦的獨特環(huán)境,使得清除或減少這些腦內病毒儲存庫十分困難。本文將就目前對于中樞神經系統(tǒng)病毒儲存庫的認識加以介紹,對清除腦內儲存庫所面臨的困難進行討論,并對清除病毒儲存庫的潛在方法進行總結,為實現(xiàn)HIV功能性治愈提供一定的思路與方法。

人免疫缺陷病毒;功能性治愈;腦內存儲庫;抗逆轉錄病毒治療;潛伏感染激活劑;治療性免疫

盡管聯(lián)合抗逆轉錄病毒治療(combined antiretroviral therapy, cART)可以長效地抑制體內HIV,重建機體的免疫功能,極大地延長了HIV感染者的壽命。但是,HIV感染者須要終生接受cART,由此帶來諸多新的問題,如病毒耐藥,患者衰老引起的非AIDS相關疾?。ǚ茿IDS性腫瘤、心血管疾病、神經認知功能紊亂等)的發(fā)生率增加等,給個人和社會公共衛(wèi)生體系增加了沉重的負擔[1]。因此,學者們一直都在尋找HIV根除或功能性治愈的方法。2012年國際艾滋病協(xié)會(International AIDS Society, IAS)發(fā)起了“邁向HIV治愈”的行動,隨后發(fā)生的“密西西比嬰兒”“波士頓病人”復發(fā)等事件打擊了人們的信心,但更加鞭策全世界的科學家們進一步地了解HIV的生物學特征、結構學特征和動力學特征,在此基礎上找出它的致命弱點,進行針對性開發(fā)靶向療法,為邁向HIV治愈打下堅實基礎。2016年,IAS再次向全球科學家發(fā)起了“邁向HIV治愈2016”戰(zhàn)略[2],其中關于如何耗竭潛伏感染的細胞儲存庫仍然是研究的重要環(huán)節(jié)之一。

目前已知cART不能徹底清除HIV,絕大部分cART藥物僅對復制中的病毒有效,一旦停藥HIV RNA會很快反彈。HIV以前病毒的形式持久地潛伏在如中央記憶型T細胞、造血干細胞、樹突狀細胞和單核-巨噬細胞源性細胞等一些長壽細胞中,形成病毒儲存庫。而這些細胞的組織分布各異,包括血液、骨髓、大腦、消化道相關淋巴組織、生殖道等[3],徹底清除各個組織中的前病毒極為困難。

血腦屏障和腦內特殊類型的細胞構成了大腦獨立于外周組織、器官的特殊環(huán)境。一方面外界藥物難以透過血腦屏障;另一方面腦內形成免疫豁免,HIV可在腦中低水平復制并獨立進化[4]。HIV腦內儲存庫成為HIV耐藥和復發(fā)的源頭之一。本文將對HIV腦內儲存庫的認識現(xiàn)狀進行回顧,并對如何耗竭這些病毒儲存庫加以探討。同時,在激活病毒儲存庫時,須要關注由此可能帶來的不良反應,如加重HIV相關神經認知功能紊亂。

1 HIV腦內儲存庫

HIV儲存庫是一群受HIV感染的長壽細胞,包括靜息CD4+T細胞、骨髓干細胞、巨噬細胞、星狀細胞等,靜息CD4+T細胞是其主要代表[1]。HIV以具有復制能力的HIV DNA形式整合入受感染的細胞染色體并潛伏其中[5]。HIV在感染的早期可通過被感染的單核細胞以“特洛伊木馬”的方式入侵中樞神經系統(tǒng),這些被感染的單核細胞穿越血腦屏障后分化成熟為腦內定居的巨噬細胞,通過其分泌的趨化因子軸系,繼續(xù)吸引更多的單核細胞入腦。這些細胞通過細胞間直接接觸進一步感染腦內定居的血管旁巨噬細胞、小膠質細胞和星狀細胞。這三種細胞均是長壽細胞,半壽期為數(shù)月甚至數(shù)年。這些細胞均有較高的被感染率,如作為腦內最主要細胞類型——星狀細胞,其受感染率可高達19%。這些細胞HIV潛伏感染形成的原因復雜,表觀遺傳調控等機制參與其中[6-7]。

由于倫理學和檢測技術的限制,無法對活體進行腦組織取材,不可能直接評價人的大腦內受感染的細胞產生具有復制能力的病毒的效能。然而一些證據(jù)間接證明中樞神經系統(tǒng)可作為HIV的儲存庫。通過對長期接受cART并獲得病毒學應答的感染者的尸檢發(fā)現(xiàn),其腦內可以檢測到HIV DNA[6]。在穩(wěn)定接受cART的HIV感染者中,約10%~23%在外周血中檢測不到HIV,但在腦脊液中仍可檢到,這一現(xiàn)象被稱為腦脊液病毒逃逸[8-9],并且常伴有神經學損傷。研究發(fā)現(xiàn),長期接受cART的患者,其腦脊液中新喋呤以及可溶性CD14、IL-6、IL-8、CCL2等單核細胞免疫激活的標志物也會升高[10-11]。這些炎癥反應說明腦內受感染的細胞仍然存在低水平的HIV復制[10]。神經系統(tǒng)影像學檢查也間接證明接受cART的患者腦內存在慢性炎癥[12]。另外,通過新的高靈敏度技術,如單拷貝檢測,使得那些原本在外周血和腦脊液中已檢測不到HIV RNA的長期接受cART的患者和精英控制者,其腦脊液中再度檢測到HIV RNA[13]。為模擬接受cART的HIV感染者的情況,目前已建立了恒河猴、大鼠、人源化小鼠等多種動物模型,證明其腦內存在HIV RNA和HIV蛋白。這些證據(jù)均表明大腦可以作為HIV儲存庫。

由于血腦屏障的存在,使得中樞神經系統(tǒng)形成隔絕于外周其他組織器官的物理微環(huán)境,血腦屏障的完整性直接影響了中樞神經系統(tǒng)的功能。同時,中樞神經系統(tǒng)還具有獨特的免疫微環(huán)境,發(fā)揮主要作用的是由血管旁巨噬細胞和小膠質細胞參與的固有免疫應答,其次才是適應性免疫應答,二者共同構成中樞神經系統(tǒng)內的免疫監(jiān)視[14]。正是以上兩個特征,決定了中樞神經系統(tǒng)是實現(xiàn)HIV功能性治愈的一大障礙。

首先,大部分抗病毒藥物很難透過血腦屏障,對HIV來說形成了天然藥物屏障,由此增加了病毒耐藥突變的發(fā)生風險[15];其次,中樞神經系統(tǒng)內的病毒較少與外周發(fā)生遺傳信息交換,而且HIV毒株嗜性也與外周的不盡相同,外周主要是嗜CD4+T細胞的毒株,而腦內則主要是嗜單核/巨噬細胞的毒株[16]?,F(xiàn)有的抗病毒藥物作用機制主要是針對T細胞內的病毒,而對腦內的病毒作用效果明顯不如前者。通過對HIV-1 env基因和啟動子測序研究證實腦內存在HIV的突變體[17]。啟動子區(qū)的突變對腦內HIV潛伏感染的形成和維持至關重要。這不但提示腦內潛伏感染與外周CD4+T細胞中潛伏感染的形成機制不同,也影響到潛伏感染激活劑(latency-reversing agents, LRA)對腦內病毒儲存庫的激活效果[1,18];再次,清除腦內病毒儲存庫的另一問題是發(fā)現(xiàn)那些被低估的HIV腦脊液逃逸現(xiàn)象。如前所述,在一部分精英控制者的腦脊液中原本用常規(guī)方法檢測不到病毒核酸,但用高靈敏度的新方法仍可檢測到[13],這要求我們在研究清除腦內病毒儲存庫時一定要采用高靈敏的方法去檢測腦脊液中的HIV RNA;最后,在使用cART聯(lián)合LRA策略進行清除病毒儲存庫時,由于cART不能徹底控制腦內的被激活的病毒,還有可能誘導病毒耐藥的發(fā)生。

總之,由于大腦特殊的微環(huán)境,腦內病毒儲存庫可產生耐藥毒株并不斷補充到體循環(huán)中,因此我們強調設法徹底清除腦內儲存庫至關重要。同時,對接受cART治療的患者應采用高靈敏度的方法定期檢測腦脊液中HIV RNA,以更好的評估腦內病毒含量及新療法的效果[19]。

2 清除HIV腦內儲存庫所面臨的困難

“Shock and kill”(趕盡殺絕)策略是目前HIV功能性治愈研究的主要策略。該策略首先使用LRA或聯(lián)合其他方法設法激活HIV儲存庫中的前病毒DNA復制,把前病毒從靜息細胞中驅趕出來;再通過聯(lián)合強化cART方案和免疫療法將新產生的HIV RNA殺滅,逐漸縮小甚至耗竭病毒儲存庫[20]。如果儲存庫被耗竭或足夠小,且機體的免疫系統(tǒng)足以控制HIV,即可實現(xiàn)功能性治愈。先前的研究已證實,使用LRA或聯(lián)合其他方法可以顯著的激活靜息CD4+T細胞中潛伏的HIV DNA[21]。一些方法已經進入到臨床試驗階段[22]。但是,這些方法的有效性不僅要在靜息CD4+T細胞進行評估,更要在包括腦內儲存庫在內的機體其他部位的儲存庫中加以評價。然而,這一策略對腦內儲存庫的效果可能不盡人意。

要想將潛伏感染的HIV從不同細胞儲存庫中趕出來,首先要了解HIV在不同細胞中形成潛伏感染的機制。然而這些形成機制并不相同。例如,在CD4+T細胞中,LSD1通過其自身酶活性參與HIV轉錄激活;但在小膠質細胞中,LSD1卻通過募集多種因子錨定在啟動子區(qū)進而抑制HIV轉錄,為潛伏感染的建立發(fā)揮重要作用[23]。LSD1在不同細胞中對HIV潛伏感染的雙向調節(jié)作用說明HIV潛伏感染的形成機制復雜,因此須要有針對性地對不同的病毒儲存庫研發(fā)特異性的藥物。

另一方面,如前所述,HIV腦內儲存庫的特點也增加了通過“趕盡殺絕”策略實現(xiàn)功能性治愈的難度。第一,中樞神經系統(tǒng)被血腦屏障隔離,限制了藥物的通透性,因此限制了使用cART以清除再激活的HIV RNA的可能。第二,腦內的HIV潛伏感染的細胞類型主要是星狀細胞和腦內定居的巨噬細胞,而現(xiàn)有藥物極少能激活單核/巨噬細胞中的前病毒[24],cART對星狀細胞中HIV復制的作用不明確,甚至可能有神經毒性[25]。第三,中樞神經系統(tǒng)被認為是免疫豁免部位,因此,在腦內設法通過激活細胞毒性T細胞來清除腦內病毒儲存庫的方法很困難,甚至對神經細胞有害。第四,現(xiàn)有的激活方法不能阻斷病毒轉錄,通過LRA以激活腦內病毒儲存庫的方法可能導致諸如Tat和gp120等神經毒性蛋白的合成增加,而這些病毒蛋白是引發(fā)HIV相關神經認知功能紊亂的主要因素,同時,伴隨病毒的再激活,隨之而來的是巨噬細胞及小膠質細胞的活化,這進一步加重了神經系統(tǒng)炎癥反應。

3 如何克服這些困難

想要將腦內的HIV儲存庫徹底清除極為困難,可能的方法是模擬精英控制者,盡可能地減小病毒儲存庫的規(guī)?!,F(xiàn)已證實,極早期啟動cART可以有效地限制病毒儲存庫的規(guī)模。而對于那些早已失去極早期治療機會的感染者,應尋求其他途徑。在腦內實現(xiàn)功能性治愈的途徑主要有以下4點。

3.1 研發(fā)針對中樞神經系統(tǒng)細胞類型的LRA “趕盡殺絕”策略中核心是開發(fā)對中樞神經系統(tǒng)內細胞有效的LRA?,F(xiàn)有的LRA基本上都是針對激活CD4+T細胞,而腦內儲存庫的形成機制與CD4+T細胞中的不同[26]。由此造成LRA對中樞神經系統(tǒng)細胞的激活效果不一。先前研究曾在U1單核細胞系及原代星狀細胞和巨噬細胞中檢測了不同組蛋白去乙?;敢种苿┑募せ钚Ч鸞18,26-27]。初步研究結果表明,包括帕比司他和JQ1在內的許多LRA在治療劑量時相對無毒并能有效的激活HIV。而另一些LAR,如雙硫侖和伏立諾他,其治療劑量對CD4+T細胞激活有效,但對中樞神經系統(tǒng)細胞無效[18,26]。蛋白激酶C(protein kinase C, PKC)激活劑bryostatin-1是一種非常有潛力的LRA,它既能透過血腦屏障,又能激活腦內HIV的兩個主要靶細胞(小膠質細胞和星狀細胞)內PKC通路[21,28]。Bryostatin-1治療阿爾茲海默病的臨床前期試驗及治療腫瘤的臨床試驗目前正在進行[29]。研究人員也測試了多種LRA聯(lián)合治療的協(xié)同效果[21]。使用小劑量的多種LRA聯(lián)合治療可能降低由單一藥物大劑量治療所帶來的不良反應[30]。一項隊列研究通過對腦脊液的炎性標志物如新蝶呤、C反應蛋白和IP-10的檢測表明,帕比司他無明顯的中樞神經系統(tǒng)不良反應,有潛力作為腦內HIV細胞儲存庫轉錄激活劑[31]。

3.2 開發(fā)靶向于HIV轉錄環(huán)節(jié)的藥物 如前所述,一旦腦內的HIV被激活,可導致病毒的神經毒性蛋白Tat、gp120等合成增加,可加重神經損傷?,F(xiàn)階段尚無針對HIV轉錄環(huán)節(jié)的cART 藥物[32]。開發(fā)能靶向于HIV轉錄環(huán)節(jié)的方案至關重要[32-33]。具體說來,抑制HIV轉錄的方案針對兩個主要靶點:NF-κB和病毒轉錄因子Tat。NF-κB環(huán)節(jié)是炎癥反應發(fā)生的核心環(huán)節(jié),因此以NF-κB為靶點的化合物、siRNA等不但能抑制HIV轉錄,還可能減輕腦內的慢性炎癥反應[34-35]。Tat是HIV轉錄的反式激活因子,不但可激活HIV轉錄,還具有直接和間接的神經毒性,促進HIV相關神經認知功能紊亂的發(fā)生和發(fā)展。因此靶向于Tat的治療措施也可能發(fā)揮重要作用。目前發(fā)現(xiàn)一些海洋生物和植物提取物等天然物質及其他合成分子可能具有抗Tat的作用[36]。例如,雙脫氧皮質抑素A是一種從海綿中提取出的天然生物堿,被認為具有抗Tat的作用,可以抑制HIV的轉錄[37]。另一種從雷公藤中分離提取的雷公藤甲素發(fā)現(xiàn)也具有拮抗Tat的作用,其可通過增加Tat的蛋白酶體降解的方式抑制HIV的復制和轉錄[38]??筎at的單鏈抗體:Fc融合蛋白可直接中和Tat,發(fā)揮抑制HIV復制和神經保護的作用[39]。DING蛋白(DING proteins, pDINGs)是一種廣泛存在于細菌、植物和動物細胞中具有高度一致性的DINGGG-序列的30~40 KDa蛋白家族。研究發(fā)現(xiàn)pDINGs也具有抑制HIV轉錄的作用,磷酸化的pDINGs 是一種神經保護因子,可降低HIV導致的神經炎性反應[40]。我們相信隨著對這些分子化合物作用機制的深入研究,并通過新的信息工程技術、高通量篩選技術、計算機輔助設計、組合化學等新技術進行篩選、設計,將進一步提高新藥的開發(fā)能力。

3.3 提高藥物向中樞神經系統(tǒng)和腦細胞內的遞送效能 另一個須要重視的問題是如何透過血腦屏障將藥物遞送至腦內,并且能靶向于腦內的病毒宿主細胞巨噬細胞和星狀細胞。增加腦內藥物滲透,必須設法提高藥物的生物利用度和組織分布。其中重要的方法是研發(fā)藥物控釋載體,如脂質體、分枝狀聚合物和微膠粒等,通過載體控釋技術來遞送藥物至中樞神經系統(tǒng)并加以釋放。納米藥物聚合物具有更加出色的組織分布能力,為將來清除各種組織中的HIV儲存庫帶來了希望[41-42]。這些方法不但增加了腦內藥物的滲透能力,也增加了藥物在星狀細胞、小膠質細胞、巨噬細胞中的分布。針對巨噬細胞內的HIV,PI3K/Akt阻斷劑、碳水化合物結合劑、siRNAs等方法也須進一步研究[43-44]。

3.4 研發(fā)免疫療法 目前研究發(fā)現(xiàn),通過LRA激活HIV儲存庫的方式并不能直接減小病毒儲存庫,仍須通過宿主的免疫活化來清除被激活的儲存庫,然而宿主的免疫激活不足以完成這一目標[45]。因此須要研發(fā)新的免疫治療策略來輔助減小病毒儲存庫[46]。CTL的活化有助于清除HIV感染的靜息CD4+T細胞。早先的動物研究也表明CTL在清除腦內HIV感染的巨噬細胞中發(fā)揮重要作用。另外,CD8+T細胞應答也對控制腦內弓形體感染至關重要[47]。然而,過度的CTL活化卻可加重腦內炎癥反應。如何適度控制CTL的免疫激活,使其既能達到免疫清除目的又盡量避免增加腦內的炎癥反應,是免疫治療策略的難點和挑戰(zhàn)[48]。另一種免疫治療策略是嘗試聯(lián)合抗HIV廣譜中和抗體,通過抗體依賴性細胞介導的細胞毒作用實現(xiàn)病毒儲存庫的清除。目前一些在人源化小鼠中進行的研究結果表明這一途徑可能有較好的潛力[49]。補體激活調節(jié)因子CD59的拮抗劑可通過增強中和抗體和非中和抗體的抗體依賴性補體介導的溶細胞作用清除HIV潛伏感染的細胞[50]。

綜上所述,實現(xiàn)HIV功能性治愈的前提是最大限度的減小包括腦內儲存庫在內的各種形式的HIV儲存庫??s小或清除腦內儲存庫的基礎策略仍然是基于LRA聯(lián)合cART的“趕盡殺絕”策略,通過LRA激活靜息儲存庫中的前病毒并聯(lián)合cART加以清除,這一過程需要更加有效的免疫治療策略加以輔助。然而由于大腦的獨特性,使得腦內的藥理環(huán)境、免疫環(huán)境和病毒潛伏感染的細胞類型與外周截然不同。因此須要針對腦內的特殊細胞類型選擇靶向性的LRA和cART藥物。靶向于HIV轉錄環(huán)節(jié)的分子藥物也是未來新藥研究的方向,這對阻止因潛伏感染HIV前病毒激活所帶來的中樞神經系統(tǒng)炎癥反應的不良反應至關重要。納米技術的研發(fā)將有助于增強藥物的腦內遞送和在腦內細胞的釋放。

[1]康文,汪春付,孫永濤. 實現(xiàn)HIV功能性治愈的策略和挑戰(zhàn)[J].傳染病信息,2014,27(6):328-332.

[2]Deeks SG, Lewin SR, Ross AL, et al. International AIDS society global scientific strategy: towards an HIV cure 2016[J]. Nat Med, 2016, 22(8):839-850.

[3]Bruner KM, Hosmane NN, Siliciano RF. Towards an HIV-1 cure: measuring the latent reservoir[J]. Trends Microbiol, 2015, 23(4):192-203.

[4]Clifford DB, Ances BM. HIV-associated neurocognitive disorder[J]. Lancet Infect Dis, 2013, 13(11):976-986.

[5]Avettand-Fenoel V, Hocqueloux L, Ghosn J, et al. Total HIV-1 DNA, a marker of viral reservoir dynamics with clinical implications[J]. Clin Microbiol Rev, 2016, 29(4):859-880.

[6]Desplats P, Dumaop W, Smith D, et al. Molecular and pathologic insights from latent HIV-1 infection in the human brain[J]. Neurology, 2013, 80(15):1415-1423.

[7]Narasipura SD, Kim S, Al-Harthi L. Epigenetic regulation of HIV-1 latency in astrocytes[J]. J Virol, 2014, 88(5):3031-3038.

[8]Brew BJ, Robertson K, Wright EJ, et al. HIV eradication symposium: will the brain be left behind[J]. J Neurovirol, 2015, 21(3):322-334.

[9]Ferretti F, Gisslen M, Cinque P, et al. Cerebrospinal fluid HIV escape from antiretroviral therapy[J]. Curr HIV/AIDS Rep, 2015, 12(2):280-288.

[10]Eden A, Nilsson S, Hagberg L, et al. Asymptomatic cerebrospinal fluid HIV-1 viral blips and viral escape during antiretroviral therapy: a Longitudinal study[J]. J Infect Dis, 2016, pii: jiw454.

[11]Kamat A, Lyons JL, Misra V, et al. Monocyte activation markers in cerebrospinal fluid associated with impaired neurocognitive testing in advanced HIV infection[J]. J Acquir Immune Defic Syndr, 2012, 60(3):234-243.

[12]Harezlak J, Cohen R, Gongvatana A, et al. Predictors of CNS injury as measured by proton magnetic resonance spectroscopy in the setting of chronic HIV infection and CART[J]. J Neurovirol, 2014, 20(3):294-303.

[13]Dahl V, Peterson J, Fuchs D, et al. Low levels of HIV-1 RNA detected in the cerebrospinal fluid after up to 10 years of suppressive therapy are associated with local immune activation[J]. AIDS, 2014, 28(15):2251-2258.

[14]Romo-González T, Chavarría A, Pérez-H J. Central nervous system: a modified immune surveillance circuit[J]. Brain Behav Immun, 2012, 26(6):823-829.

[15]Eisfeld C, Reichelt D, Evers S, et al. CSF penetration by antiretroviral drugs[J]. CNS Drugs, 2013, 27(1):31-55.

[16]Joseph SB, Arrildt KT, Sturdevant CB, et al. HIV-1 target cells in the CNS[J]. J Neurovirol, 2015, 21(3):276-289.

[17]Gorry PR, Francella N, Lewin SR, et al. HIV-1 envelope-receptor interactions required for macrophage infection and implications for current HIV-1 cure strategies[J]. J Leukoc Biol, 2014, 95(1):71-81.

[18]Gray LR, On H, Roberts E, et al. Toxicity and in vitro activity of HIV-1 latency-reversing agents in primary CNS cells[J]. JNeurovirol, 2016, 22(4):455-463.

[19]Almeida SM. Cerebrospinal fluid analysis in the HIV infection and compartmentalization of HIV in the central nervous system[J]. Arq Neuropsiquiatr, 2015, 73(7):624-629.

[20]Kumar A, Darcis G, Van Lint C, et al. Epigenetic control of HIV-1 post integration latency: implications for therapy[J]. Clin Epigenetics, 2015, 7:103.

[21]Darcis G, Kula A, Bouchat S, et al. An in-depth comparison of latency-reversing agent combinations in various in iitro and ex vivo HIV-1 latency models identified bryostatin-1+JQ1 and ingenol-B+JQ1 to potently reactivate viral gene expression[J]. PLoS Pathog, 2015, 11(7):e1005063.

[22]Spivak AM, Planelles V. HIV-1 eradication: early trials (and Tribulations)[J]. Trends Mol Med, 2016, 22(1):10-27.

[23]Le Douce V, Colin L, Redel L, et al. LSD1 cooperates with CTIP2 to promote HIV-1 transcriptional silencing[J]. Nucleic Acids Res, 2012, 40(5):1904-1915.

[24]Abbas W, Tariq M, Iqbal M, et al. Eradication of HIV-1 from the macrophage reservoir: an uncertain goal[J]. Viruses, 2015, 7(4):1578-1598.

[25]Vivithanaporn P, Asahchop EL, Acharjee S, et al. HIV protease inhibitors disrupt astrocytic glutamate transporter function and neurobehavioral performance[J]. AIDS, 2016, 30(4):543-552.

[26]Gray LR, Cowley D, Welsh C, et al. CNS-specific regulatory elements in brain-derived HIV-1 strains affect responses to latency-reversing agents with implications for cure strategies[J]. Mol Psychiatry, 2016, 21(4):574-584.

[27]Chauhan A. Enigma of HIV-1 latent infection in astrocytes: an in-vitro study using protein kinase C agonist as a latency reversing agent[J]. Microbes Infect, 2015, 17(9):651-659.

[28]Diaz L, Martinez-Bonet M, Sanchez J, et al. Bryostatin activates HIV-1 latent expression in human astrocytes through a PKC and NF-κB-dependent mechanism[J]. Sci Rep, 2015, 5:12442.

[29]Kollár P1, Rajchard J, Balounová Z, et al. Marine natural products: bryostatins in preclinical and clinical studies[J]. Pharm Biol, 2014, 52(2):237-242.

[30]Laird GM, Bullen CK, Rosenbloom DI, et al. Ex vivo analysis identifies effective HIV-1 latency-reversing drug combinations[J]. J Clin Invest, 2015, 125(5):1901-1912.

[31]Rasmussen TA, Tolstrup M, Moller HJ, et al. Activation of latent human immunodeficiency virus by the histone deacetylase inhibitor panobinostat: a pilot study to assess effects on the central nervous system[J]. Open Forum Infect Dis, 2015, 2(1):ofv037.

[32]Le Douce V, Ait-Amar A, Far FF, et al. Improving combination antiretroviral therapy by targeting HIV-1 gene transcription[J]. Expert Opin Ther Targets, 2016, 20(11):1311-1324.

[33]Mousseau G, Mediouni S, Valente ST. Targeting HIV transcription: the quest for a functional cure[J]. Curr Top Microbiol Immunol, 2015, 389:121-145.

[34]Suzuki K, Ahlenstiel C, Marks K, et al. Promoter targeting RNAs: unexpected contributors to the control of HIV-1 transcription[J]. Mol Ther Nucleic Acids, 2015, 4:e222.

[35]Pateras I, Giaginis C, Tsigris C, et al. NF-kappaB signaling at the crossroads of inflammation and atherogenesis: searching for new therapeutic links[J]. Expert Opin Ther Targets, 2014, 18(9): 1089-1101.

[36]Kurapati KR, Atluri VS, Samikkannu T, et al. Natural products as anti-HIV agents and role in HIV-associated neurocognitive disorders (HAND): a brief overview[J]. Front Microbiol, 2015, 6: 1444.

[37]Mousseau G, Valente ST. Didehydro-cortistatin A: a new player in HIV-therapy[J]. Expert Rev Anti Infect Ther, 2016, 14(2):145-148.

[38]Wan Z, Chen X. Triptolide inhibits human immunodeficiency virus type 1 replication by promoting proteasomal degradation of Tat protein[J]. Retrovirology, 2014, 11:88.

[39]Kang W, Marasco WA, Tong HI, et al. Anti-tat Hutat2:Fc mediated protection against tat-induced neurotoxicity and HIV-1 replication in human monocyte-derived macrophages[J]. J Neuroinflammation, 2014, 11:195.

[40]Darbinian N, Khalili K, Amini S. Neuroprotective activity of pDING in response to HIV-1 Tat[J]. J Cell Physiol, 2014, 229(2):153-161.

[41]Das MK, Sarma A, Chakraborty T. Nano-ART and NeuroAIDS[J]. Drug Deliv Transl Res, 2016, 6(5):452-472.

[42]Nair M, Jayant RD, Kaushik A, et al. Getting into the brain: potential of nanotechnology in the management of NeuroAIDS[J]. Adv Drug Deliv Rev, 2016, 103:202-217.

[43]Ramana LN, Anand AR, Sethuraman S, et al. Targeting strategies for delivery of anti-HIV drugs[J]. J Control Release, 2014, 192:271-283.

[44]Kumar A, Herbein G. The macrophage: a therapeutic target in HIV-1 infection[J]. Mol Cell Ther, 2014, 2:10.

[45]Margolis DM, Garcia JV, Hazuda DJ, et al. Latency reversal and viral clearance to cure HIV-1[J]. Science, 2016, 353(6297):aaf6517.

[46]史繼靜,張昕,徐若男,等. 細胞治療與AIDS功能性治愈[J].傳染病信息,2015,28(6):344-347.

[47]Landrith TA, Harris TH, Wilson EH. Characteristics and critical function of CD8+T cells in the Toxoplasma-infected brain[J]. Semin Immunopathol, 2015, 37(3):261-270.

[48]Brockman MA, Jones RB, Brumme ZL. Challenges and opportunities for T-cell-mediated strategies to eliminate HIV reservoirs[J]. Front Immunol, 2015, 6:506.

[49]Lee WS, Parsons MS, Kent SJ, et al. Can HIV-1-specific ADCC assist the clearance of reactivated latently infected cells [J]. Front Immunol, 2015, 6:265.

[50]Yang K, Lan J, Shepherd N, et al. Blockage of CD59 function restores activities of neutralizing and nonneutralizing antibodies in triggering antibody-dependent complement-mediated lysis of HIV-1 virions and provirus-activated latently infected cells[J]. J Virol, 2015, 89(18):9393-9406.

(2016-11-15 收稿 2016-12-25 修回)

(責任編委 張玲霞 本文編輯 閆晶晶)

The neglected brain reservoirs: a barrier to an HIV cure

KANG Wen, SUN Yong-tao*
Department of Infectious Diseases, Tangdu Hospital, The Fourth Military Medical University, Xi'an, Shaanxi 710038, China

Reducing the size of virus reservoirs is fundamental for HIV positive patients to achieve an HIV functional cure. The〝shock and kill〞strategy enables the reactivation of latent reservoirs, which will be followed by an intensive combined antiretroviral therapy (cART) or therapeutic immunization to clear the reservoirs. HIV can latently infected cells such as perivascular macrophages, microglial cells, and astrocytes in the central nervous system (CNS), and this brain reservoirs need to be eliminated. However, the CNS is a pharmacological sanctuary isolated from other parts of the body. In addition, latently infected cells in the brain are rather different from the main memory T-cells in the virus reservoirs. So it might be difficult to eliminate or reduce brain reservoirs since the CNS has these unique characteristics. In order to provide some ideas and methods for the realization of functional cure of HIV, this review will give an introduction on the existing understanding of viral reservoirs in the CNS, discuss several limitations to the eradication of brain reservoirs, and conclude the potential therapeutic implications of purging brain reservoirs.

HIV; functional cure; brain reservoir; antiretroviral therapy; latency-reversing agents; therapeutic immunization

R512.91

A

1007-8134(2016)06-0324-05

10.3969/j.issn.1007-8134.2016.06.002

國家“十二五”科技重大專項(2014ZX10001002);國家自然科學基金(8150050123)

710038 西安,第四軍醫(yī)大學唐都醫(yī)院傳染科(康文、孫永濤)

孫永濤,E-mail: yongtaos@hotmail.com

*Corresponding author, E-mail: yongtaos@hotmail.com

猜你喜歡
系統(tǒng)
Smartflower POP 一體式光伏系統(tǒng)
WJ-700無人機系統(tǒng)
ZC系列無人機遙感系統(tǒng)
北京測繪(2020年12期)2020-12-29 01:33:58
基于PowerPC+FPGA顯示系統(tǒng)
基于UG的發(fā)射箱自動化虛擬裝配系統(tǒng)開發(fā)
半沸制皂系統(tǒng)(下)
FAO系統(tǒng)特有功能分析及互聯(lián)互通探討
連通與提升系統(tǒng)的最后一塊拼圖 Audiolab 傲立 M-DAC mini
一德系統(tǒng) 德行天下
PLC在多段調速系統(tǒng)中的應用
主站蜘蛛池模板: 亚洲另类色| 香蕉久人久人青草青草| 亚洲天堂成人| 婷婷丁香在线观看| 国产黄色免费看| 偷拍久久网| 无码日韩视频| 婷婷亚洲综合五月天在线| 久久精品视频亚洲| 高清码无在线看| 又黄又爽视频好爽视频| 亚洲精品视频免费观看| 婷婷色在线视频| 97狠狠操| 亚洲日本在线免费观看| 99久久精品国产自免费| 国产精品刺激对白在线| 日韩小视频网站hq| 在线国产毛片手机小视频| 国产尤物jk自慰制服喷水| 国产欧美日韩专区发布| 一级毛片免费高清视频| 欧美区国产区| 在线视频亚洲欧美| 国产欧美另类| 免费A级毛片无码无遮挡| 欧美性猛交一区二区三区| 国产91麻豆免费观看| 四虎影院国产| 乱人伦99久久| 狂欢视频在线观看不卡| 人人爽人人爽人人片| 日本不卡在线视频| 亚洲日韩国产精品综合在线观看| 无码网站免费观看| 国产精品亚欧美一区二区三区| h网站在线播放| 亚洲成人一区在线| 最新国产高清在线| 香蕉eeww99国产在线观看| 午夜福利无码一区二区| 少妇精品在线| 欧美激情伊人| 亚洲精品手机在线| 亚洲国产成人在线| 五月激激激综合网色播免费| 99视频在线免费| 少妇精品久久久一区二区三区| 美女国产在线| 日韩人妻少妇一区二区| 国产成人高清在线精品| 91午夜福利在线观看| 亚洲精品黄| 欧美精品在线观看视频| 精品无码专区亚洲| 97在线公开视频| 亚洲国产精品不卡在线| 欧美A级V片在线观看| 亚洲精选高清无码| 亚洲天堂免费观看| 欧美日韩精品综合在线一区| 亚洲最黄视频| 国产成人无码AV在线播放动漫 | 日韩毛片免费观看| 日韩午夜福利在线观看| 亚洲成A人V欧美综合| 手机在线看片不卡中文字幕| 色成人综合| 亚洲精品片911| 欧美日韩国产系列在线观看| 午夜福利网址| 亚洲成人播放| 国外欧美一区另类中文字幕| 久久精品国产999大香线焦| 人妻无码中文字幕一区二区三区| 国产成a人片在线播放| 国产又粗又爽视频| 日韩毛片在线视频| 国产一级一级毛片永久| 日日拍夜夜操| 欧美一级黄色影院| 亚洲综合一区国产精品|