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孵化后期死雞胚沙門氏桿菌的分離與鑒定

2016-01-27 19:30:46李遵瑞山東省臨沂市蘭山區畜牧獸醫局半程畜牧獸醫站276036
中國畜禽種業 2016年3期

李遵瑞 (山東省臨沂市蘭山區畜牧獸醫局半程畜牧獸醫站 276036)

孵化后期死雞胚沙門氏桿菌的分離與鑒定

李遵瑞 (山東省臨沂市蘭山區畜牧獸醫局半程畜牧獸醫站 276036)

為確診某肉雞孵化場死亡雞胚的致病原因,對孵化后期死亡的20枚雞胚進行流行病學調查、細菌分離培養,通過生化試驗、運動性試驗、動物致病性試驗等鑒定方法對病原進行鑒定,并對分離菌進行藥物敏感性試驗;20枚死亡雞胚中有8枚帶菌,帶菌率40%,其中3株為沙門氏菌,沙門氏菌帶菌率為15%。分離菌對頭孢噻呋鈉和左旋氧氟沙星、四環素高敏,對鹽酸黃連素、丁胺卡那霉素、氧氟沙星、青霉素、硫酸慶大霉素中敏,對阿奇霉素、磷霉素鈣、恩諾沙星、鏈霉素產生了耐藥性。

肉雞;孵化場;死胚;沙門氏菌;分離鑒定

1 試驗材料與儀器

1.1 試驗材料

1.1.1 病料來源

臨沂大通孵化場孵化后期死亡雞胚20枚。

1.1.2 培養基及試劑

普通肉湯培養基、普通營養瓊脂 (購自青島高科園海博技術有限公司)、半固體動力培養基、伊紅美藍瓊脂、麥康凱瓊脂、胰蛋白胨大豆瓊脂 (購自北京陸橋技術有限責任公司)、SS瓊脂 (購自北京中海生物科技有限公司)、葡萄糖、乳糖、麥芽糖、甘露醇、蔗糖等細菌生化常規微量鑒定管(購自浙江省軍區后勤部衛生防疫檢驗所),快速革蘭氏染色液試劑盒 (購自濟南百博生物技術股份有限公司)。

1.1.3 藥敏試驗紙片

藥敏試紙片 (杭州天和微生物試劑有限公司)。

1.1.4 試驗動物

10日齡雞胚10枚,2日齡雛雞10只,小鼠10只,均由臨沂大學動物預防醫學實驗室提供。

1.2 試驗儀器

SW-WJ-LCU潔凈工作臺、油鏡、立式壓力蒸汽滅菌器、生化培養箱、孵化出雛機、電子天平、可調萬用電爐等。

2 試驗方法

2.1 病原菌分離鑒定

2.1.1 各種培養基的制備

2.1.1.1 普通營養瓊脂

稱取普通營養瓊脂粉33.0g加入1L蒸餾水中,加熱煮沸到完全溶解后用立式壓力蒸汽滅菌器設定為121℃高壓滅菌20min,冷卻至46℃左右時制成斜面備用。

2.1.1.2 伊紅美藍瓊脂 (EMB)

稱取EMB37.5g加入1L蒸餾水中,加熱煮沸至完全溶解后用立式壓力蒸汽滅菌器設定為121℃高壓滅菌20min,冷卻至55℃左右傾注平板備用[1]。

2.1.1.3 麥康凱瓊脂

稱取麥康凱瓊脂粉54.0g,加入1L蒸餾水中,加熱煮沸完全溶解后,用立式壓力蒸汽滅菌器設定121℃高壓滅菌20min。

2.1.1.4 SS瓊脂

稱取SS瓊脂粉60.0g加入1L蒸餾水中,加熱煮沸完全溶解,用立式壓力蒸汽滅菌器設定121℃高壓滅菌20min。冷卻至55℃傾注滅菌平板備用。

2.1.1.5 半固體動力培養基

稱取22.0g加入1L蒸餾水中,加熱煮沸至完全溶解,用立式壓力蒸汽滅菌器設定121℃高壓滅菌20min,備用。

2.1.1.6 胰蛋白胨大豆瓊脂 (TSA)

稱取TSA38.0g加入1L蒸餾水中,加熱煮沸至完全溶解,用立式壓力蒸汽滅菌器設定121℃高壓滅菌20min,備用。

2.1.1.7 普通肉湯培養基

稱取30.0g,加熱溶解加入1000ml蒸餾水中,并不停攪拌,煮沸1min,分裝三角燒瓶,滅菌鍋121℃高壓滅菌20min,備用。

2.1.2 涂片及染色

將可疑菌落進行革蘭氏染色[2],鏡檢。首先用酒精燈滅菌的接種環挑取菌落均勻涂布于潔凈玻片上,自然干燥后火焰固定,以微燙手背的溫度為標準。待冷卻后加結晶紫溶液進行初染1min,之后水洗,甩干。再加革蘭氏碘溶液進行媒染1min,之后水洗,甩干。用95%酒精脫色20~30s,之后水洗,甩干。最后用沙黃溶液復染30s之后水洗,用濾紙把水分吸干,鏡檢觀察染色的形態與特征。

2.1.3 分離培養與觀察

在超凈工作臺上,以常規無菌操作用接種環挑取雞胚組織,分別接種于普通瓊脂培養基、伊紅美藍培養基、麥康凱培養基、SS培養基。于37℃下培養24h后,挑取不同形態特征的菌落進行培養,做進一步鑒定。

2.1.4 運動性觀察

用滅菌的接種針取培養物垂直穿刺接種于半固體培養基中央,放培養箱中培養24h后觀察。

2.1.5 生化試驗

用滅菌的接種針將前面所分離出的細菌分別接種葡萄糖、乳糖、麥芽糖、甘露醇、蔗糖等的糖發酵管及MR、VP、枸櫞酸鹽、氧化酶、硝酸鹽還原、檸檬酸鹽、尿素等生化試驗管。然后放入生化培養箱中培養24h后觀察結果。

2.2 動物致病性試驗

2.2.1 雞胚接種

將分離出的細菌接種于普通營養肉湯中,在37℃下培養24h,之后取提供的10日齡雞胚,其中5個用于接種試驗,另外5個作為對照試驗。試驗組雞胚尿囊腔注射接種2ml,另一個雞胚注射等量的生理鹽水作對照試驗[3]。

接種方法:①用照蛋器找到氣室,用記號筆標記出氣室邊緣,酒精棉消毒雞胚表面后,用大針頭打孔;②以2ml/枚的量垂直注入尿囊腔;③注射完后,用蠟封住打的孔。然后放入孵化箱內繼續孵化,并觀察記錄雞胚的死亡情況。

2.2.2 雛雞接種

將分離出的細菌接種于普通營養肉湯中,在37℃下培養24h,取實驗室提供的10只雛雞,其中5只作為試驗組,另外5只作為對照組。然后以2ml/只的量注射到試驗雛雞的腹腔中。注射完后,拔出針頭,用棉球按壓,防止外溢造成污染。

2.2.3 小鼠接種

將分離出的細菌接種于普通營養肉湯中,在37℃下培養24h,取實驗室提供的10只小鼠,其中5只用于接種試驗,另外5只用于對照試驗。對試驗組小鼠腹腔注射2ml,對照組注射等量的生理鹽水。然后給小鼠充足的飲水、飼料,在同一環境下喂養,進行觀察和記錄。

2.3 藥敏試驗

將接種環置于酒精燈火焰上方進行滅菌,待接種環冷卻后挑取分離培養的細菌涂在營養培養基上,稍干后,將鑷子火焰高溫消毒后,夾起各種抗生素藥敏紙片貼于培養基表面,注意要完全接觸。藥敏制片要均勻的分布于培養基中,防止抑菌圈重疊,各藥敏制片的中心距離要大于24mm。記錄藥敏制片的名稱和位置,在15min后,將培養基放入培養箱中,37℃培養24h后,進行觀察并測定抑菌圈的直徑。然后根據抑菌圈直徑的大小來判斷該菌對各種藥物的敏感性。

判定標準:沒有抑菌圈為不敏感,抑菌圈直徑10mm以下則為低度敏感;直徑在10~15mm范圍內為中度敏感;抑菌圈的直徑在15mm以上為高度敏感[4]。

3 試驗結果及分析

3.1 涂片染色結果

將涂片染色后的細菌進行鏡檢,視野中發現有大量紅色、革蘭氏陰性、短粗、兩端鈍圓的小桿狀菌,呈單個、成對或成叢分布,無芽胞,無莢膜。

3.2 分離培養結果

該菌在SS瓊脂平板培養基上生長為無色半透明菌落,一部分菌落中間有黑色;在麥康凱培養基上觀察菌落為無色透明濕潤、圓形凸起、周邊不整齊;在普通瓊脂平板上菌落為圓形隆起、無色半透明、光滑。該菌在肉湯中培養24h后觀察,混濁,放置后有沉淀,震蕩試管,有絮狀物升起。其培養特性與沙門氏菌相同。

從被檢死亡雞胚的卵黃囊細菌檢出情況為:20枚雞胚中有10枚分離出細菌,帶菌率為50%,其中沙門氏菌有3株,帶菌率6.67%。

3.3 運動性觀察結果

人工培養后用滅菌的接種針取單一菌落垂直接種于半固體培養基,將其放入生化培養箱中37℃培養24h后,觀察半固體培養基呈云霧狀。

3.4 生化試驗結果

在生化培養基中接種營養培養基上的沙門氏菌,將細菌生化常規微量鑒定管倒置放入生化培養箱,37℃培養24h后。觀察結果枸櫞酸鹽試驗為陽性,VP試驗為陰性,尿素分解試驗為陰性。硝酸鹽還原試驗陽性。分解葡萄糖、甘露醇產酸產氣,分解麥芽糖、山梨醇產酸不產氣,不分解蔗糖、半乳糖。根據以上結果,確定該致病菌生化試驗結果與沙門氏菌相同。

3.5 雞胚接種結果

經尿囊腔接種的雞胚試驗組37h內全部死亡,對照組均健活。剖檢死亡的雞胚發現其卵黃吸收不良,卵黃囊有炎癥,并且有黃綠色干酪樣物質;肝臟充血淤血腫大;十二指腸內有干酪樣物質。

3.6 雛雞接種結果

腹腔接種5只試驗組雛雞表現為精神萎靡,食欲不振,臥地不起,病程長的有嚴重的脫水。剖檢后可以發現死亡雛雞肝腫大,表面有散在的出血點。消化道也有出血,呈點狀、帶狀,尤其是十二指腸,呈彌漫性出血。部分死亡雞只盲腸內有灰白色的干酪物堵塞。在肝、脾、肺等處均能回收到該菌。對照組均健活。

3.7 小鼠接種結果

試驗組小鼠3日內全部死亡對照組均健活。

3.8 藥敏試驗結果

根據判斷標準,分離菌對頭孢噻呋鈉和左旋氧氟沙星、四環素高敏,對鹽酸黃連素、丁胺卡那霉素、氧氟沙星、青霉素、硫酸慶大霉素中敏,對阿奇霉素、磷霉素鈣、恩諾沙星、鏈霉素產生了耐藥性。

4 討論

(1)通過流行病學調查、臨床癥狀、病理剖檢、病原的分離與鑒定及致病性試驗,確定死亡雞胚中病原為沙門氏菌。

(2)其中共20份死胚中,8份檢出了病原菌,帶菌率為40%。其中沙門氏菌3株,帶菌率15%。說明該孵化場孵化的雛雞沙門氏菌感染率較高,應及早應用抗菌藥物預防。

(3)沙門氏菌既可以水平傳播,也可垂直傳播。垂直傳播有兩種情況:一種是經卵巢直接進入卵內,另一種是經過各種途徑污染蛋殼后進入卵內。細菌通常在低溫時不能或很少通過蛋殼,但是隨著溫度的升高,則很容易通過蛋殼后而進入蛋內。先在蛋黃內增值,在孵化過程中便侵入胎兒體內。該雞胚沙門氏菌的感染,也可能是同時由兩種傳播途徑造成的可能性,確診有待于進一步調查研究[5]。

(4)沙門氏菌復雜多樣,在公共衛生學上普遍受到重視。因此,無論是種蛋還是商品蛋,都應對其進行消毒滅菌處理,防止引起沙門氏菌病。在種蛋上孵前,要對種蛋進行消毒滅菌,防止種蛋在孵化過程中由于沙門氏菌的侵入而導致雞胚死亡。

[1]張正慶,羅薇,劉亞剛,等.禽源致病性沙門氏菌四環素耐藥性基因tetC的PCR擴增及序列分析[J].畜禽業,2006,(24):18-20.

[2]陳飛,成大榮,王麗芳,孫懷昌,張鑫宇,等.禽沙門氏菌毒力島標志基因研究與mgtC基因序列分析[J].江蘇農業科學,2010(6):12-13.

[3]仇莉,繆曉斌,賁巧云,韓書英,沈永華,等.江蘇東臺地區雞白痢沙門氏菌的耐藥性分析[J].獸醫導刊,2009(4):23-25.

[4] 潘志明,焦新安,劉文博,高崧,倪振亞,張揚,劉學賢,張如寬,劉秀梵,等.雞白痢沙門氏菌耐藥性的監測研究[J].畜牧獸醫學報,2002(4):56-57.

[5]姚火春.獸醫微生物學實驗指導[M].第2版.北京:中國農業出版社,2002.

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