·基礎研究·
miR302/367簇對肝癌細胞增殖的抑制作用及機制探討
廖娟,雎巖,趙金,李潔,李濤
(陜西省腫瘤醫院,陜西咸陽710061)
摘要:目的探討miR302/367簇在肝癌發生、發展過程中的作用及機制。方法通過實時定量PCR檢測肝癌細胞系(Bel-7402、HepG2、MHCC97、SMMC-7721)中miR302/367簇的表達;在HepG2、MHCC97肝癌細胞系中建立miR302/367簇過表達體系,通過細胞計數實驗、MTT實驗和異種移植瘤模型檢測肝癌細胞體內、體外增殖和生長能力;利用流式細胞術,通過PI染色,檢測肝癌細胞周期分布。結果miR302/367簇在四個肝癌細胞系中均不表達;過表達miR302/367簇后,肝癌細胞體內、體外的增殖和生長能力均明顯受抑制,其G0/G1期比例顯著增加,而S期比例明顯減少(P均<0.05)。結論 miR302/367簇通過阻滯細胞從G0/G1期向S期轉換抑制肝癌細胞的增殖。
關鍵詞:肝腫瘤;微小RNA;miR302/367簇;細胞增殖
doi:10.3969/j.issn.1002-266X.2015.45.012
中圖分類號:R735.7文獻標志碼:A
收稿日期:(2015-09-08)
肝癌的發生、發展是一個多因素、多步驟的復雜過程,癌基因的激活和抑癌基因的失活是細胞發生癌變的主要機制。近年研究表明,miRNA參與了細胞的增殖、分化與凋亡等生理過程,其表達異常與腫瘤的起源與進展密切相關[1]。已有大量報道顯示,miRNA在肝癌組織中表達異常,如miR16、miR21、miR31、miR122、miR145等,與肝癌的發生、發展、轉移及預后相關[2, 3]。然而,miR302/367簇在肝細胞癌中的作用及分子機制目前尚不明確,本研究進行了相關探討。
1材料與方法
1.1材料細胞:人肝癌細胞系Bel-7402、HepG2、MHCC97、SMMC-7721和畸胎瘤細胞系PA-1購自美國模式菌種收集中心(American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA),用含10%胎牛血清、1 000 U/mL青霉素、100 mg/mL鏈霉素的RPMI1640或DMEM細胞培養液,于37 ℃、5% CO2的條件下培養,待單層細胞生長達80%融合時,用胰蛋白酶消化細胞,收集細胞備用。試劑及儀器:細胞培養液RPMI1640和DMEM購自Gibco BRL公司;氨芐青霉素鈉,硫酸鏈霉素和G418試劑購自美國Sigma公司;胎牛血清購自Hyclone公司;TRIzol,轉染試劑脂質體(LipofectaminTM2000)購自Invitrogen公司;microRNA逆轉錄試劑盒及Real-time PCR試劑盒均購自美國Applied Biosystems公司。
1.2載體構建及細胞轉染miR302/367簇位于人4號染色體4q25,包括miR302b、miR302c、miR302a、miR302d和miR367 5種miRNA[4]。從人肝癌細胞系HepG2基因組DNA中克隆了一段長723 bp的序列,將目的片段插入到miR-367前體miRNA的過表達載體(pCAG-EGFP-Neo)中并測序鑒定,構建miR302b、c、a、d和pCAG-EGFP-Neo。收集對數生長期的肝癌細胞,將5×105的細胞接種于6孔板中培養24 h。根據脂質體轉染說明書,將轉染試劑Lipofectmine2000與miR302/367簇過表達載體(實驗組)或pCAG-EGFP-Neo載體(對照組)混合,轉染24 h后觀測熒光,同時以1∶10的比例將每組細胞傳代,用G418藥物篩選挑取單克隆,通過實時定量PCR檢測其表達。
1.3細胞cDNA中miR302/367簇的檢測采用實時定量PCR法檢測肝癌細胞系(Bel-7402、HepG2、MHCC97和SMMC-7721)cDNA中miR302/367簇的表達,并選取畸胎瘤細胞系PA-1作為陽性對照。為進一步研究miR302/367簇在肝癌細胞中的作用,我們在HepG2和MHCC97細胞系中建立miR302/367簇過表達體系,并采用同樣方法檢測miR302/367簇的表達。收集對數期生長細胞,根據TRIzol試劑說明書提取細胞總RNA,并利用特異性miRNA引物及TaqMan?miRNA reverse transcription kit反轉錄總RNA。利用TaqMan microRNA assay 和TaqMan universal PCR master mix試劑盒檢測cDNA中miR302/367簇的表達,其表達水平采用2-ΔCt方法,高度保守的snRNA U6作為內參。結果在這4個肝癌細胞系中,miR302/367簇中5種miRNA均不表達,而在PA-1中均高表達。轉染miR302/367簇后,GFP陽性克隆均能表達5種miRNA。將過表達克隆(HepG2-302/367組和MHCC97-302/367組)與對照克隆(HepG2-EGFP組和MHCC97-EGFP組)用于后續研究。
1.4體外細胞增殖能力和細胞活力檢測細胞增殖能力檢測:采用細胞計數實驗。收集對數生長期細胞,以5×104個細胞接種于6孔板中,利用細胞計數器檢測1周內細胞數并繪制細胞生長曲線,比較實驗組(HepG2-302/367組和MHCC97-302/367組)和對照組(HepG2-EGFP組和MHCC97-EGFP組)中細胞增殖能力的差異。細胞活力檢測:采用MTT法。將1 000個細胞接種于96孔板中,加入MTT后37 ℃培養4~6 h,然后加入DMSO溶解,用分光光度計于570 nm處測定吸光度并繪制曲線圖。連續7 d檢測細胞活力。
1.5體內細胞增殖、生長和成瘤能力檢測采用異種移植瘤實驗。取對數生長期的實驗組(HepG2-302/367組和MHCC97-302/367組)和對照組(HepG2-EGFP組和MHCC97-EGFP組)中細胞,經胰酶消化成單細胞懸液,調整濃度,終濃度為1×106/mL,將100 μL(1×105個)細胞懸液接種于4~6周齡的BALB/c-nu裸鼠(購自上海斯萊克公司)雙側背部皮下,連續觀察6~8周,每周觀察腫瘤的生長情況并記錄。
1.6細胞周期檢測取對數生長期的實驗組(HepG2-302/367組和MHCC97-302/367組)和對照組(HepG2-EGFP組和MHCC97-EGFP組)中細胞,利用流式細胞術,通過PI染色,檢測肝癌細胞周期分布。

2結果
2.1miR302/367簇對肝癌細胞體外增殖、細胞活力的影響miR302/367簇干預后肝癌細胞的增殖能力明顯受抑。7 d的培養期中,HepG2-302/367和MHCC97-302/367與HepG2-EGFP和MHCC97-EGFP相比,其細胞數分別下降了3倍和2倍(P均<0.05)。結果見表1。MTT實驗亦顯示miR302/367簇能明顯抑制肝癌細胞生長。通過7 d的培養,HepG2-302/367和MHCC97-302/367與對照相比,其細胞活力均明顯降低(P均<0.05)。結果見表2。

表1 各組不同時間的細胞數比較(×10 4個,
注:與HepG2-EGFP組比較,*P<0.05;與MHCC97-EGFP組比較,#P<0.05。

表2 各組不同時間的細胞活力比較(吸光度值, ± s)
注:與HepG2-EGFP組比較,*P<0.05;與MHCC97-EGFP組比較,#P<0.05。
2.2miR302/367簇對肝癌細胞體內增殖、生長和成瘤能力的影響過表達miR302/367簇后,肝癌細胞成瘤時間、成瘤率并未見明顯變化,HepG2-302/367、MHCC97-302/367實驗組和HepG2-EGFP、MHCC97-EGFP對照組在3周左右均可觸摸到結節,成瘤率均為100%。但與對照組相比,過表達組移植瘤的生長速度明顯減慢(表3,P<0.05)。裸鼠處死后取下腫瘤稱重,HepG2-302/367組和HepG2-EGFP組體質量分別為(1.37±0.57)、(2.72±0.92)g,MHCC97-302/367組和MHCC97-EGFP組體質量分別為(1.16±0.53)、(1.93±0.77)g,miR302/367簇過表達后體質量明顯減輕(P<0.05)。

表3 各組不同時間的腫瘤體積比較 ± s)
注:與HepG2-EGFP組比較,*P<0.05;與MHCC97-EGFP組比較,#P<0.05。
2.3miR302/367簇對肝癌細胞周期的影響結果見表4。
3討論
miRNA是一種細胞內源性的非編碼小RNA,長19~22 nt,可通過特異性結合來降解mRNA或抑制其翻譯,從而調節蛋白表達[5]。已有實驗證實,miRNA參與細胞的多種生理和病理過程,如細胞分化、增殖、凋亡及腫瘤形成等[5]。miR302/367簇能促進胚胎干細胞的多潛能性,參與腫瘤的發生、發展。本研究旨在研究該基因簇在肝癌中的作用及機制。

表4 各組細胞周期分布比例比較 ± s)
注:與HepG2-EGFP組比較,*P<0.05;與MHCC97-EGFP組比較,#P<0.05。
miR302/367簇包括5個miRNA(miR302b、miR302c、miR302a、miR302d和miR367)。由于miR302a-d具有相同的種子序列,與miR367存在不同,因此大部分的文獻均只研究miR302s[6,7],僅有為數不多的文獻報道了miR302/367簇的功能[8,9]。該基因簇中的5個miRNA位于同一前體miRNA,其共轉錄本由共同的啟動子調控轉錄,該啟動子位于Larp7基因的8號內含子[10]。因此,這5個miRNA表達一致,應作為一個整體共同研究其功能。我們前期研究結果顯示,4個肝癌細胞系中均不表達5個miRNA,而在畸胎瘤細胞系中均有表達,且表達水平一致。Suh等也報道了miR302/367簇在多潛能細胞中的特異性表達。
關于miR302s功能研究有不同的結果。有報道顯示,miR302s能誘導人體細胞(成纖維細胞和毛囊濾泡細胞)和腫瘤細胞(Colo-829 黑色素瘤和PC3前列腺癌)形成誘導多能活細胞[7],而另一部分報道顯示miR302s能抑制人多潛能干細胞和多種腫瘤細胞的成瘤能力。同樣的,miR302/367簇亦能誘導人成纖維細胞形成多潛能胚胎干細胞樣細胞[8]。在本研究中,我們并未發現miR302/367簇在肝癌細胞中具有重編程作用,但能通過抑制細胞周期進程從而抑制肝癌細胞增殖。在肝癌細胞系中過表達miR302/367簇后,可抑制細胞體內、外增殖和生長能力,這一過程是通過阻滯細胞從G0/G1期向S期轉換實現的。
在以往的研究中,亦有文獻報道了miR302/367簇抑制周期進程的分子機制。miR302s能下調多種細胞周期相關蛋白,包括CDK2、cyclin A、E2F-1、cyclin D1等[11]。在宮頸癌中,miR302/367簇能通過直接靶向AKT1,上調p27Kip1和p21Cip1這兩個周期抑制蛋白,從而阻滯細胞從G0/G1期向S期轉換[15]。
綜上所述,miR302/367簇能通過阻滯細胞從G0/G1期向S期轉換,從而抑制肝癌細胞的增殖能力,在肝癌的發生發展過程中發揮抑癌基因的作用。該研究為進一步探索肝癌的生物學機制及將miR302/367簇作為潛在的治療靶點提供了理論基礎。
參考文獻:
[1] Esquela-Kerscher A, Slack FJ. Oncomirs-microRNAs with a role in cancer[J]. Nat Rev Cancer, 2006,6(4):259-269.
[2] Ge W, Yu DC, Li QG, et al. Expression of serum miR-16, let-7f, and miR-21 in patients with hepatocellular carcinoma and their clinical significances[J]. Clin Lab, 2014,60(3):427-434.
[3] Karakatsanis A, Papaconstantinou I, Gazouli M, et al. Expression of microRNAs, miR-21, miR-31, miR-122, miR-145, miR-146a, miR-200c, miR-221, miR-222, and miR-223 in patients with hepatocellular carcinoma or intrahepatic cholangiocarcinoma and its prognostic significance[J]. Mol Carcinog, 2013,52(4):297-303.
[4] Puca AA, Daly MJ, Brewster SJ, et al. A genome-wide scan for linkage to human exceptional longevity identifies a locus on chromosome 4[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2001,98(18):10505-10508.
[5] Ambros V. The functions of animal microRNAs[J]. Nature, 2004,431(7006):350-355.
[6] Scheel AH, Beyer U, Agami R, et al. Immunofluorescence-based screening identifies germ cell associated microRNA 302 as an antagonist to p63 expression[J]. Cell Cycle, 2009,8(9):1426-1432.
[7] Lin SL, Chang DC , Lin CH, et al. Regulation of somatic cell reprogramming through inducible mir-302 expression[J]. Nucleic Acids Res, 2011,39(3):1054-1065.
[8] Anokye-Danso F, Trivedi CM, Juhr D, et al. Highly efficient miRNA-mediated reprogramming of mouse and human somatic cells to pluripotency[J]. Cell Stem Cell, 2011,8(4):376-388.
[9] Cai N, Wang YD, Zheng PS. The microRNA-302-367 cluster suppresses the proliferation of cervical carcinoma cells through the novel target AKT1[J]. RNA, 2013,19(1):85-95.
[10] Card DA, Hebbar PB, Li L, et al. Oct4/Sox2-regulated miR-302 targets cyclin D1 in human embryonic stem cells[J]. Mol Cell Biol, 2008,28(20):6426-6438.
[11] Fareh M, Turchi L, Virolle V, et al. The miR 302-367 cluster drastically affects self-renewal and infiltration properties of glioma-initiating cells through CXCR4 repression and consequent disruption of the SHH-GLI-NANOG network[J]. Cell Death Differ, 2012,19(2):232-244.