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人成纖維細胞生長因子8a在大腸桿菌中的表達研究

2015-12-23 02:40:10徐軼彥
科技視界 2015年32期

徐軼彥

(福建衛(wèi)生職業(yè)技術學院,福建 福州350025)

成纖維生長因子(Fibroblast growth factors FGFs)家族是一群具多種生理功能的生長因子,通過細胞表面的酪氨酸激酶受體將胞外信號傳到胞內(nèi),其功能涉及胚胎發(fā)育、血管生成和傷口愈合等,對組織和細胞的增殖和分化起重要作用[1-2]。FGFs在哺乳動物中至少有22個成員,從FGF1~23,在人類中沒有FGF15。FGF8是其中的一個成員,最初從雄激素依賴的小鼠乳腺癌細胞系SC-3克隆出來[3]。通過可變剪接,F(xiàn)GF8基因可轉錄加工成多種亞型。在小鼠中可產(chǎn)生FGF8a~h8種亞型,在人類中產(chǎn)生四種亞型:FGF8a、FGF8b、FGF8e和FGF8f[3-5]。本文利用大腸桿菌系統(tǒng)表達人FGF8a,并對表達的人FGF8a進行純化、復性及體外活性檢測。本研究將為進一步了解FGF8a的功能奠定一定的基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

含F(xiàn)GF8a cDNA序列的質(zhì)粒pBluescript-FGF8a為本實驗室保存;大腸桿菌Top 10′被用于分子克隆;大腸桿菌BL21(DE3)pLysS用于蛋白表達;T4DNA連接酶和限制性內(nèi)切酶均購于TaKaRa公司;Ni Sepharose 6 Fast Flow和Sephacryl S-200 HR購于美國通用公司;抗6×His一抗和堿性磷酸酶標記的二抗購于中杉金橋(北京)生物技術;其它試劑為國產(chǎn)分析純。

1.2 方法

1.2.1 pET14b-FGF8a重組表達質(zhì)粒的構建

以克隆有FGF8a cDNA序列的質(zhì)粒pBluescript-FGF8a為模板,設計引物(上游引物:5′-GCCATATGGGCAGCCCCCGCTC-3′;下游引物:5′-CCGCTCGAGTTATCGGGGCTCGG-3′),擴增FGF8a閱讀框序列。擴增的序列連接到載體pET14b的NheI/XhoI位點上,與6×His標簽在同一閱讀框。連接后的重組質(zhì)粒轉化TOP10′感受態(tài)細胞,涂布到含有氨芐青霉素的LB平板上篩選。鑒定后的陽性轉化子進行測序確定表達序列和閱讀框的正確性。

1.2.2 重組人FGF8a在大腸桿菌中誘導表達

轉化了pET14b-FGF8a重組表達質(zhì)粒的大腸桿菌BL21(DE3)pLysS在LB培養(yǎng)基中培養(yǎng)過夜,過夜培養(yǎng)的細菌以1‰的接菌量接到新鮮的LB培養(yǎng)基中,培養(yǎng)至OD=0.3~0.6時,加入終濃度約1mmol/L的IPTG進行誘導表達4h。10000rpm 4℃離心10min,收集菌體,-20℃儲存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.3 重組人FGF8a色譜純化和復性

經(jīng)IPTG誘導后的菌體進行超聲破碎,7000rpm離心10min,收集包涵體。包涵體用20mmol/LTris-HCl,2mol/L尿素,2%TritonX-100洗滌30min,15000rpm離心10min,收集沉淀。洗滌后包涵體在室溫下用20mmol/LTris-HCl,8mol/L尿素,0.1mol/L NaCl,pH8.0緩沖液進行溶解2h,15000rpm離心30min,取上清。Ni Sepharose 6 Fast Flow柱用上樣緩沖液(20mmol/L Tris-HCl,8mol/L尿素,0.1mol/L NaCl,pH8.0)平衡。變性溶解后的上清以1ml/min的流速過Ni親和柱,隨后Ni柱用淋洗緩沖液(20mmol/LTris-HCl,8mol/L尿素,0.1mol/LNaCl,0.05mol/L咪唑,pH8.0)清洗非特異性吸附的雜蛋白。

采用在位復性的方式對變性后的重組人FGF8a進行復性。具體做法如下:吸附有重組人FGF8a的Ni親和柱采用線性梯度的方式將尿素從8mol/L濃度逐漸下降到0mol/L,流速為0.1ml/min,梯度時間24h。隨著尿素濃度的逐漸下降,吸附在Ni上的重組人FGF8a開始復性。最終柱上的重組人FGF8a用洗脫緩沖液(20mmol/LTris-HCl,0.1mol/L NaCl,0.5mol/L咪唑,pH8.0)進行洗脫。經(jīng)Ni純化的重組人FGF8a用Sephacryl S-200凝膠層析柱做進一步純化和緩沖液更換。S-200 Sephocryl凝膠層析所用緩沖液為PBS,流速為1min/ml。收集重組人FGF8a洗脫峰,并用Bradford法對其進行蛋白定量。

1.2.4 重組人FGF8a Western blot鑒定

待測樣品經(jīng)12%SDS-PAGE電泳后轉移到NC膜上,條件100V,2h。5%脫脂奶粉封閉1h,在鼠抗6×His抗體中4℃孵育過夜。一抗孵育后的NC膜經(jīng)TTBS清洗三次,每次10min。隨后在堿性磷酸酶標記的二抗中孵育1h,膜清洗后用NBT/BCIP系統(tǒng)進行顯色。

1.2.5 重組人FGF8a活性檢測

按文獻方法進行[6],將NIH3T3細胞以500個細胞/孔接種于96孔培養(yǎng)板,在含10%胎牛血清DMEM培養(yǎng)基中過夜培養(yǎng)后,去除未貼壁細胞,并向每孔中加入100μl的新鮮培養(yǎng)液。實驗組中培養(yǎng)液中加入800μg/ml純化后的FGF8蛋白,空白對照加入等體積的PBS溶液,每組實驗重復5個復孔,培養(yǎng)24h后MTT法檢測細胞增殖情況。

2 結果

2.1 人FGF8a表達載體的構建

利用特異性引物從克隆質(zhì)粒pBluescript-FGF8a中擴增出FGF8a全長閱讀框序列(圖1)。擴增片段5′端含NheI位點,3′端含XhoI位點。PCR擴增片段經(jīng)NheI和XhoI內(nèi)切酶消化后與NheI和XhoI雙酶切的原核表達載體pET14b進行連接,構建人FGF8a表達載體pET14b-FGF8a。表達載體中FGF8a序列在6×His序列下游,并與之同一閱讀框。因此,表達的重組人FGF8a蛋白N端將帶有6×His。表達序列與載體利用酶切技術對重組載體進行鑒定。連接載體經(jīng)酶切鑒定正確后(圖2),進行測序以確定表達序列和閱讀框是否正確。

圖1 PCR擴增的人FGF8a片段電泳分析

圖2 FGF8a重組表達質(zhì)粒限制性內(nèi)切酶酶切鑒定

2.2 人FGF8a在大腸桿菌中有表達與純化

轉化了pET14b-FGF8a質(zhì)粒的宿主菌BL21(DE3)pLysS用1mmol/L IPTG進行誘導表達,4小時誘導后在預期分子量大小的位置產(chǎn)生明顯的蛋白條帶(圖3A)。Western blot鑒定該蛋白條帶為重組FGF8a(圖3B)。包涵體經(jīng)8M脲變性溶解后過Ni親和柱,并在柱上在位復性。Ni親和柱洗脫峰再經(jīng)Sephacryl S-200分子篩柱純化。經(jīng)Ni親和柱和Sephacryl S-200分子篩柱純化到的蛋白能被特異性抗原識別(圖4B),且純度達到電泳純(圖4A)。

圖3 人FGF8a在大腸桿菌中表達

圖4 人FGF8a純化

2.3 重組人FGF8a活性檢測

FGF在體外具有刺激細胞增殖的能力,據(jù)此特性,可對FGF的活性進行檢測。傳代培養(yǎng)24h后的NIH3T3成纖維細胞分別加入純化后的重組FGF8a(800μg/ml)和PBS溶液,利用MTT法檢測細胞的增殖情況,結果顯示,與加PBS對照組相比,加入重組FGF8a后,NIH3T3細胞分裂增殖顯著增加(圖5)。

圖5 重組人FGF8a活性檢測

3 討論

眾多研究表明,不同的FGF8亞型在人類胚胎發(fā)育過程中,在多種不同組織中表達,對器官的發(fā)育與形成起著重要作用。為得到大量人FGF8a蛋白用于功能研究,我們嘗試利用大腸桿菌系統(tǒng)表達人FGF8a。結果表明人FGF8a能在大腸桿菌中大量表達,但重組表達的FGF8a以包涵體形式存在。包涵體中的多肽不具高級構象,故無生理活性。為使大腸桿菌中表達的FGF8a有生理功能,可采用兩種方式:第一對包涵體中的多肽進行體外復性;第二改變大腸桿菌的表達條件,增加胞質(zhì)中可溶性FGF8a的含量[7]。第二種方法雖可避免包涵體復性過程的煩瑣,但也產(chǎn)生了另外的問題,如表達量不高、增加純化難度等。在本研究中,我們采用了柱上在位復性的方式,發(fā)現(xiàn)柱上復性后的FGF8a經(jīng)洗脫后并不會出現(xiàn)沉淀現(xiàn)象,且整個復性過程操作簡單。因此,柱上在位復性方式對于某些蛋白復性可能是一種不錯的選擇。

為方便純化,我們在表達的人FGF8a蛋白N端增加了6×His標簽,經(jīng)Ni親和柱和凝膠過濾兩步色譜純化后,重組蛋白純度能達到電泳純(圖4)。純化的重組人FGF8a處理NIH3T3細胞后,細胞增殖能力與對照相比明顯增加,表明N端融合6×His標簽的人FGF8a具有生理功能。

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