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濟瀆紅蒜莖尖脫毒快繁培養技術研究

2015-12-07 10:10:46陳麗趙玉玲張慶社田瑞昌陳坤葛佳文牛小沛馬朝喜
長江蔬菜 2015年16期

陳麗,趙玉玲,張慶社,田瑞昌,陳坤,葛佳文,牛小沛,馬朝喜

(河南濟源市農業科學院,459000)

大蒜作為一種特殊蔬菜,不僅含有豐富的維生素、氨基酸、礦質元素等營養成分,而且含有特殊的抗菌、抗癌等活性物質,被認為是重要的天然保健品[1,2]。濟瀆紅蒜是濟源市地方特色品種,味道辛辣鮮美、蒜薹短粗肥嫩無梗絲、蒜泥味道長久,其獨特的品質深受濟源人喜愛。濟瀆紅蒜蒜皮紫紅透明、光澤喜人,在清朝時作為貢品,只有皇族才能享用,因此又被稱為“濟瀆金蒜”。近年來,由于病毒病的為害,我國大蒜種性普遍退化、單產降低、品質變劣,一些名優特種大蒜因受病毒病為害幾乎瀕于絕種[3,4]。本試驗以濟瀆紅蒜為材料,以期篩選出適合其脫毒快繁的培養基,建立一套適宜濟源市名優大蒜地方品種脫毒快繁的技術。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

濟瀆紅蒜,由濟源市農科院種植培育。

1.2 試驗方法

①剝離莖尖時間的篩選 2014年5月底收獲濟瀆紅蒜,從收獲初開始,每月進行1~2次莖尖剝離試驗。

②外植體處理 選擇生長良好的濟瀆紅蒜流水沖洗5 h,用洗潔精沖洗數次后,用手術刀片切除2/3留基部備用。無菌操作下75%酒精消毒35 s→無菌水沖洗1次→0.1%氯化汞滅菌10 min→無菌水沖洗8次進行材料表面滅菌。然后用無菌濾紙吸干水分,在顯微鏡下剝離莖尖,莖尖長度為0.2~0.6 mm,以備接種。

③愈傷組織誘導培養基配方的篩選 以1/2 MS培養基為基礎培養基,設6-BA、2,4-D、NAA 3個因素,每個因素3個水平,詳見表1,共9個處理,詳見表2,每處理3次重復。培養基pH值6.0、蔗糖濃度為30%、瓊脂粉含量3 g/L。將剝離好的莖尖接種在不同培養基上,散射光光照強度2 000~3 000 lx、溫度(25±2)℃、光照時間 12 h/d進行培養。

④分化增殖培養基的篩選 以1/2 MS培養基為基礎培養基,加入不同濃度的 6-BA、NAA、2,4-D,共6個處理,詳見表3,每處理4次重復;培養基pH值6.0、蔗糖濃度30%、瓊脂粉含量3 g/L。將誘導的愈傷組織接種在不同培養基上,培養條件同③。

⑤生根培養基的篩選和移栽 以1/2 MS培養基為基礎培養基,加入不同濃度6-BA、NAA,詳見表4,共4個處理;將增殖濟瀆紅蒜苗接種于生根培養基上,觀察生根情況;培養條件同③。將生根后的脫毒苗,移栽到已滅菌的草炭∶蛭石=2∶1的穴盤中。移栽后覆蓋遮陽網防曬、防蟲網防蚜蟲。

⑥大蒜內病毒的檢測 將剝離的大蒜莖尖培養2個月后,取部分愈傷或小苗搗碎、研磨,制成組織汁液,用磷酸鹽緩沖液在3 000 r/min離心20 min后,在電鏡下觀察,并以未脫毒的樣品作對照,確認含病毒的基本形態和特征。

2 結果與分析

2.1 不同時間對濟瀆紅蒜莖尖剝離的影響

根據每月剝離的情況發現,每年的5月底到翌年2月底,莖尖容易剝離,并且8~10月剝離的莖尖誘導成活率高于其他時間。因為初期剝離的莖尖,莖尖含水量大,剝離過程中易破碎;而后期,莖尖較小,不易剝離。

表1 試驗設計 mg/L

表2 濟瀆紅蒜愈傷組織誘導培養基的篩選

表3 濟瀆紅蒜分化增殖培養基的篩選

2.2 濟瀆紅蒜愈傷組織誘導培養基的篩選

為了促進莖尖成活以及分化,需選擇合適的激素配比。試驗觀察發現,如果在接種后14 d,莖尖出現透明狀,說明在誘導愈傷過程中出現玻璃化現象,且培養基濕度大;接種20 d后,莖尖泛綠色,并且膨大,說明開始誘導愈傷。正常的愈傷組織是黃綠色,且結構較為緊密,這種愈傷組織分生能力強,芽點較多;若為深綠色,則太硬不易分化,且最后容易轉變為淺黃色而死亡。由表2可知,1/2 MS+6-BA 1.5 mg/L+2,4-D 0.2 mg/L+NAA 0.8 mg/L的培養基愈傷組織誘導率較高,但愈傷組織呈淺黃色,不分化、不成塊,在培養過程中逐漸玻璃化死亡。因此,最佳的誘導培養基為1/2 MS+6-BA 1.8 mg/L+2,4-D 0.2 mg/L+NAA 0.6 mg/L。

2.3 濟瀆紅蒜分化增殖培養基的篩選

選擇較好的愈傷組織進行分化增殖培養,在激素濃度較高的條件下,誘導增殖率會降低,主要表現為形成畸形苗、葉片較長,芽尖生長較慢;有些會出現芽點較多、較綠,而分化比較少的情況。從表3可以看出,1/2 MS+6-BA 2.6 mg/L+2,4-D 0.3 mg/L+NAA 1.5 mg/L,增殖系數可達4倍,出苗比較整齊,分化苗生長比較健壯。

表4 濟瀆紅蒜愈傷組織的繼代培養情況

2.4 濟瀆紅蒜生根培養基的篩選

從表4可以看出,1/2 MS+6-BA 2.2 mg/L+NAA 0.3 mg/L,生根效果最好。6-BA濃度為2.2 mg/L的培養基中,生根少且較慢,出現根部膨大的現象,影響移栽成活率。

2.5 病毒檢測結果

隨機取再生大蒜幼苗50株,用未經脫毒的大蒜幼苗作對照,進行檢測。結果發現,對照100%含病毒,且病毒含量很高;而再生的大蒜幼苗有68%不含病毒,即脫去病毒;15%的病毒含量高,但仍低于對照。說明莖尖剝離脫毒可降低病毒含量。

3 討論與結論

有資料顯示,切取蒜瓣內幼芽的莖尖分生組織,經組織培養獲得脫毒苗是解決大蒜品種退化、提高大蒜產量和質量的有效途徑[5~7]。莖尖剝離過程中,其大小直接影響脫毒效果及成活率。試驗中發現,0.3~0.5 mm長的莖尖有利于提高成活率并且脫毒效果比較明顯;雖然0.1~0.2 mm的莖尖脫毒效果最好,但是接種后成活率不高;而莖尖長度低于0.4 mm時,誘導愈傷時玻璃化現象嚴重,原因有待進一步分析。但在脫毒過程中,完全脫毒的成功率還不是很高,下一步需要改進脫毒方法。

[1]管正學,王建立,張學予.我國大蒜資源及其開發利用研究[J].自然資源,1994(5):54-59.

[2]廉潔燮,金今松,馬英金,等.大蒜的應用價值及其產品[J].延邊農學院學報,1990(4):74-80.

[3]張寒霜.大蒜莖尖脫毒培養及快繁技術研究[J].華北農學報,2006,21(B11):117-119.

[4]欒非時.脫毒大蒜花原始體培養增殖技術的研究[J].中國蔬菜,1995(3):4-6.

[5]高山林,金雍安,蔡朝暉.大蒜分生組織培養脫病毒和快速繁殖技術[J].植物資源與環境學報,2000,9(3):15-18.

[6]鄭曉峰,黃剛.麻江紅蒜莖尖組織培養及快繁技術研究[J].長江蔬菜,2008(24):16-17.

[7]劉德軍.大蒜——藥用動植物種養加工[M].北京:中國中醫藥出版社,2001:55-56.

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