靶向沉默轉化生長因子β1表達的短發夾RNA的篩選*

李 敏，李新強，付琳琳，吳 余，王 虹，唐小燕，付素珍#

1)新鄉醫學院第一附屬醫院兒內科 衛輝453100 2)新鄉醫學院病理學教研室 新鄉453003

腎臟纖維化是所有慢性腎臟疾病發展至腎功能衰竭的共同通路，其中腎小管-腎間質纖維化以細胞外基質(extracellular matrix，ECM)的過度沉積為主要病理特征［1］。腎小管上皮細胞-間充質轉分化(epithelial to mesenchymal transition，EMT)與腎小管-腎間質纖維化密切相關。轉化生長因子β1(transforming growth factor β1，TGF-β1)在腎小管上皮細胞EMT 過程中發揮重要作用，是目前公認的有效的促纖維化因子［2］。因此，抑制TGF-β1 的表達對于防治腎小管-腎間質纖維化具有重要意義。作者擬覆蓋TGF-β1 基因cDNA 全長，設計和篩選靶向沉默TGF-β1 表達的短發夾RNA(short hairpin RNA，shRNA)，以期為進一步研究參與TGF-β1 誘導腎小管-腎間質纖維化的下游分子奠定基礎。

1 材料與方法

1．1 材料 人腎小管上皮細胞株HKC 購自中國醫學科學院細胞庫，p-Genesil-1 空載質粒和E．coli DH 5α 大腸桿菌為新鄉醫學院病理學教研室保存，BamHⅠ限制性內切酶、HindⅢ限制性內切酶、SalⅠ限制性內切酶、T4 DNA 連接酶均為大連TaKaRa 公司產品，D-葡萄糖為美國Aladdin 公司產品，兔抗TGF-β1 多克隆抗體為美國Abcam 公司產品，鼠抗人β-actin 單克隆抗體、辣根酶標記的山羊抗兔和辣根酶標記的兔抗鼠二抗為美國Santa Cruz 公司產品，增強化學發光試劑盒為武漢博士德公司產品。

1．2 靶向沉默TGF-β1 表達的shRNA 的設計和制備 按照siRNA 設計原則，覆蓋TGF-β1 基因cDNA全長，設計靶向沉默TGF-β1 的shRNA 5 條(表1)，并進行同源性分析。shRNA 的DNA 序列送大連TaKaRa 公司合成并退火。

1．3 靶向沉默TGF-β1 表達的shRNA 真核重組表達質粒的構建及鑒定 構建含沉默TGF-β1 shRNA的p-Genesil-shRNA 真核表達重組質粒及含無關shRNA 的p-Genesil-1-shRNA-vect 重組質粒。將目的片段shRNA 和質粒載體p-Genesil-1 在T4 DNA連接酶作用下16℃連接過夜，將連接產物轉化入DH5α 感受態細胞中，37℃培養箱培養18 h 后挑取單克隆，37℃搖床過夜振搖擴增，取1 mL 菌液送大連TaKaRa 公司測序鑒定;菌液中提取質粒行SalⅠ酶切鑒定，質粒p-Genesil-1 的多克隆位點如下:-XbaⅠ-SalⅠ-EcoRⅠ-U6 Promotor-BamHⅠ-shRNA-HindⅢ-;在插入的shRNA 的3'端設計了一個SalⅠ的酶切位點GTCGAC(表1)，若插入正確，SalⅠ單酶切時可切出一條約400 bp 的DNA 條帶。

1．4 質粒的轉染 以腎小管上皮細胞HKC 為研究對象，常規培養高糖(0．5 mol/L)或Ang Ⅱ(10－3mol/L)刺激的HKC 至對數生長期時，按Invitrogen公司Lipofectamine 2000 說明書進行質粒轉染，轉染8 h 后，去除含有轉染混合物的培養基，換成新鮮的細胞生長培養基，48 h 后用G418 進行篩選，篩選后擴增細胞并進行后續實驗。轉入p-Genesil-shRNA 1～5重組質粒及p-Genesil-1-shRNA-vect 質粒的細胞分別命名為p-Genesil-shRNA1～5 細胞和p-Genesil-1-vect 細胞。

1．5 高糖刺激后各組細胞中TGF-β1 表達的Western blot 檢測 收集HKC 細胞及高糖或AngⅡ刺激的HKC 細胞、p-Genesil-1-vect 細胞和各組p-Genesil-shRNA 細胞，提取細胞總蛋白，并按Bradford方法進行定量，變性處理后進行SDS-PAGE 電泳和轉膜，50 g/L 脫脂牛奶封閉，室溫2 h，一抗室溫搖育2 h，二抗室溫搖育2 h，按照增強化學發光試劑盒操作步驟進行顯色、曝光，最后顯影、定影、掃描。以β-actin 為內參照，蛋白上樣量均為150 μg，鼠抗人β-actin 單克隆抗體、兔抗TGF-β1 多克隆抗體、辣根酶標記的山羊抗兔和辣根酶標記的兔抗鼠二抗的稀釋度分別為1 ∶1 000、1 ∶300、1 ∶5 000 和1∶5 000。通過Quantity one 軟件分析Western blot目的條帶與內參照條帶的灰度比值。每組均設5個平行對照組。

表1 靶向沉默TGF-β1 表達的shRNA 序列

1．6 統計學處理 采用SPSS 16．0 進行分析。應用單因素方差分析和LSD-t 檢驗比較高糖刺激或Ang Ⅱ刺激后各組細胞中TGF-β1 表達的差異，檢驗水準α=0．05。

2 結果

2．1 靶向沉默TGF-β1 表達的shRNA 真核表達重組質粒的鑒定 見圖1。構建的p-Genesil-shRNA1、2、3、4 和5 真核表達重組質粒通過SalⅠ酶切鑒定結果顯示5個shRNA 重組質粒均可切出與預計相符的400 bp 的片段。測序結果也顯示所有重組質粒中，目的片段插入位點和方向正確，無堿基突變、插入、丟失，與實驗設計相一致。

圖1 靶向沉默TGF-β1 表達的shRNA 真核表達重組質粒酶切鑒定結果

2．2 靶向沉默TGF-β1 表達的shRNA 的篩選 見圖2、3 和表2、3。Western blot 結果顯示:與HKC 細胞相比，高糖或Ang Ⅱ刺激的HKC 細胞和p-Genesil-1-vect 細胞中TGF-β1 表達均增高，高糖或AngⅡ刺激的HKC 細胞和p-Genesil-1-vect 細胞中TGFβ1 表達差異無統計學意義。與高糖或Ang Ⅱ刺激的p-Genesil-1-vect 細胞相比，高糖或Ang Ⅱ刺激的各組p-Genesil-shRNA 細胞中TGF-β1 表達均降低。

圖2 高糖刺激時各組細胞中TGF-β1 表達的Western blot 檢測

圖3 Ang Ⅱ刺激時各組細胞中TGF-β1 表達的Western blot 檢測

表2 高糖刺激時各組細胞中TGF-β1 表達的Western blot 檢測結果(n=5)

表3 Ang Ⅱ刺激時各組細胞中TGF-β1 表達的Western blot 檢測結果(n=5)

3 討論

EMT 在腎小管-腎間質纖維化中發揮重要作用，其發生發展受TGF-β/Smad 多條信號傳導途徑的調控;TGF-β1 是最為關鍵的促纖維化生長因子，有研究［3］報道TGF-β1 在腎臟纖維化進展過程中發揮了重要作用。TGF-β1 主要在腎臟中表達，由腎小管上皮細胞和腎小球系膜細胞等多種細胞合成和分泌，它不僅可以誘導多種ECM 成分的表達，而且可以通過減少蛋白酶及其激活物的表達，如基質金屬蛋白酶，增加蛋白酶抑制劑以及金屬蛋白酶組織抑制劑來抑制ECM 的降解。另外，TGF-β1 還是強大的免疫調節因子，對巨噬細胞等有強大的趨化作用。因此，TGF-β1 不僅對腎臟纖維化形成過程有重要作用，而且對慢性炎癥的發生發展也可能產生潛在性的影響。因此，沉默TGF-β1 的表達有可能阻斷、逆轉或至少延緩腎臟纖維化的發生［4-7］，有利于對腎臟纖維化發病機制和治療策略進行深入的研究。因此，為了研究參與TGF-β1 誘導腎小管-腎間質纖維化的下游分子，該研究對靶向沉默TGF-β1 表達的方法進行了探索。

隨著RNA 干擾(RNA interference，RNAi)技術在基因功能、腫瘤等研究中的廣泛應用［8-9］，以DNA為模板胞內合成shRNA 表達載體的RNAi 技術為研究提供了更為簡便和實用的方法。shRNA 表達載體導入細胞中后，經過細胞內酶切機制形成siRNA，從而使靶基因沉默數周甚至數月。到目前為止，僅有學者［10］通過siRNA 沉默TGF-β1，觀察了其對大鼠系膜細胞纖維連接蛋白和Ⅳ型膠原的影響，未見以腎小管上皮細胞為研究對象的siRNA 沉默TGFβ1 的相關報道。因此，該研究覆蓋TGF-β1 基因cDNA 全長，設計和制備了靶向沉默TGF-β1 的5 條shRNA，并構建和鑒定了含TGF-β1 shRNA 的p-Genesil-shRNA 真核表達重組質粒。

該研究進結果顯示，與HKC 細胞相比，高糖或AngⅡ刺激的HKC 細胞和p-Genesil-1-vect 細胞中TGF-β1 表達均增高，而后二者之間TGF-β1 表達差異無統計學意義;與高糖或AngⅡ刺激的p-Genesil-1-vect 細胞相比，高糖或AngⅡ刺激的各組p-Genesil-shRNA 細胞中TGF-β1 表達均降低。

綜上所述，作者篩選出1 條可靶向沉默TGF-β1表達的shRNA，為進一步研究參與TGF-β1 誘導腎小管-腎間質纖維化的下游分子奠定了基礎。

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