鄧恩桉不同成熟度組織中rboh基因表達分析

彭麗君，溫小芳，黃真池

（1. 嶺南師范學院生命科學與技術學院，廣東湛江524048；2. 嶺南師范學院應用生物技術研究所，廣東 湛江524048；3. 嶺南師范學院資源植物工程中心，廣東 湛江524048）

鄧恩桉（Eucalyptus dunnii Maiden）是桉樹屬－雙蒴蓋亞屬（subgenus symphyomyrtus）－藍桉組（section Maidenaria）－多枝桉系（series Vim inales）中的速生樹種之一[1]，其木材是良好的紙漿材來源。鄧恩桉幼樹相對其他樹種比較耐寒[2]，因此是培養耐寒桉樹的優選品種。在我國較冷地區推廣鄧恩桉，不僅有巨大的經濟價值，還能為綠化、增施防護林、增加木材產量等作出貢獻。

rboh 基因的表達產物為NADPH 氧化酶，又稱呼吸爆發氧化酶同源蛋白（respiratory burst oxidase homolog，rboh），是一類以細胞質中的NADPH 為電子供體，將氧催化生成活性氧（reactive oxygen species，ROS）的氧化酶[3]。植物在正常生理代謝過程中會產生活性氧，這些活性氧一方面可能會對植物自身造成氧化傷害[4]，另一方面也可能作為信號分子參與細胞周期調控、程序性死亡、激素信號、生物和非生物脅迫反應及生長發育等生命活動的調節[5-7]。已有試驗表明，rboh 基因在擬南芥[8]、煙草[9-10]、馬鈴薯[11]、水稻[12]及玉米[13]的抗病、抗水分等抗脅迫反應中發揮了重要功能。在桉樹中，rboh 基因的表達活性與冷脅迫及抗寒機制有著密切聯系[14]。研究檢測了鄧恩桉不同成熟度組織rboh 基因的表達量，探討了其與鄧恩桉生長分化的聯系，以期為培育耐寒桉樹提供參考。

1 材料與方法

1.1 供試材料

半年生鄧恩桉樹苗（Eucalyptus dunnii Maiden），由湖南森林植物園提供。

1.2 材料的培養與處理

剪取鄧恩桉嫩莖，先用清水沖洗表面灰塵，再用75%酒精表面消毒45 s，然后用20%次氯酸鈉消毒兩次，每次7 m in，最后用無菌水淋洗干凈。將嫩莖切成1 cm 左右的莖段，接種到添加了0.86 μmol/L N-苯基-N- 噻唑基脲（PBU） 和0.57 μmol/L 吲哚乙酸（IAA）的SPCa 培養基中。先暗處培養2 周，再轉移至16 h 光照/8 h 黑暗、50 μmol/m2·s 光強、25±2℃培養箱中繼續培養4 周。

1.3 PCR 分析

1.3.1 總RNA 的提取和反轉錄 用手術刀分別取20 mg 鄧恩桉的成熟葉、不定芽和嫩莖于研缽中研磨。先用1 m l RNAiso-mater for Plant Tissue 處理，再按RNAiso Plua 試劑的操作手冊提取總RNA，溶于30 μL RNAase-free H2O。在10 μL 反應體系中分別加入5×gDNA Eraser Buffer 2 μL、gDNA Eraser 1 μL 和總RNA 1 μg，用RNAase-free H2O 補齊至10 μL 后瞬間離心混勻，30℃反應5 min 以去除總RNA 中殘存的基因組DNA。再在上述反應體系中依次加入5×PrimeScript Buffer 4 μL、PrimeScript RT Enzyme M ix I 1 μL、RT Prime M ix 1 μL 和RNAase-free H2O 4 μL，瞬間離心混勻，37℃反應15 m in，85℃5 S 使酶失活，所得產物為cDNA。上述所用試劑均為寶生生物工程（大連）有限公司產品。

1.3.2 目的基因選擇及引物設計 根據ThePeroxiBase數據庫中巨桉過氧化物酶基因的序列，用primer3 plus軟件設計qPCR 引物。經qPCR 預試驗篩選出3個擴增效率高、特異性好的rboh 基因作為目的基因。根據黃真池等[15]的研究，選擇RTEF 基因作為內參基因。目的基因編號、引物序列及內參基因引物序列見表1。

表1 3種NADPH 氧化酶基因的編號和引物序列及內參基因的引物序列

1.3.3 qPCR 分析rboh 基因 qPCR 反應儀器為Chromo 4TMSystem（Bio-Rad）。以cDNA 溶液進行qPCR。25 μL 反應體系中，添加2 μL cDNA 溶液作模板，每個反應3 次重復。qPCR 程序為：變性94℃9 s，退火58℃9 s，延伸72℃15 s。40個循環后，分析PCR產物的特異性。用Opticon Monitor 3.1 軟件分析各基因的擴增效率、Ct 值。設嫩莖的基因表達量為1，用相對定量的Pfaff1 方法計算各基因的相對表達值。

2 結果與分析

2.1 不定芽的誘導

嫩莖切段接種在SPCa 培養基中，15 d 后不定芽直接從芽原基處長出，呈淺綠色（圖1）。50 d 后，不定芽變得較為粗壯，苗莖伸展，葉子大而舒展。

圖1 鄧恩桉萌發的不定芽

2.2 總RNA 的提取

桉樹組織中多糖、酚類等物質含量豐富，嚴重干擾了RNA 的提取。經RNAiso-mate for Plant Tissue 預處理，再用RNAiso Plus 抽提，均可從鄧恩桉不定芽、嫩莖和成熟葉中提取出高質量的RNA。經NanoDrop 2000c 紫外分光光度法檢測，樣品OD260/OD280為1.9～2.05。瓊脂糖凝膠電泳結果顯示，總RNA 條帶清楚、完整，無明顯降解，且無可見的DNA 污染（圖2）。

2.3 rboh 基因和內參基因的擴增特異性分析

圖2 3種鄧恩桉組織總RNA 的瓊脂糖凝膠電泳結果

由圖3 可知，rboh 基因和內參基因的融鏈曲線均只有1個特征峰值，RTEF、rboh2、rboh3 和rboh4 基因的融鏈溫度分別為82、86、85、82℃，說明qPCR 擴增特異性好。

圖3 rboh 基因和RTEF 基因qPCR 融鏈溫度

2.4 rboh 基因表達

設嫩莖的基因表達量為1，qPCR 檢測得到了鄧恩桉3種不同成熟度組織中rboh2、rboh3 和rboh4 的相對定量表達結果（圖4）。這3個基因在成熟葉組織中的表達量最高，嫩莖次之，不定芽的表達量最低。其中成熟葉中的rboh2 基因的表達量約為不定芽中的5倍，成熟葉中rboh4 基因的表達量約為不定芽中的3倍。3個rboh 基因在不同成熟度組織中的轉錄水平由強到弱依次為成熟葉>嫩莖>不定芽。

圖4 鄧恩桉不定芽和成熟葉相對于嫩莖中的rboh 基因轉錄水平

3 結論與討論

活性氧作為植物的代謝中間產物，不僅影響植物各器官（根、莖、葉、花、果實、種子）的生長發育[16]，并且與其他信號分子如水楊酸[17-20]、NO[17,21]等共同調節植物的各種生理活動。實驗證明，NADPH 氧化酶是植物細胞活性氧產生的主要酶類之一[22-27]，即rboh 基因是調節植物各種生理活動的關鍵基因。影響rboh 基因表達的因素有很多，水分脅迫、重金屬脅迫、鹽脅迫、高低溫脅迫等都能影響和調節rboh 基因的表達和ROS 的積累[28]。試驗表明，在適宜的生長條件下，隨著植物生長發育程度的不同，rboh 基因的表達量也會有所差異，即鄧恩桉rboh 基因的表達受組織分化程度的影響。

桉樹的抗寒機制相當復雜，不僅受過氧化物的影響，還受原生質膜透性、膜脂成分、保護酶以及可溶性物質等的影響[29]。rboh 基因在鄧恩桉抗寒代謝中是如何起作用的，其是否對鄧恩桉抗寒代謝起關鍵作用，這些問題有待于進一步開展遺傳轉化方面的研究。

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