胡 梅,鮑翠玉,駱曉艷
(湖北科技學院,湖北 咸寧 437100)
糖尿病心肌病(diabetic cardiomyopathy,DCM)是一種獨立于冠狀動脈粥樣硬化性心臟病、高血壓性心臟病、心臟瓣膜病及其它心臟病的特異性心肌疾病,它是糖尿病患者常見的心血管并發癥之一,與糖尿病患者心力衰竭發生率和死亡率密切相關。現已引起臨床醫生和流行病學專家高度的重視。目前關于DCM 各方面的報道很多,其確切發病機制不是很清楚,也沒統一的治療方案。高糖血癥是引起DCM 的主要病因,研究表明[1,2],炎癥反應在DCM 的發生與發展中起著重要作用。吡格列酮(pioglitazone,PGZ)是臨床上常用的一種新型降糖藥,研究證明[3],它不僅能降低血糖而且對組織器官有抗氧化、抗炎等保護作用。目前關于PGZ 對糖尿病心肌的抗炎作用尚少見報道,本實驗通過體外培養乳鼠原代心肌細胞,觀察PGZ 對高糖培養下的心肌細胞的炎癥因子影響,探討PGZ 對DCM 的保護作用可能機制。
1.1 材料
1.1.1 實驗動物 清潔級健康SD 新生大鼠,出生0~3d,雌雄不拘。由武漢大學實驗動物中心提供(NO.42000500004462)。
1.1.2 主要實驗試劑 PGZ 原粉劑(中國食品藥品檢定研究院),DMEM 粉狀培養基(Gibco),胎牛血清(Gibco),炎癥因子檢測ELISA 試劑盒(欣博盛公司),細胞核蛋白與細胞漿蛋白抽提試劑盒(碧云天生物),單克隆p38 抗體,單克隆磷酸化p38 抗體,單克隆p65 抗體均購自Cell Signaling Technology。
1.2 實驗方法
1.2.1 乳鼠心肌細胞的培養 取出生0~3d 的乳鼠若干只,用75%的酒精消毒表面皮膚,隨后迅速取出心臟并置于4℃預冷的D-Hank’s 液中洗凈污血,用眼科剪減去心臟周圍的大血管和組織,將心臟剪碎大約1~2mm2大小,用胰酶與Ⅱ型膠原酶混合消化10min,收集上清液,常溫下1000rpm,10min 離心,去掉上清,收集離心管下面的沉淀即所得細胞,采用差速貼壁法純化心肌細胞。最后將細胞接種于含有20% 的胎牛血清DMEM 培養液中,并置于CO2培養箱常規培養。
1.2.2 實驗分組及給藥方法 將分離的乳鼠原代心肌細胞培養48h 首度換液,倒置顯微鏡下觀察細胞長勢,待其細胞長至90%融合時,將細胞分成以下幾組并同時給藥處理,正常對照組:5.5mmol/L 的葡萄糖DMEM 培養基加25mmol/L的甘露醇;高糖模型組:30mmol/L 的葡萄糖DMEM 培養基;低劑量組:30mmol/L 的葡萄糖的DMEM 培養基加入終濃度為10μmol/L 的PGZ;高劑量組:30mmol/L 的葡萄糖的DMEM 培養基加入終濃度為20μmol/L 的PGZ;以上各組細胞均繼續培養48h 后進行以下指標測定。
1.2.3 乳酸脫氫酶(LDH)含量的測定 取培養后心肌細胞的上清液,用LDH 試劑盒檢測,嚴格按照說明書操作,細胞培養液中LDH 的含量作為判斷心肌細胞受損程度指標。
1.2.4 炎癥因子IL-6 和TNF-α 含量的測定 取培養后心肌細胞的上清液,用ELISA 試劑盒檢測,該指標用來判斷高糖誘導下心肌細胞內的炎癥因子水平的變化。
1.2.5 乳鼠心肌細胞內轉錄因子NF-κB 的活性檢測 分析NF-κB 的活性采用Western blot 檢測細胞核內NF-κB p65 蛋白表達量,H3 作為核內參,核蛋白的提取嚴格按試劑盒說明書操作。
1.2.6 乳鼠心肌細胞內P38MAPK 的蛋白水平測定 采用Western blot 方法分別檢測磷酸化蛋白(P-P38)與P38MAPK 蛋白的表達量,并用P-P38/P38 作為判斷P38MAPK 的激活狀況。
1.3 統計學分析 數據用SPSS 17.0 統計軟件處理,計量資料以均數±標準差表示,組間差異用兩樣本均數的t 檢驗進行比較,兩組以上比較采用單因素方差分析作統計學處理。P <0.05 為差異有顯著性,P <0.01 為差異有極顯著性。
2.1 各組細胞培養液中LDH 的含量 在高糖環境下,心肌細胞培養液中LDH、IL-6 和TNF-α 的含量顯著上升,而給予PGZ 處理后,能明顯的抑制LD、IL-6 和TNF-α 的改變,各組間比較有顯著性差異(P <0.05)。見表1。

表1 高糖刺激和PGZ 處理對乳鼠心肌細胞培養液中LD、IL-6 和TNF-α 含量的影響
2.2 NF-κB 活性的檢測結果 細胞在高糖的誘導下,心肌細胞核內的NF-κB p65 蛋白表達水平明顯高于正常組,且差異有顯著性意義,經PGZ處理后,能有效的抑制高糖對p65 蛋白表達量改變。見圖1。

圖1 高糖刺激和PGZ 處理對乳鼠心肌細胞胞核NF-κB p65 蛋白表達量的影響
2.3 乳鼠心肌細胞內P38MAPK 蛋白表達量的結果 高糖組P-P38 相對蛋白量與正常組比較呈明顯上升趨勢,且兩組間差異成顯著性,經藥物處理后,上述上升的趨勢得到有效的逆轉。見圖2。

圖2 高糖刺激和PGZ 處理對乳鼠心肌細胞p38 蛋白表達量的影響
多種機制共同參與了DCM 的病理生理過程,包括氧化應激、炎癥反應、心肌細胞凋亡、細胞間質纖維化及左心室肥厚,其中炎癥反應與氧化應激起著最上游的級聯調控作用[4]。廣泛研究證明了在糖尿病心肌組織中可見大量炎癥因子水平上升,本實驗也發現,乳鼠心肌細胞在高糖的誘導下,培養液中炎癥因子IL-6 和TNF-α 的含量明顯高于其它組,與此同時,高糖組培養液中LDH 的活性也增加,說明心肌細胞受損引起LDH 外漏,以上表明高糖能誘導原代心肌細胞產生炎癥性損傷。
NF-κB 是重要的轉錄調節蛋白,P50/P65 是其常見的異源二聚體,NF-κB 激活后與抑制蛋白(IKB)解離,從胞漿移至胞核并與其特異的啟動子結合來調控相關的基因表達。研究報道[5]它能調控炎癥因子:IL-1、IL-6、TNF-α、VCAM-1 等的基因表達。心肌細胞表達促炎因子受體、IL-1、TNFα 及IKK(核因子抑制物激酶)復合體均需要NFκB 信號的活化。體內外研究表明[6],在糖尿病心肌損傷中可見NF-κB 的活化程度明顯的上升。本次實驗我們也發現,與正常組對比高糖組心肌細胞核內NF-κB p65 蛋白表達量顯著升高,說明在高糖誘導下轉錄因子被激活后發生了核移位,在核內進一步調控炎癥因子的基因表達,致使培養液中炎癥因子 IL-1、TNF-α的水平上升。P38MAPK(絲裂原活化蛋白激酶)參與了多種信號通路的調控,Ulivi 等[7]的研究結果顯示,在軟骨細胞中P38MAPK 的激活可促進NF-κB 的活化,當給予P38MAPK 特異性抑制劑SB203580 后P38MAPK 和NF-κB 的活化都受到抑制。研究發現[8]p38MAPK 信號通路的激活進能促進IκBɑ(核因子NF-κB 抑制蛋白)磷酸化和降解,從而直接激活NF-κB 通路。而在糖尿病心肌病中對此通路研究甚少,本實驗我們發現高糖組心肌細胞的P-P38/P38 比值明顯升高,說明該組P38MAPK 通路已明顯激活,因此有可能在糖尿病心肌病中通過P38MAPK/NF-κB 這條信號通路來調節心肌細胞中炎癥反應。
PGZ 是噻唑烷二酮類降糖藥,屬胰島素增敏劑,作用機制與胰島素的存在有關,可減少外周組織和肝臟的胰島素抵抗,增加依賴胰島素的葡萄糖的處理,并減少肝糖的輸出。PGZ 除了有降血糖作用外對組織器官還有它保作用,特別是對心肌組織。研究發現,PGZ 能改善心肌左室肥大、心肌纖維化、心室舒張期功能障礙和氧化應激。最近有發現PGZ 有抗炎癥作用。劉亭亭[9]等用PGZ 處理炎癥性腸病小鼠后,發現與對照組相比小鼠血清中炎癥因子TNF-α、C-反應蛋白的水平明顯下降。本實驗我們發現細胞經PGZ 處理后培養液中 LDH 的活性、炎癥因子的含量、P38MAPK 蛋白表達量以及NF-κB 的活化程度都得到有效的逆轉,說明PGZ 能保護高糖誘導下心肌細胞的損傷,其保護作用機制可能抑制P38/NF-κB 通路的激活來減少炎癥反應的產生,低劑量與高劑量組間沒差異,說明PGZ 對心肌細胞的保護成一定的劑量依賴性。
綜上所述,高糖可促進心肌細胞的炎癥因子的產生增多,并對心肌細胞形成炎癥性損傷,PGZ處理細胞后,對高糖下的心肌細胞有明顯的保護作用,其作用機制可能與p38MAPK/NF-κB 此條信號通路有關。心肌細胞中的炎癥反應能引起多種病理變化,最終導致心力衰竭的發生,嚴重影響糖尿病患者的生活質量,如果能夠抑制心肌細胞的炎癥反應,對心肌細胞是一種非常有效的保護方法,將成為臨床上治療DCM新的策略。本實驗結果顯示,PGZ對高糖誘導的乳鼠心肌細胞的炎癥反應有一定的保護作用,這將為臨床上開發新一代防治糖尿病心肌病的藥物提供了實驗依據。
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