彭 瀛, 周廣亮, 沈明花
(延邊大學 醫學院,吉林 延吉 133000)
血管內皮細胞不僅作為血液與血管平滑肌之間的機械屏障,而且又是機體最大的內分泌器官[1],在調節血管緊張度、抗血小板聚集以及抗凝促纖溶等過程中起著重要的作用,其抗栓作用越來越受到重視。血栓是血液中纖維蛋白多聚體與細胞組成的復合物,其形成與諸多因素有關,其中,血管內皮細胞的損傷與血栓形成密切相關。血管內皮細胞的過度凋亡是血栓形成的重要原因。
榆干離褶傘(Lyophyllum ulmarium),又名大榆蘑。屬擔子菌亞門、層菌綱、傘菌目、口蘑科、離褶傘屬。據文獻報道,其發酵液具有抗氧化[2]、溶栓[3]作用。作者主要探討榆干離褶傘發酵液對血管內皮細胞的保護作用,為榆干離褶傘的溶栓機制提供依據。
1.1.1 樣品的制備 榆干離褶傘菌種:由韓國益山大學特種作物加工實驗室提供。在25℃、150 r/min液體深層二級培養15 d。將發酵液用紗布過濾,收集濾液以3 000 r/min離心15 min,將上清液進行冷凍干燥,得樣品。
1.1.2 細胞株 人臍靜脈內皮細胞(Human Umbilical Vein Endothelial Cells,HUVEC): 購自北京宏寶達生物科技有限公司
1.1.3 試劑 MTT和DMSO:Sigma公司;Annexin-V-Fluos試劑盒:美國Roche公司;DMEM培養基:Gibco公司;胎牛血清和胰酶:華美生物工程公司;兔抗 bcl-2、bax、Caspase-3 和 Caspase-9 抗體:美國Santa Cruz公司;LDH試劑盒:南京建成生物技術有限公司。
倒置顯微鏡:日本日立公司;酶標儀:日本島津公司;流式細胞儀:Beckman公司。
1.3.1 細胞培養 將HUVEC在37℃、5%CO2條件下常規培養于含10%胎牛血清的DMEM培養液中。待細胞長滿至80%時更換為無血清培養基,做以下實驗并進行相應指標的測定。
1.3.2 MTT法檢測LU發酵液的細胞毒性作用 取對數生長期的細胞,將細胞密度調整為5×104/L,接種于96孔培養板,每孔200 μL。待細胞貼壁后,分4組,分別為空白對照組、低、中、高劑量LU發酵液用藥組,每組設6個復孔。用藥組分別加入終質量濃度為20、40、80 mg/L的LU發酵液,而空白對照組加相應體積的培養基。各組分別培養24、48 h后每孔加入預先配制的MTT液20 μL,37℃繼續孵育4 h。吸去每孔培養液,每孔加入150 μL DMSO,振蕩5 min后,在波長490 nm處測定各孔光吸收值(A),按下列公式計算細胞存活率:

1.3.3 LU發酵液對H2O2所致損傷細胞存活率的影響 取前述傳代細胞接種到96孔板中,分為正常對照組、模型組和發酵液低(20 mg/L)、中(40 mg/L)、高(80 mg/L)劑量用藥組,每組設6個復孔。首先用藥組以低、中、高劑量發酵液預處理細胞24 h,正常對照組和模型組以無血清培養基代替。24 h后,除正常對照組外其余各組均加入終濃度為200 μmol/L的H2O2,繼續培養4 h后按方法1.3.2進行MTT檢測。
1.3.4 細胞上清液LDH的測定 收集各組上清液以測LDH活性。
1.3.5 流式細胞術測定細胞凋亡率 將細胞接種于6孔板,分組及處理同1.3.3。培養24 h后,用胰酶消化并收集細胞,用PBS沖洗兩次,調整細胞數1×106個。按美國Roche公司提供的試劑盒說明書操作,進行流式細胞儀凋亡檢測。
1.3.6 Western Blot法檢測 Bax、Bcl-2、Caspase-9和Caspase-3蛋白質的表達 分組及處理方法同1.3.3。分別收集各組細胞,提取總蛋白,參照文獻[4]方法進行電泳、轉膜、顯影及定影。
用SPSS統計軟件處理,進行單因素方差分析,數據用xˉ±s表示。
與正常組相比,中、高劑量組處理HUVEC 24、48 h后細胞活力高于正常組,這就說明用藥劑量范圍內LU發酵液對正常內皮細胞無毒性作用,反而促進細胞的增殖,見表1。
如表2所示,模型組細胞存活率顯著低于正常組,LDH活性顯著高于正常組,說明H2O2作用以后損傷或死亡的內皮細胞數增多。用LU發酵液預處理以后,中、高劑量組細胞活力顯著高于模型組,且高劑量組的LDH活性顯著低于模型組,這就提示LU發酵液具有保護HUVEC的作用。

表1 LU發酵液對正常HUVEC存活率的影響Table 1 Effect of LU fermentation broth on survival rates of HUVECs

表2 LU發酵液對損傷細胞存活率及LDH的影響Table 2 Effect of LU fermentation broth on surviaval rates and LDH of cells with injury
圖1中A~E均為由四個象限組成的細胞直方圖,每個圖中左下象限代表正常細胞群(An-PI-),右下象限代表早期凋亡細胞群(An+PI-),右上象限代表晚期凋亡細胞和壞死細胞(An+PI+),左上象限代表為非特異死亡細胞(An-PI+)。與正常組相比,模型組凋亡率(47.24%)顯著增多,說明H2O2誘導的HUVEC凋亡模型制備成功。各劑量用藥組凋亡數明顯減少(p<0.05),但無量效關系。
如圖2所示,與正常組比較,模型組Bax、Caspase-9和Caspase-3基因表達顯著增加,而Bcl-2基因表達變化不明顯。與模型組比較,各劑量用藥組Bax、Caspase-9和Caspase-3基因表達減少,而Bcl-2基因表達增多。

圖1 LU發酵液對HUVEC細胞凋亡的影響Fig.1 Effect of LU fermentation broth on apoptosis of HUVEC
MTT法常用于生物活性因子的活性檢測。本實驗中所用的劑量范圍內榆干離褶傘發酵液對HUVEC無細胞毒性,促進HUVEC的增殖。過氧化氫誘導HUVEC損傷后細胞存活率顯著下降,而用榆干離褶傘發酵液預處理時,其存活率明顯增高,這就提示榆干離褶傘發酵液對HUVEC的氧化損傷有保護作用。我們曾報道過榆干離褶傘發酵液的抗氧化作用[2],由此可認為榆干離褶傘發酵液對HUVEC的保護作用與其抗氧化作用密切相關。當過氧化氫作用于HUVEC后,導致細胞的氧化損傷,由此細胞的完整性遭到破壞,引起細胞膜的通透性增加,導致細胞上清液LDH活性增加。以榆干離褶傘發酵液處理細胞后,因它對細胞有保護作用,所以用藥組細胞上清液的LDH活性明顯降低。

圖2 LU發酵液對Bax、Bcl-2、Caspase-9和 Caspase-3蛋白質的表達的影響Fig.2 Effect of LU fermentation broth on the protein expression of bcl-2,bax,caspase-3 and caspase-9
為了進一步探討榆干離褶傘發酵液對HUVEC的保護作用機制,用過氧化氫誘導細胞凋亡模型,觀察了榆干離褶傘對凋亡的影響。實驗結果顯示,模型組凋亡率47.24%,而用藥組凋亡率明顯下降,分別為18.1%、19.62%、13.47%,這就說明榆干離褶傘具有抑制凋亡的作用。在細胞凋亡調控的眾多基因中,Bcl-2和Bax是關鍵基因,其中BcI-2是凋亡抑制的基因,而Bax是凋亡促進基因。而當Bax在細胞內超表達時,Bax/Bax同源二聚體的數量明顯增多,細胞對死亡信號的反應性增強,啟動凋亡;而當Bcl-2高表達時,則Bax/Bax二聚體大量解離,生成更為穩定的Bcl-2/Bax異源二聚體,對抗其誘導凋亡的作用[5]。本實驗中,經過氧化氫誘導細胞凋亡后,模型組的Bax表達比正常組明顯增多;在用藥組中其表達量隨著劑量的增加逐漸減少,而Bcl-2的表達逐漸增多,這就提示榆干離褶傘發酵液可拮抗由過氧化氫引起的細胞凋亡。研究證實,H2O2主要通過激活經典的線粒體途徑誘導細胞凋亡[6]。在線粒體通路凋亡途徑中,當細胞受到過氧化氫等氧化應激刺激時,線粒體膜通透性增加,釋放出細胞色素 C,并與細胞凋亡激活因子 1(Apoptotic protease activating factor l,Apaf-)結合, 并活化Caspase-9的前體,進而激活Caspase-3,進而誘導細胞凋亡[7]。有文獻報道,Bax是在線粒體外膜通過形成離子通道方式促進細胞色素C等蛋白質分子釋放[8]。本實驗結果顯示,與正常組比較,模型組Caspase-9和Caspase-3明顯增加,表明過氧化氫通過影響Bax基因的表達,促進線粒體釋放大量的包括細胞色素C在內的蛋白質,誘導Caspase的激活。用榆干離褶傘發酵液預處理后,Bax/Bcl-2比值下降,Caspase-9和Caspase-3基因表達減少,這就提示榆干離褶傘發酵液可能通過抑制或阻斷線粒體凋亡通路,對血管內皮細胞起保護作用,而這種保護作用有可能作為它的溶栓作用機制之一。
[1]Pries A R,Kuebler W M.Normal endothelium[J].Handb Exp Pharmacol,2006,176(ptl):1-40.
[2]孫權,沈玉秀,沈明花.榆干離褶傘發酵液體外抗氧化性能研究[J].食品科技,2010,35(1):223-225.SUN Quan,SHEN Yuxiu,SHEN Minghua.Study on the antioxidant activity of Lyophyllum ulmarium medea in vitro[J].Food Science and Technology,2010,35(1):223-225.(in Chinese)
[3]沈明花,彭瀛,宋曉琳.榆干離褶傘發酵液的溶栓作用與降血脂作用研究[J].食品與發酵工業,2011,37(10):28-30.SHEN Minghua,PENG Ying,SONG Xiao-lin.Studies on fibrinolytic and hypolipidemic function of Lyophyllum ulmarium fermentation broth[J].Food and Fermentation Industries Editorial Staff,2011,37(10):28-30.(in Chinese)
[4]He Y,Luo Y,Tang S,et al.Critical function of Bmx/Etk in ischemia-mediated arteriogenesis and angiogenesis[J].J Clin Invest,2006,116(9):2344-55.
[5]Tsukahara S,Yamamoto S,Tin-Tin-Win-Shwe,et al.Inhalation of low-level formaldehyde increases the Bcl-2/Bax expression ratio in the hippocampus of immunologically sensitized mice[J].Neuroimmunomodulation,2006,13(2):63-68.
[6]郝旭亮.羅布麻總黃酮抗血栓作用物質基礎及抗人臍靜脈血管內皮細胞凋亡作用機理研究[D].太原:山西醫科大學,2009.
[7]Eskes R,Desagher S,Antonsson B,et al.Bid induces the oligomerization and insertion of Bax into the outer mitochondrial membrane[J].Mol Cell Biol,2000,20(3):929-935.
[8]Chipuk J E,Kuwana T,Bouchier-Hayes L,et al.Direct activation of Bax by p53 mediates mitochondrial membrane permeabilization and apoptosis[J].Science,2004,303(5660):1010-1014.