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正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)選水楊梅中總黃酮的提取工藝

2014-12-23 01:01:26陳程馮鎖民
應(yīng)用化工 2014年10期
關(guān)鍵詞:黃酮工藝影響

陳程,馮鎖民

(西安醫(yī)學(xué)院 藥學(xué)院,陜西 西安 710021)

水楊梅(Geum aleppicum)為薔薇科(Rosace-ae)水楊梅屬(Geum)多年生草本植物,主要分布于我國西北、華北、東北等地區(qū)[1]。民間以其全草或根入藥,具有清熱解毒、利尿、消腫止痛之功效[2]。水楊梅醇提物對(duì)白血病和宮頸癌細(xì)胞有一定抑制作用[3]。從該屬植物中分離到的化合物有鞣質(zhì)、三萜、黃酮等[4]。篩選抗氧化活性中藥的研究表明,水楊梅的總酚和總黃酮含量較高,體外消除自由基能力強(qiáng),對(duì)CCl4所致小鼠急性肝損傷具有一定的保護(hù)作用[5-6]。本文采用正交實(shí)驗(yàn)法對(duì)水楊梅中黃酮類化學(xué)成分的提取工藝進(jìn)行優(yōu)選,為水楊梅中黃酮類化合物的利用與開發(fā)提供科學(xué)依據(jù)。

1 實(shí)驗(yàn)部分

1.1 材料與儀器

水楊梅,采自陜西秦嶺山區(qū)紅河谷,經(jīng)西安醫(yī)學(xué)院藥學(xué)院生藥教研室鑒定為薔薇科(Rosace-ae)水楊梅屬(Geum)植物水楊梅(Geum aleppicum),植物經(jīng)陰干后粉碎備用;蘆丁(批號(hào)100080-200707,中國藥品生物制品鑒定所);蒸餾水;乙醇,分析純。

UV-2102PCS 型紫外可見分光光度計(jì);RE-2000A 型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器;BP211D 天平。

1.2 分析方法[7]

1.2.1 對(duì)照品溶液的制備精密稱取蘆丁對(duì)照品適量,加入70%乙醇溶解并定容,制成0.234 mg/mL的對(duì)照品溶液,放置4 ℃保存。

1.2.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備分別精密取對(duì)照品溶液0.5,1.0,1.5,2.0,2.5,3.0 mL 于25 mL 容量瓶中,分別加70%乙醇5 mL。精密加入5% NaNO2溶液0. 3 mL,搖勻,放置5 min。精密加入 10%Al(NO3)3溶液0.3 mL,搖勻,放置5 min。再加4%NaOH 溶液4 mL,分別用70%乙醇定容至刻度,搖勻,放置5 min。在520 nm 處測定吸光度,以蘆丁溶液濃度C(mg/mL)為橫坐標(biāo),吸光度A 為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。線性回歸得方程Y = 20. 012 7X-0.010 11,r2=0.999 3(n=6),說明線性關(guān)系良好。

1.3 實(shí)驗(yàn)方法[8]

稱取藥材10 g,置于500 mL 圓底燒瓶中,加入70%乙醇100 mL 提取1 h,測定總黃酮含量。

1.4 總黃酮含量測定

回收提取液中的乙醇,水浴蒸干,精密稱取殘?jiān)?0 mg,置于100 mL 容量瓶中,加70%乙醇超聲處理30 min,取出,冷卻,用70%乙醇定容,搖勻。在520 nm 處測定吸光度,并計(jì)算總黃酮含量。

2 結(jié)果與討論

2.1 乙醇濃度對(duì)總黃酮含量的影響

按1.3 條件實(shí)驗(yàn),乙醇濃度的影響見圖1,70%乙醇提取時(shí)總黃酮含量最大。

圖1 乙醇濃度對(duì)總黃酮含量的影響Fig.1 Effect of ethanol concentration on the yield of total flavones

2.2 提取時(shí)間對(duì)總黃酮含量的影響

稱取藥材4 份,每份10 g,分別置于500 mL 圓底燒瓶中,加入60%乙醇100 mL 進(jìn)行提取,測定總黃酮含量,結(jié)果見圖2。提取時(shí)間為2.5 h 時(shí)總黃酮含量最大。

圖2 提取時(shí)間對(duì)總黃酮含量的影響Fig.2 Effect of time on the yield of total flavones

2.3 溶劑用量對(duì)總黃酮含量的影響

分別稱取藥材5 份,每份10 g,分別置于500 mL圓底燒瓶中,加入60%乙醇,提取時(shí)間1 h,測定總黃酮含量,結(jié)果見圖3。溶劑用量為10 倍時(shí)總黃酮含量最大。

圖3 溶劑用量對(duì)總黃酮含量的影響Fig.3 Effect of volume on the yield of total flavones

2.4 提取次數(shù)對(duì)總黃酮含量的影響

分別稱取藥材5 份,每份10 g,分別置于500 mL圓底燒瓶中,加入60%乙醇100 mL 提取1 h,測定總黃酮含量,結(jié)果見圖4。提取3 次時(shí)總黃酮含量最大。

圖4 提取次數(shù)對(duì)總黃酮含量的影響Fig.4 Effect of times on the yield of total flavones

2.5 正交實(shí)驗(yàn)[9]

根據(jù)單因素考察結(jié)果,進(jìn)行L9(34)正交實(shí)驗(yàn),因素水平見表1,結(jié)果見表2,方差分析見表3。

表1 因素水平Table 1 Factors and levels

表2 L9(34)正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 2 Results of L9(34)orthogonal test

表3 方差分析表Table 3 Analysis of variance

由表2 可知,各因素對(duì)總黃酮含量的影響程度依次為B(提取次數(shù))>C(提取時(shí)間)>D(溶劑用量)>A(乙醇濃度),各因素對(duì)干膏得率的影響程度依次為B(提取次數(shù))>D(溶劑用量)>A(乙醇濃度)>C(提取時(shí)間)。由表3 可知,提取次數(shù)(B)對(duì)總黃酮和干膏得率有顯著性影響(P <0.05),且提取次數(shù)的第3 水平均較第1、2 水平更優(yōu),故選用B3。溶劑用量(D)對(duì)干膏得率有顯著性影響(P <0.05),且溶劑用量的第2 水平較第1、3 水平更優(yōu),故選擇D2。乙醇濃度(A)和提取時(shí)間(C)對(duì)總黃酮和干膏得率均無顯著性影響,出于節(jié)省考慮,選擇A1C1。綜上所述,確定最佳提取工藝為A1B3C1D2,即10 倍量的60%乙醇提取3 次,每次2 h。

按照上述最佳提取工藝進(jìn)行3 次平行實(shí)驗(yàn),結(jié)果見表4。

由表4 可知,總黃酮平均含量為6.58 mg/g,高于正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果的最大值,干膏得率平均值18.83%,與正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果的最大值相當(dāng),說明最佳工藝合理可行。

3 結(jié)論

采用正交實(shí)驗(yàn)法對(duì)水楊梅中黃酮類化學(xué)成分的提取工藝進(jìn)行優(yōu)選,確定最佳提取工藝為10 倍量的60% 乙醇提取3 次,每次2 h。為水楊梅中黃酮類化合物的利用與開發(fā)提供科學(xué)依據(jù)。

[1] 中國科學(xué)院中國植物志編輯委員會(huì). 中國植物志:37 卷[M].北京:科學(xué)出版社,1985:221-223.

[2] 《全國中草藥匯編》編寫組. 全國中草藥匯編[M]. 北京:人民衛(wèi)生出版社,1975:608-609.

[3] 白雪,林晨,李藥蘭,等.水楊梅和水團(tuán)花萃取物體外抑菌活性的實(shí)驗(yàn)研究[J]. 中草藥,2008,39(10):1532-1535.

[4] Liu H W,Li J K,Zhao W H,et al.Fatty acid synthese inhibitors from Geum japonicum Thunb. var. chinense[J].Chemis & Biodiversity,2009,6(3):402-410.

[5] Xu H X,Zeng F Q,Wan M,et al.Anti-HIV iterpeneacids from Geum japonicum[J].J Nat Prod,1996,59(7):643-645.

[6] 張培成.黃酮化學(xué)[M]. 北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2008:364-377.

[7] 冉曉燕,胡德禹,薛偉.槐角中總黃銅的提取工藝研究[J].貴州教育學(xué)院學(xué)報(bào),2009,20(6):22-24.

[8] 唐前,羅燕英,唐玲,等.正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)選金花茶種子總多酚的最佳提取工藝[J]. 時(shí)珍國醫(yī)國藥,2010,21(4):792-793.

[9] 賀紅軍,邱宗蔭.正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)選茅莓總皂苷的提取工藝[J].中國藥房,2012,23(7):611-613.

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