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高效液相色譜法測定上清丸中大黃酸大黃素大黃酚的含量

2014-10-21 15:55:33廖楊玲

廖楊玲

【摘要】目的:建立以HPLC法測定上清丸中大黃酸、大黃素、大黃酚含量的方法。方法:采用Symmetry C18柱,以甲醇-0.1%磷酸=80:20為流動相,檢測波長:430nm,流速1.0mL?min-1,柱溫:室溫。結(jié)果:大黃酸、大黃素、大黃酚分別在7.92~79.2ng(r=0.9998)、14.5~145ng(r=0.9991)、27.24~272.4ng(r=0.9994)線性關(guān)系良好,平均加樣回收率分別為99.7%、99.2%、99.4%,RSD分別為0.95%、1.25%、1.27%。結(jié)論:本方法操作簡便、靈敏度高、重現(xiàn)性好,適用于上清丸中大黃酸、大黃素和大黃酚的含量測定。

【關(guān)鍵詞】高效液相色譜法;上清丸; 大黃酸、大黃素、大黃酚

【Abstract】Objective: To establish a HPLC for determination of rhein、emodin、chrysophanol in Shangqing Pills. Method: A Symmetry C18 Column was used. The mobile phase was methanol-0.1% Phosphoric Acid =80:20, the detecting wavelength was at 430nm,the flow rate was 1.0mL?min-1,the column temperature was room temperature. Result: The linear relationship of rhein、emodin、chrysophanol were 7.92~79.2ng(r=0.9998)、14.5~145ng(r=0.9991)、27.24~272.4ng(r=0.9994), the recoveries were 99.7%, 99.2%, and 99.4%,respectively, the RSD were 0.95%, 1.25%, and 1.27%,respectively. Conclusion: This method was easy and simple to handle, has good repeatability, flexibility and high sensitivity. It can be used for the determination of rhein、emodin、chrysophanol in Shangqing pills.

【key words 】HPLC; Shangqing pills; rhein; emodin; chrysophanol

【中圖分類號】R927.2 【文獻標(biāo)識碼】B【文章編號】1004-4949(2014)07-0007-01

上清丸由菊花、白芷、黃芩、黃柏等12味藥而制成的大蜜丸,收載于《衛(wèi)生部藥品標(biāo)準中藥成方制劑第十冊》,具有清熱散風(fēng)、解毒、通便等功效,對頭暈耳鳴、目赤、鼻竇炎、通便等有很好的作用[1]。目前的標(biāo)準中只有丸劑的通則檢查,尚無定性定量指標(biāo),而目前的文獻報道主要對其方中的大黃、黃柏進行定性鑒別[2],或者對黃芩苷[2]、小檗堿[3]進行含量控制,但為了有效控制質(zhì)量,我們認為控制方中主藥大黃中的大黃酸、大黃素和大黃酚的含量更有意義。我們查閱相關(guān)文獻[4-9]并改進,采用高效液相色譜法測定上清丸中大黃酸、大黃素和大黃酚的含量,現(xiàn)報道如下。

1.儀器與試藥

美國Waters高效液相色譜儀(1525二元泵,2487雙通道檢測器,717自動進樣器,Empower色譜工作站);色譜柱:Symmetry C18(4.6mm×150mm,5μm)。SG3300HP超聲波清洗器(上海冠特超聲儀器有限公司); KQ3000超聲波清洗器(昆山舒美超聲儀器有限公司);WX-80A微型旋渦混合儀(上海滬西儀器有限公司);BT25S電子天平(精度0.01mg,德國賽多利斯科學(xué)儀器有限公司);FA1104電子天平(精度0.1mg,上海舜宇恒平儀器有限公司)。

大黃酸對照品(批號:0757-200206)、大黃素對照品(批號:110756-200110)、大黃酚對照品(批號:110796-200412)均購自中國藥品生物制品檢定所,均為供含量測定用。上清丸產(chǎn)自湖南XX制藥股份有限公司(批號:20120906、20121101、20130305,規(guī)格:9克?丸-1);甲醇、磷酸為色譜純,水為超純水;其他試劑為分析純。

2、方法與結(jié)果

2.1色譜條件

色譜條件:Symmetry C18(4.6mm×150mm,5μm),流動相:甲醇-0.1%磷酸=80:20;流速:1.0mL?min-1;檢測波長:430nm;柱溫: 室溫;進樣量:10μL。

2.2溶液的制備

2.2.1對照品溶液的制備分別精密稱取經(jīng)五氧化二磷減壓干燥至恒重的大黃酸、大黃素、大黃酚對照品4.46、8.25、13.62 mg,分別置100 mL容量瓶中,加甲醇溶解并稀釋至刻度,搖勻,作為儲備液。精密量取大黃酸、大黃素、大黃酚對照品儲備液各1 mL,置同一10 mL容量瓶中,加甲醇稀釋至刻度,搖勻,制成含大黃酸、大黃素、大黃酚4.46、7.25、13.62 μg?mL-1的混合對照品溶液。

2.2.2供試品溶液的制備取本品20丸,剪碎,取約3g,精密稱定,置錐形瓶中,精密加入甲醇50mL,稱定重量,加熱回流1小時,冷卻,再稱定重量,用甲醇補足減失的重量,搖勻,濾過,精密量取5ml,置錐形瓶中,蒸干,殘渣加2.5mol/L硫酸溶液10 mL,超聲處理(功率300W,頻率50kHz)5min,再加三氯甲烷10mL,置水浴上加熱回流1h,立即冷卻,用少量三氯甲烷洗滌容器,并入分液漏斗中,分取三氯甲烷層,酸液再用三氯甲烷提取三次,每次10mL,合并三氯甲烷液,減壓回收溶劑至干,殘渣加甲醇使溶解,轉(zhuǎn)移至10mL量瓶中,加甲醇稀釋至刻度,搖勻,用0.45μm微孔濾膜過濾,取續(xù)濾液,即得。

2.2.3陰性供試品溶液的制備取缺大黃陰性樣品適量,照供試品溶液制備方法制得陰性供試品溶液。

2.3系統(tǒng)適應(yīng)性試驗

按“2.1”項下色譜條件,精密吸取供試品溶液、對照品溶液及陰性樣品溶液各10 μL進樣,結(jié)果大黃酸、大黃素、大黃酚與鄰峰基線分離,理論板數(shù)按大黃素峰計不低于7000,且其他成分不干擾其測定,色譜圖見圖1。

圖1 高效液相色譜圖

A.混合對照品,B.樣品,C.陰性樣品,1.大黃酸,2.大黃素,3.大黃酚

2.4線性關(guān)系的考察

精密吸取“2.2.1”項下對照品混合溶液2.0、4.0、6.0、10.0、16.0、20.0μl分別注入高效液相色譜儀測定,記錄峰面積,以峰面積(A)為縱座標(biāo),以進樣量(C)為橫座標(biāo),繪制標(biāo)準曲線,大黃酸回歸方程為A=3.218×104 C-2.682×103, r=0.9998(n=6),在7.92~79.2ng呈良好的線性關(guān)系;大黃素回歸方程為A=2.878×104C-3.042×103,r=0.9991(n=6),在14.5~145ng呈良好的線性關(guān)系;大黃酚回歸方程為A=3.588×104 C-1.042×104,r=0.9994(n=6),在27.24~272.4ng呈良好的線性關(guān)系。

2.5精密度試驗

取對照品混合溶液在“2.1”項下色譜條件下,每次進樣10μL,重復(fù)進樣6次,大黃酸、大黃素、大黃酚峰面積的RSD值分別為1.2%、0.8%、0.6%。

2.6穩(wěn)定性試驗

取批號20120906的供試品溶液,分別于0、1、3、5、10h分別進樣測定,結(jié)果5次進樣大黃酸峰面積的RSD=1.4%;大黃素峰面積的RSD=0.9%;大黃酚峰面積的RSD=1.2%,結(jié)果表明供試品溶液在10h內(nèi)穩(wěn)定。

2.7重復(fù)性試驗

取批號20120906的樣品,按“2.2.2”供試品溶液制備方法制備6份供試品溶液,依法測定,大黃酸平均含量為0.2948mg/g,RSD=0.8%;大黃素平均含量為0.4015 mg/g,RSD=1.1%;大黃酚平均含量為0.6700 mg/g,RSD=1.2%,結(jié)果表明該方法的重復(fù)性好。

2.8回收率試驗

取已知含量的樣品(批號:20120906,含大黃酸、大黃素、大黃酚分別為0.2948、0.4015、0.6700mg?g-1),剪碎,取約1.5g,精密稱定,置錐形瓶中,精密加入甲醇50ml,稱定重量,加熱回流1小時,冷卻,再稱定重量,用甲醇補足減失的重量,搖勻,濾過,精密量取5mL,分別精密加入混合對照品溶液(含大黃酸、大黃素、大黃酚4.46、7.25、13.62 μg?mL-1)8.0、10.0、12.0mL各3份,按“2.2.2”項下,自“蒸干,殘渣加2.5mol/L硫酸溶液10 mL”起,制備供試品溶液,按“2.1”項下測定含量,結(jié)果見表1。

表1 回收率試驗結(jié)果

Tab 1ResultofDetermination of sample recovery (n=3)

2.9樣品的測定

取供試品溶液分別注入高效液相色譜儀,按上述色譜條件測定,記錄峰面積,測定3批樣品,結(jié)果見表2

表2 樣品含量測定結(jié)果(n=3)

Tab 2ResultofDetermination of rhein、emodin、chrysophanol (n=3)

批號 含量(mg/g) 大黃酸 大黃素 大黃酚20120906 0.2948 0.4015 0.670020121101 0.3102 0.4528 0.732820130305 0.3148 0.4600 0.72823 討論

3.1測定波長的選擇

分別取三種對照品溶液,于200nm~600nm范圍內(nèi)進行掃描,結(jié)果三種對照品均在254、285、430nm處有最大吸收,選擇254nm作為測定波長,發(fā)現(xiàn)雜質(zhì)在此波長處吸收很強,干擾主成分的測定,而在430nm處雜質(zhì)吸收弱,雜質(zhì)干擾小,有利于樣品中有效成分的測定,故選定430nm作為檢測波長。

3.2 提取溶劑的選擇[4]

試驗曾選用三氯甲烷和乙醚對樣品進行提取,三氯甲烷提取的大黃酸、大黃素和大黃酚的含量遠遠高于乙醚,故選用三氯甲烷作為提取溶劑。提取2次和提取3次含量無明顯差別,故選擇提取2次。

3.3回流時間的的考察[5]

為保證樣品中樣品的結(jié)合蒽醌能完全水解為游離蒽醌,用2.5mol/L硫酸溶液對樣品的結(jié)合總蒽醌進行加熱水解,試驗了3個不同的水解時間,第一份加熱水解0.5h、第二份加熱水解1.0h、第三份加熱水解1.5h,按上述擬定的供試品溶液制備方法及含量測定項下的條件,依法測定。結(jié)果表明,回流提取0.5小時,樣品中的大黃素水解不完全,回流提取1.0、1.5h,均可使樣品中的大黃素水解完全,因此確定加入2.5mol/L的硫酸溶液10mL與三氯甲烷10ml回流提取時間為1.0h。

3.4 流動相的選擇

比較了甲醇與0.1%磷酸的多種不同配比,結(jié)果甲醇:0.1%磷酸=80:20,出峰時間適當(dāng),峰形好,且大黃酸、大黃素、大黃酚與鄰峰基線分離好。

參考文獻

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