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15-脫氧前列素2抑制MG63細胞活性并誘導其凋亡的機制

2014-09-13 01:36:16全碧波張善鋒李月白李曉坤李嘯然
中國老年學雜志 2014年23期
關鍵詞:生長檢測

全碧波 張善鋒 李月白 李曉坤 李嘯然 李 潔

(鄭州大學基礎醫學院生物化學與分子生物學教研室,河南 鄭州 450001)

骨肉瘤是骨組織最常見的原發性惡性腫瘤,約占所有骨腫瘤的20%。典型的惡性骨肉瘤具有顯著地局部侵襲性和早期遷徙能力〔1〕,由于其轉移病癥較難診斷,通常該病患死亡率較高。過氧化物酶體增殖因子活化受體(PPAR)γ的激動劑能誘導多種腫瘤細胞凋亡或分化,其作為人類癌癥的化學預防劑的潛在用途是目前研究的熱點〔2〕。本研究分析PPARγ激動劑15-脫氧前列素2(15d-PGJ2)對人骨肉瘤MG63細胞增殖和凋亡的影響,探討其抗腫瘤的作用機制。

1 材料和方法

1.1材料 人骨肉瘤細胞株MG63(北京協和細胞資源中心);15d-PGJ2(美國Cayman公司);胎牛血清(PAA公司);胰蛋白酶(美國Gibco公司);MTT、DMSO(美國Sigma公司); RPMI 1640培養液(北京索萊寶科技有限公司);DEPC(加拿大Fermentas公司);AnnexinV-FITC試劑盒(南京凱基公司);PCR擴增試劑盒 (加拿大Fermentas公司);SP法免疫組化染色試劑盒(北京中杉金橋);其余試劑均為國產分析純。

1.2細胞培養 常規細胞復蘇、換液和傳代,倒置相差顯微鏡觀察骨肉瘤MG63細胞的生長情況及形態學特征,取生長狀態良好的骨肉瘤細胞描記細胞生長曲線。

1.3實驗分組 以人骨肉瘤MG63細胞為作用對象,分為:對照組,不添加任何藥物;15d-PGJ2組,根據實驗加入其終濃度分別為0.1、1、5、10、20、50 μmol/L的15d-PGJ2。

1.4MTT法檢測細胞增殖活力 取對數生長期MG63細胞,以3×104/ml細胞濃度,接種96孔培養板,每孔200 μl,細胞貼壁后棄去培養液,加入不同濃度的15d-PGJ2,對照組不加藥,每組設6個復孔,空白對照組加入等量溶劑。分別孵育24 h、48 h、72 h及96 h,每孔加入MTT液20 μl(5 g/L),4 h后棄去上清液,并加入DMSO 150 μl,終止反應。用酶聯免疫檢測儀在490 nm波長處測吸光度(A值),并以空白對照孔的A值調零。生長抑制率(E)=(1-實驗組A值/對照組A值)×100%。重復3次。

1.5流式細胞儀檢測細胞周期 取對數生長期細胞,制成單細胞懸液,以2×105/ml的濃度接種于75 cm2培養瓶中于37℃、5%CO2飽和濕度條件下培養,次日貼壁后加入終濃度分別為0.1、1、5、10、50 μmol/L的15d-PGJ2。培養48 h和72 h,收集2×106個細胞,70%冰乙醇固定,4 ℃冰箱過夜,次日檢測并對樣本進行細胞周期分析。

1.6AnnexinV/PI雙染色檢測細胞凋亡 將20 μmol/L 15d-PGJ2干預48 h的細胞制成單細胞懸液,計數取1×106個細胞置離心管內,2 000 r/min離心5 min,棄上清,加入1 ml PBS緩沖液,重復上述操作。再加入500 μl的上樣緩沖液,輕輕震蕩使細胞懸浮,依次加入10 μl AnnexinV-FITC,5 μl碘化丙啶(PI)輕輕混勻,避光室溫反應15 min。隨即進行流式細胞儀檢測。

1.7逆轉錄聚合酶鏈式反應(RT-PCR)檢測藥物干48 h PPARγ mRNA的表達 利用TRIzol法提取總RNA,嚴格按照RT-PCR試劑盒說明操作,分別以不同引物擴增PPARγ和內參照β-actin。各引物序列如下:β-actin上游,5'-AAG GGC CAT CCA CAG TCT TC-3';下游,5'-AGA AGG CTG GGG CTC ATT G-3',擴增片段為176 bp;PPARγ上游,5'-CAG GAG CAG AGC AAA GA-3';下游,5'-GGA CTC AGG GTG GTT CA-3',擴增片段為474 bp。PCR擴增條件為:95 ℃預變性3 min;95℃ 30 s、58℃ 30 s、72℃ 30 s,35次循環;72 ℃延伸10 min。取RT-PCR產物進行1.5%瓊脂糖凝膠電泳,以待測基因與相應內參照條帶面積灰度值比值作為mRNA相對表達量。

1.8免疫細胞化學檢測相關凋亡蛋白的表達 采用過氧化物酶標記的鏈霉卵白素(SP法)染色試劑盒,工作濃度為1∶200,按試劑盒說明進行操作。

1.9統計學方法 采用統計學軟件SPSS15.0進行方差分析和t檢驗,組間兩兩比較用Student-Newan-Keuls檢驗。

2 結 果

2.1生長曲線描記 培養過程中,骨肉瘤MG63細胞生長較為迅速,傳代后短期內處于潛伏適應期,隨后便進入對數生長期,細胞數目顯著增多,達到平臺期后,生長穩定,細胞分裂增殖速度逐漸變慢,最后直至衰老,細胞數目明顯減少。

2.2不同時間濃度的15d-PGJ2干預MG63細胞增殖的結果 同一濃度的15d-PGJ2對MG63細胞的生長抑制作用24 h與48 h比較有差異(P<0.01),48 h、72 h及96 h時間范圍內隨著時間的延長其抑制率并無差異(P>0.05)。在各個時間點,任兩個濃度組兩兩比較的均有差異(P<0.05),相同時間點的抑制率從0.1 μmol/L至50 μmol/L隨著藥物濃度的遞增而增加。其中在50 μmol/L濃度的抑制率幾乎達到100%(表1)。15d-PGJ2藥物對MG63的半數抑制率IC50為3.599 μmol/L。

表1 各濃度15d-PGJ2在不同時間對人骨肉瘤MG63細胞增殖的抑制率

2.315d-PGJ2干預人骨肉瘤MG63細胞周期的結果 ①不同濃度水平的各細胞周期分布差異有統計學意義(P=0.000)。在48 h和72 h時間點,G0/G1期、S期和G2/M期的細胞比例在5 μmol/L和20 μmol/L 15d-PGJ2兩個濃度組間均有差異(P<0.05);在兩個時間點均顯示為用藥組G0/G1期細胞比例明顯高于對照組,S和G2/M期細胞比例明顯低于對照組,且隨藥物濃度的增加,G0/G1期比例有上升的趨勢;即藥物可使細胞周期G0/G1期阻滯。②不同時間點無差異(P>0.05)。見表2。

2.4AnnexinV/PI雙染色檢測細胞凋亡的結果 5 μmol/L 和20 μmol/L 15d-PGJ干預48 h,凋亡率分別為18.32%和32.08%,與對照組凋亡率(1.15%)比較差異顯著(P<0.05)。

2.5RT-PCR檢測藥物干預48 h PPARγ mRNA表達的結果 對照組和20 μmol/L 15d-PGJ2濃度組電泳條帶與相應的內參β-actin灰度值的比值分別為0.94±0.23和2.06±0.35,有統計學意義(P<0.05)(圖1)。

1:對照組;2:15d-PGJ2處理組;M:Marker

2.6免疫細胞化學技術檢測藥物干預后相關凋亡基因蛋白表達的結果 20 μmol/L 15d-PGJ2干預MG-63細胞48 h,加藥組caspase-3和Bax蛋白表達的陽性率(分別為126.46±3.83和135.36±6.72)明顯增高于對照組(86.46±3.73和97.08±3.84)(P<0.05);而加藥組P53和bcl-2蛋白表達陽性率(分別為135.06±2.73,126.17±3.54)明顯低于對照組(163.29±4.67和181.34±5.76)(P<0.05)。

表2 各濃度15d-PGJ2作用48 h和72 h時人骨肉瘤MG63的細胞周期分布

3 討 論

PPARs是配體激活的轉錄因子,靶基因的轉錄激活依賴于配體與受體的結合〔3〕。其中15d-PGJ2是PPARγ的內源性天然配體,與該受體具有特異的親和作用。近期研究表明,PPARγ在乳癌、前列腺癌、肺癌等多種腫瘤細胞中都有表達,并且配體激活的PPARγ有抑制細胞增殖,誘發凋亡信號,誘導分化以及抗血管生成的作用〔4~6〕。本實驗采用結果表明,15d-PGJ2可使MG63細胞阻滯于G1期,抑制細胞DNA的合成,使S期細胞減少,阻止細胞進入M期,經有絲分裂而產生的子代細胞數減少,這與細胞增殖實驗的結果一致。本實驗結果顯示,一定范圍濃度的15d-PGJ2可誘導MG-63細胞凋亡,且具有明顯藥物濃度依賴性。本研究發現,15d-PGJ2可使PPARγ mRNA表達量明顯升高,同時凋亡相關基因caspase-3和Bax表達上調,由對照組不同程度的陰性或弱陽性變為陽性表達,而P53和bcl-2基因的表達下調,由對照組陽性表達轉為弱陽性或陰性表達。由此推測15d-PGJ2誘導骨肉瘤細胞凋亡可能與激活其受體PPARγ,誘導bcl-2/Bax比例的變化以及促進caspase-3的表達而促進腫瘤細胞凋亡的途徑有關。野生型P53可能通過上調Bax的表達誘導bcl-2/Bax比例的變化誘導細胞凋亡。綜上所述PPARγ的激動劑15d-PGJ2能夠通過抑制MG-63細胞的生長與增殖,通過細胞周期滯止與促凋亡進而達到抗腫瘤作用。人骨肉瘤MG-63細胞中PPARγ的高表達可能為骨肉瘤的預防與治療提供新的治療靶點。

4 參考文獻

1Petta E,Sotiropoulou-Bonikou G,Kourelis K,etal.Differential expression and cross-talk of peroxisome proliferator-activated receptor γ and retinoid-X receptor α in urothelial carcinomas of the bladder〔J〕. BUON,2010;15(4):740-5.

2Reka AK,Kurapati H,Narala VR,etal.Peroxisome proliferator-activated receptor-{gamma} activation inhibits tumor metastasis by antagonizing Smad3-mediated epithelial-mesenchymal transition〔J〕. Mol Cancer Ther,2010;9(12):3221-32.

3Spies CM,Burmester GR,Buttgereit F. Analyses of similarities and differences in glucocorticoid therapy between rheumatoid arthritis and ankylosing spondylitis-a systematic comparison〔J〕.Clin Exp Rheumatol,2009;27:152-8.

4Venkatachalam G,Kumar AP,Yue LS,etal.Computational identification and experimental validation of PPRE motifs in NHE1 and MnSOD genes of human〔J〕. BMC Genomics,2009;10(Suppl 3):S5.

5Mannelli M,Cantini G,Poli G,etal.Role of the PPAR-γ system in normal and tumoral pituitary corticotropic cells and adrenal cells〔J〕. Neuroendocrinology,2010;92(Suppl 1):23-7.

6Caria P,Vanni R.Cytogenetic and molecular events in adenoma and well-differentiated thyroid follicular-cell neoplasia.Dipartimento di Scienze e Tecnologie Biomediche〔J〕. Cancer Genet Cytogenet,2010;203(1):21-9.

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