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裸鼠肝癌模型中miR-20a的作用

2014-09-13 03:13:04任建軍孟興凱牛劍祥
中國(guó)老年學(xué)雜志 2014年20期
關(guān)鍵詞:肝癌生長(zhǎng)

任建軍 孟興凱 牛劍祥

(內(nèi)蒙古醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院普通外科,內(nèi)蒙古 呼和浩特 010059)

肝細(xì)胞癌的特點(diǎn)是具有豐富的血運(yùn),提示腫瘤血管生成在腫瘤的發(fā)展中起著至關(guān)重要的作用。臨床上一般采取手術(shù)、放化療等綜合療法,然而預(yù)后仍不理想〔1,2〕。microRNA-20a(miR-20a)是一種多功能的miRNA。研究發(fā)現(xiàn),miR-20a能決定人間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)成骨分化的命運(yùn)和調(diào)控成骨分化的過程。同時(shí),miR-20a還是一種癌增殖調(diào)節(jié)子,可抑制多種腫瘤細(xì)胞的增殖、分化并促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的凋亡。Fan等〔3〕發(fā)現(xiàn)miR-20a表達(dá)下調(diào)可促進(jìn)癌細(xì)胞增殖,并與HCC預(yù)后和生存率相關(guān)。本實(shí)驗(yàn)擬觀察miR-20a對(duì)人肝癌細(xì)胞HepG2裸鼠皮下種植腫瘤生長(zhǎng)情況以及裸鼠體重的影響,miR-20a對(duì)腫瘤組織中VEGFA表達(dá)的影響,以期明確miR-20a抑制腫瘤生長(zhǎng)的機(jī)制。

1 材料與方法

1.1材料和試劑 BALB/c裸鼠(SPF級(jí))購(gòu)自北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司;miR-20a片段,陰性片段及紅色熒光標(biāo)記的轉(zhuǎn)染效率檢測(cè)對(duì)照購(gòu)自Invitrogen公司;肝癌細(xì)胞系HepG2購(gòu)自中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所;MEM-EBSS購(gòu)自Gibco公司、胎牛血清購(gòu)自Hyclone公司;免疫組化用VEGFA購(gòu)自Santa Cruz公司;SP免疫組化試劑盒、辣根過氧化物酶標(biāo)記山羊抗兔IgG、顯色試劑盒購(gòu)自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司。

1.2方法

1.2.1細(xì)胞培養(yǎng) 肝癌細(xì)胞系HepG2用含10%胎牛血清的MEM-EBSS培養(yǎng)基,于37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)。細(xì)胞長(zhǎng)至80%融合進(jìn)行傳代。

1.2.2轉(zhuǎn)染步驟及轉(zhuǎn)染效率的檢測(cè) 細(xì)胞轉(zhuǎn)染前以PBS洗2次,每個(gè)轉(zhuǎn)染條件的細(xì)胞用100 μl預(yù)先放置于室溫的Nucleofector?電轉(zhuǎn)液重懸(細(xì)胞以電轉(zhuǎn)液重懸后,后續(xù)所有操作必須在20 min 內(nèi)完成);每個(gè)樣本細(xì)胞懸液中加入300 pmol的相應(yīng)RNA;將上述細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)入電轉(zhuǎn)杯中(樣品必須覆蓋電轉(zhuǎn)杯杯底,且杯底部分不可有氣泡存在),蓋上電轉(zhuǎn)杯蓋;選擇電轉(zhuǎn)程序,并將電轉(zhuǎn)杯放入電轉(zhuǎn)儀中,運(yùn)行電轉(zhuǎn)程序;電轉(zhuǎn)程序結(jié)束立即取出電轉(zhuǎn)杯;使用試劑盒提供的移液管吸500 μl預(yù)熱的培養(yǎng)基入電轉(zhuǎn)杯中,并輕輕將細(xì)胞轉(zhuǎn)入12 孔板中,不可反復(fù)吹打細(xì)胞;細(xì)胞放入孵箱中繼續(xù)培養(yǎng),6 h 后更換培養(yǎng)基;陽(yáng)性對(duì)照可于轉(zhuǎn)染后8~12 h 用流式細(xì)胞儀檢測(cè)轉(zhuǎn)染效率。

1.2.3裸鼠接種 上述轉(zhuǎn)染細(xì)胞計(jì)數(shù)后以無血清MEM-EBSS培養(yǎng)基重懸,制備成1×108/ml的細(xì)胞懸液,30只裸鼠隨機(jī)分為3組,實(shí)驗(yàn)組(HepG2-miR-20a組)、陰性對(duì)照組(HepG2-NC組)和空白對(duì)照組(HepG2組),每組10只。皮下接種轉(zhuǎn)染miR-20a agomir的HepG2細(xì)胞、轉(zhuǎn)染陰性片段NC的HepG2細(xì)胞和不經(jīng)任何處理的HepG2細(xì)胞,并每周2次,用0.2 ml的注射器將0.1 ml制備的細(xì)胞懸液注射于BALB/c裸鼠腋窩中部背側(cè)皮下,接種時(shí)嚴(yán)格無菌操作。種植腫瘤長(zhǎng)至3~4 mm時(shí),即認(rèn)為荷瘤成功。

1.2.4腫瘤體積計(jì)算方法 腫瘤體積計(jì)算公式:V=(腫瘤最長(zhǎng)徑)×(腫瘤最短徑)2/2。根據(jù)公式計(jì)算腫瘤體積并繪制生長(zhǎng)曲線。接種35 d后處死裸鼠,取出腫瘤組織測(cè)腫瘤重量,并計(jì)算腫瘤生長(zhǎng)抑制率:腫瘤生長(zhǎng)抑制率=(1-處理組腫瘤重量/對(duì)照組腫瘤重量)×100%。

1.2.5免疫組化檢測(cè)VEGFA表達(dá) 組織塊固定常規(guī)石蠟切片脫蠟水化,其余步驟按試劑盒說明進(jìn)行。

1.3統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS16.0 軟件行t檢驗(yàn)或ANOVA檢驗(yàn)。

2 結(jié) 果

2.1細(xì)胞轉(zhuǎn)染效率檢測(cè) 采用Lonza電轉(zhuǎn)法進(jìn)行肝癌細(xì)胞HepG2的RNA轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染效率可高達(dá)90%以上。

2.2裸鼠成瘤及生長(zhǎng)狀況 HepG2-miR-20a組腫瘤生長(zhǎng)較其余兩組緩慢,第21天開始HepG2-miR-20a組腫瘤體積與其余兩組差異明顯。第35天時(shí),HepG2-miR-20a組平均瘤質(zhì)量為(1.16±0.12)g,明顯低于HepG2-NC組(2.66±0.45)g及HepG2組(2.77±0.44)g(P<0.01)。HepG2-miR-20a組與HepG2-NC組相比腫瘤生長(zhǎng)抑制率為57%,與HepG2組相比腫瘤生長(zhǎng)抑制率為58%。見圖2。

圖1 裸鼠移植瘤生長(zhǎng)曲線

2.3裸鼠體重變化 第35天時(shí),HepG2-miR-20a組腫瘤體積顯著低于HepG2-NC組和HepG2組(P<0.01),且HepG2-miR-20a組裸鼠體重亦顯著高于HepG2-NC組和HepG2組(P<0.01)。

2.4免疫組化測(cè)定腫瘤組織中VEGFA表達(dá) HepG2-miR-20a組VEGFA表達(dá)顯著低于HepG2-NC組和HepG2組。見圖3。

圖3 腫瘤組織中VEGFA表達(dá)

3 討 論

肝癌是世界上最常見的腫瘤之一〔4〕,78%的肝癌是由肝炎病毒感染引起的〔5〕。盡管通過手術(shù)切除、血管介入治療和肝移植等,現(xiàn)在一些肝癌早期可以治愈。然而伴有肝硬化的患者中只有30%適宜做這樣的治療〔6〕。

miRNA最早于1993 年由Lee 等〔7〕在線蟲體內(nèi)發(fā)現(xiàn),是一類約22 nt大小的非編碼單鏈RNA分子。每個(gè)miRNA可以調(diào)控多個(gè)靶基因,而每個(gè)基因的mRNA又可以受到多個(gè)miRNA的調(diào)節(jié)。越來越多的證據(jù)顯示了腫瘤中miRNA的差異表達(dá),如慢性淋巴細(xì)胞性白血病中的miR-15a 和 miR-16-1、肺癌中的let-7等〔8,9〕。在肝細(xì)胞癌(HCC)中,多個(gè)miRNA異常表達(dá)已被證明參與了肝癌的惡性生物學(xué)行為〔10,11〕,更有學(xué)者認(rèn)為其可以作為優(yōu)于基因的新的診斷和治療靶點(diǎn)。

miR-20a和miR-106a分別屬于miR-17-92家族和它的旁系miR-106a-363家族。目前有研究發(fā)現(xiàn),miR-20a可以抑制E2F2和E2F3的表達(dá)〔12〕。miR-20a還具有抗凋亡的作用,過表達(dá)可減少前列腺癌細(xì)胞的凋亡。然而,miR-20a在肝癌中的作用目前尚未見報(bào)道。本研究通過裸鼠肝癌模型發(fā)現(xiàn),HepG2-miR-20a組腫瘤生長(zhǎng)較其余兩組緩慢,至實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí),HepG2-miR-20a組裸鼠體重顯著高于陰性對(duì)照組和空白對(duì)照組,且HepG2-miR-20a組腫瘤體積顯著小于其他兩組,同時(shí)HepG2-miR-20a組VEGFA表達(dá)顯著低于HepG2-NC組和HepG2組。提示,miR-20a可能是通過抑制VEGFA表達(dá),從而達(dá)到抑制肝癌細(xì)胞HepG2裸鼠皮下移植瘤的生長(zhǎng)作用。

4 參考文獻(xiàn)

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2Rampone B,Schiavone B,Martino A,etal. Current management strategy of hepatocellular carcinoma〔J〕. World J Gastroenterool,2009;15(26): 3210-6.

3Fan MQ,Huang CB,Gu Y,etal. Decrease expression of microRNA-20a promotes cancer cell proliferation and predicts poor survival of hepatocellular carcinoma〔J〕. J Exp Clin Cancer Res,2013;32:21.

4Parkin DM,Bray F,Ferlay J,etal. Global cancer statistics,2002.〔J〕. CA Cancer J Clin,2005;55:74-108.

5Perz JF,Armstrong GL,Farrington LA,etal. The contributions of hepatitis B virus and hepatitis C virus infections to cirrhosis and primary liver cancer worldwide〔J〕. J Hepatol,2006;45(4):529-38.

6Sangiovanni A,Del NE,Fasani P,etal. Increased survival of cirrhotic patients with a hepatocellular carcinoma detected during surveillance〔J〕. Gastroenterology,2004;126(4):1005-14.

7Lee RC,Feinbaum RL,Ambros V. The C. elegans hereochronic gene lin-4 encodes small RNAs with antisence complementarity to lin-14〔J〕. Cell,1993;75(5): 843-54.

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9Johnson S,Grosshans H,Shingara J,etal. RAS is regulated by the let-7 microRNA family〔J〕. Cell,2005;120:635-47.

10Murakami Y,Yasuda T,Saigo K,etal. Comprehensive analysis of microRNA expression patterns in hepatocellular carcinoma and nontumorous tissues〔J〕. Oncogene,2006;25: 2537-45

11Jiang J,Gusev Y,Aderca I,etal. Association of MicroRNA expression in hepatocellular carcinomas with hepatitis infection,cirrhosis,and patient survival〔J〕. Clin Cancer Res,2008;14: 419-27.

12Sylvestre Y,De GV,Querido E,etal. An E2F/miR220a autoregulatory feedback loop〔J〕. J Biol Chem,2007;282(4): 2135-43.

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