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2種蝴蝶蘭組織培養快繁技術

2014-08-12 18:51:35宋微潘靜霞吳靜
江蘇農業科學 2014年6期

宋微+潘靜霞+吳靜

摘要:以紅龍、皇帝2個品種的蝴蝶蘭花梗為材料,1/3MS培養基為基本培養基,篩選花梗使用HgCl2消毒的最佳時間,增殖培養基的最佳激素、蔗糖濃度,以確立最佳培養配方。結果表明,紅龍、皇帝品種最佳的誘導材料為開過花的花梗;紅龍品種的最佳消毒時間為20 min,皇帝品種的最佳消毒時間為18 min;適合紅龍品種生長的最佳激素組合為5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA,蔗糖濃度為25 g/L;適合皇帝品種生長的最佳激素組合為5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA,蔗糖濃度為20 g/L。

關鍵詞:蝴蝶蘭;組織培養;消毒時間;激素

中圖分類號: Q943.1文獻標志碼: A文章編號:1002-1302(2014)06-0055-02

收稿日期:2013-09-02

基金項目:江蘇省自然科學基金(編號:BK2011498、BK2010345);江蘇農林職業技術學院課題。

作者簡介:宋微(1978—),女,黑龍江大慶人,博士,副教授,從事植物組織培養、微生物和植物病理學研究。E-mail:13360790@qq.com。蝴蝶蘭(Phalaenopsis amabilis)系蘭科蝴蝶蘭屬植物,花大而美麗,花期長,品種多,栽培廣泛,深受人們喜愛,在花卉市場上常常供不應求。在自然條件下,蝴蝶蘭主要靠分株、種子繁殖,繁殖率低,而且由于長期進行有性繁殖,帶病毒株增多,逐漸使種性降低,影響生長。如今組織培養已經成為蝴蝶蘭無性繁殖最常用的方法,既可以保持母本的優良性狀,快速繁殖子代,又可以反季節栽培適應市場需求[1-4]。以花梗芽作為外植體進行培養是代替蝴蝶蘭莖尖培養的一種方法[1],在不影響蝴蝶蘭母株的優良性狀和經濟條件下選取外植體,提高花梗芽的誘導率,避免病毒擴散和危害,保持母株優良的生物學特性[2]。本研究以花梗芽為外植體,篩選最佳快繁培養基,研究紅龍(Phalaenopsis amabilis “Red Dragon”)、皇帝(Phalaenopsis amabilis “Emperor”)2個品種的最佳培養方案,為這2個品種的快速繁育提供必要的技術支持。

1材料與方法

1.1材料

分別取蝴蝶蘭紅龍、皇帝2個品種開過花的花梗,除基部外至頂端第6節至第7節剝開可見到芽的部位為組織培養的外植體材料,每個樣本100個,重復3次。

1.2方法

1.2.1清洗與消毒從溫室里取出材料后用流水沖洗1 h,加入3%的洗衣粉,取生長時間超過40 d的花梗,提前把苞葉剝去后用于接種[5-7]。以75%乙醇棉球擦拭花梗表面,放在無菌操作臺上備用,以節為單位切成段,每節段上端留2 cm,下端留3 cm。以解剖刀除去花梗節芽上的苞葉,去除節段表面病斑、焦枯部分[2]。以75%乙醇棉球重復擦拭去苞葉的花梗芽,力度適中,防止傷芽。以75%乙醇振蕩浸泡30 s,而后以0.1% HgCl2消毒,消毒時間分別采用8、10、12、14、16、18、20 min,再以無菌水振蕩沖洗3次,用解剖刀切去消毒后花梗兩端各0.5 cm,以芽自然生長方向正向插入培養基內[8]。

1.2.2培養基基本培養基為1/3MS+5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+7 g/L瓊脂+20g/L蔗糖;增殖培養基為1/3MS+7 g/L瓊脂+1、2、3、4、5 mg/L 6-BA+0.1、0.2、03、0.4、0.5 mg/L NAA+5、10、15、20、25、30 g/L蔗糖,pH值為6.8。組培瓶內培養基為100 mL/瓶,分裝后于121 ℃下滅菌21 min,備用。恒溫26 ℃培養,光照時間為10~12 h/d,光照強度為1 600~2 000 lx。

1.3數據處理

試驗所得的數據采用SPSS 11.0軟件統計分析。

2個品種蝴蝶蘭以0.1%HgCl2消毒8 min的外植體污染率均最高,分別為76.7%、93.3%。隨著消毒時間的延長,外植體污染率降低,當消毒時間延長至20 min時,紅龍污染率為16.6%,皇帝污染率為16.7%,但芽同時出現毒死現象,芽死亡率為6.7%,致使萌芽率降低,所以不同品種的消毒時間存在著差異。由此可見,紅龍的最佳消毒時間為20 min,皇帝的最佳消毒時間為18 min,此消毒時間根據花梗芽的飽滿成熟度有所不同。

表1不同消毒時間對紅龍和皇帝2個品種萌發的影響

滅菌時間

(min)污染率(%)死亡率(%)萌發率(%)紅龍皇帝紅龍皇帝 紅龍皇帝876.693.30010.0 3.3 1073.383.30020.010.0 1263.380.00043.316.6 1450.056.60040.0 40.01643.346.60050.056.6 1826.620.00070.083.3 2016.616.70 6.7 86.6 66.6 注:培養基為1/3MS+5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+7 g/L瓊脂+20 g/L 蔗糖。

2.2不同濃度的外源激素對花梗誘導和叢生芽產生的影響

經過40 d培養后,由表2可知,當激素組合為1 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA時,紅龍、皇帝平均芽長為1.56、1.92 cm,且其平均芽長隨著6-BA、NAA濃度的增加而變長。當激素組合為5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA時,紅花、皇帝叢生芽的平均長度達到最長,為3.04、2.67 cm。說明紅龍和皇帝組培的最佳激素組合均為5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA。

不同激素組合對2個品種叢生芽誘導的影響

激素濃度(mg/L)誘導率(%)平均芽長(cm)6-BANAA紅龍皇帝紅龍皇帝10.120.0a95.6a1.56a1.92a20.240.0b96.6a1.65a1.98a30.360.0b97.2a2.41b2.49b40.470.0c97.2a2.42b2.58b50.576.6d100.0b3.04c2.67c注:同列數據后不同字母表示差異顯著(P<0.05)。

2.3不同蔗糖濃度對芽長和叢生芽的影響

在植物組織培養中,尤其是在蝴蝶蘭快繁中,主要把蔗糖作為碳源,不同的蔗糖濃度對叢生芽的產生和芽長有很大的差異[9]。本試驗對紅龍和皇帝2個品種分別用5、10、15、20、25、30 g/L蔗糖進行處理,結果見表3。從表3可看出,當蔗糖濃度為25 g/L時,紅龍品種的平均芽長最長,為3.0 cm,叢生芽平均個數為1.3個。當蔗糖濃度為20 g/L時,皇帝的平均芽長最長,為2.9 cm,叢生芽平均個數為2.3個。說明適合蝴蝶蘭紅龍、皇帝品種的最佳蔗糖濃度分別為25、20 g/L。

不同蔗糖濃度對叢生芽生長的影響

蔗糖濃度

(g/L)紅龍皇帝誘導率

(%)平均芽長

(cm)叢生芽

平均個數誘導率

(%)平均芽長

(cm)叢生芽

平均個數5901.20.9922.21.610801.20.8901.51.515501.80.5802.31.420902.70.91002.92.3251003.01.3902.51.930302.70.3802.81.5

3結論

許多研究結果表明,花梗是蝴蝶蘭組織培養的最佳外植體,植物生長激素濃度、蔗糖濃度等都是影響休眠芽萌發的關鍵因素[4,8,10]。筆者發現,蔗糖濃度會直接影響蝴蝶蘭不同品種的增殖率,不同品種的外植體也要進行不同時間的消毒,否則會提高污染率或毒殺芽體。

綜上所述,紅龍的最佳消毒時間為20 min,皇帝最佳的消毒時間是18 min,適合蝴蝶蘭紅龍組培快繁的最佳培養基為1/3 MS+5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+7 g/L瓊脂+25 g/L蔗糖,適合蝴蝶蘭皇帝組培快繁的最佳培養基為1/3MS+5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+ 7 g/L 瓊脂+20 g/L蔗糖。

參考文獻:

[1]劉翠蘭,王小芳,李雙云,等. 蝴蝶蘭花梗芽的組織培養[J]. 山東林業科技,2004(4):37.

[2]張偉,曾伏虎,張蘇鋒. 蝴蝶蘭的組織培養與快速繁殖[J]. 信陽師范學院學報:自然科學版,2004,17(3):335-337.

[3]林漢銳,鐘融融,洪生標,等. 蝴蝶蘭新品種滿天紅的特征特性及栽培技術[J]. 廣東農業科學,2003(2):11-12.

[4]胡松華. 蝴蝶蘭[M]. 廣州:廣東科學技術出版社,2001.

[5]潘學峰,王安石,李海珠. 蝴蝶蘭組培快繁技術的研究進展[J]. 熱帶林業,2005,33(1):45-47.

[6]周俊彥,郭扶興. 細胞分裂素類物質在植物體細胞胚發生中的作用[J]. 植物生理學通訊,1996,32(4):247-253.

[7]李進進,廖俊杰,柯麗婉,等. 蝴蝶蘭根段的組織培養[J]. 植物生理學通訊,2000,36(1):37.

[8]魯雪華,郭文杰,徐立暉,等. 蝴蝶蘭花梗節間段培養繁殖的初步研究[J]. 園藝學報,2002,29(5):491-492.

[9]王蒂. 植物組織培養[M]. 北京:中國農業出版社,2004.

[10]李浚明,編譯. 植物組織培養教程[M]

2.3不同蔗糖濃度對芽長和叢生芽的影響

在植物組織培養中,尤其是在蝴蝶蘭快繁中,主要把蔗糖作為碳源,不同的蔗糖濃度對叢生芽的產生和芽長有很大的差異[9]。本試驗對紅龍和皇帝2個品種分別用5、10、15、20、25、30 g/L蔗糖進行處理,結果見表3。從表3可看出,當蔗糖濃度為25 g/L時,紅龍品種的平均芽長最長,為3.0 cm,叢生芽平均個數為1.3個。當蔗糖濃度為20 g/L時,皇帝的平均芽長最長,為2.9 cm,叢生芽平均個數為2.3個。說明適合蝴蝶蘭紅龍、皇帝品種的最佳蔗糖濃度分別為25、20 g/L。

不同蔗糖濃度對叢生芽生長的影響

蔗糖濃度

(g/L)紅龍皇帝誘導率

(%)平均芽長

(cm)叢生芽

平均個數誘導率

(%)平均芽長

(cm)叢生芽

平均個數5901.20.9922.21.610801.20.8901.51.515501.80.5802.31.420902.70.91002.92.3251003.01.3902.51.930302.70.3802.81.5

3結論

許多研究結果表明,花梗是蝴蝶蘭組織培養的最佳外植體,植物生長激素濃度、蔗糖濃度等都是影響休眠芽萌發的關鍵因素[4,8,10]。筆者發現,蔗糖濃度會直接影響蝴蝶蘭不同品種的增殖率,不同品種的外植體也要進行不同時間的消毒,否則會提高污染率或毒殺芽體。

綜上所述,紅龍的最佳消毒時間為20 min,皇帝最佳的消毒時間是18 min,適合蝴蝶蘭紅龍組培快繁的最佳培養基為1/3 MS+5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+7 g/L瓊脂+25 g/L蔗糖,適合蝴蝶蘭皇帝組培快繁的最佳培養基為1/3MS+5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+ 7 g/L 瓊脂+20 g/L蔗糖。

參考文獻:

[1]劉翠蘭,王小芳,李雙云,等. 蝴蝶蘭花梗芽的組織培養[J]. 山東林業科技,2004(4):37.

[2]張偉,曾伏虎,張蘇鋒. 蝴蝶蘭的組織培養與快速繁殖[J]. 信陽師范學院學報:自然科學版,2004,17(3):335-337.

[3]林漢銳,鐘融融,洪生標,等. 蝴蝶蘭新品種滿天紅的特征特性及栽培技術[J]. 廣東農業科學,2003(2):11-12.

[4]胡松華. 蝴蝶蘭[M]. 廣州:廣東科學技術出版社,2001.

[5]潘學峰,王安石,李海珠. 蝴蝶蘭組培快繁技術的研究進展[J]. 熱帶林業,2005,33(1):45-47.

[6]周俊彥,郭扶興. 細胞分裂素類物質在植物體細胞胚發生中的作用[J]. 植物生理學通訊,1996,32(4):247-253.

[7]李進進,廖俊杰,柯麗婉,等. 蝴蝶蘭根段的組織培養[J]. 植物生理學通訊,2000,36(1):37.

[8]魯雪華,郭文杰,徐立暉,等. 蝴蝶蘭花梗節間段培養繁殖的初步研究[J]. 園藝學報,2002,29(5):491-492.

[9]王蒂. 植物組織培養[M]. 北京:中國農業出版社,2004.

[10]李浚明,編譯. 植物組織培養教程[M]

2.3不同蔗糖濃度對芽長和叢生芽的影響

在植物組織培養中,尤其是在蝴蝶蘭快繁中,主要把蔗糖作為碳源,不同的蔗糖濃度對叢生芽的產生和芽長有很大的差異[9]。本試驗對紅龍和皇帝2個品種分別用5、10、15、20、25、30 g/L蔗糖進行處理,結果見表3。從表3可看出,當蔗糖濃度為25 g/L時,紅龍品種的平均芽長最長,為3.0 cm,叢生芽平均個數為1.3個。當蔗糖濃度為20 g/L時,皇帝的平均芽長最長,為2.9 cm,叢生芽平均個數為2.3個。說明適合蝴蝶蘭紅龍、皇帝品種的最佳蔗糖濃度分別為25、20 g/L。

不同蔗糖濃度對叢生芽生長的影響

蔗糖濃度

(g/L)紅龍皇帝誘導率

(%)平均芽長

(cm)叢生芽

平均個數誘導率

(%)平均芽長

(cm)叢生芽

平均個數5901.20.9922.21.610801.20.8901.51.515501.80.5802.31.420902.70.91002.92.3251003.01.3902.51.930302.70.3802.81.5

3結論

許多研究結果表明,花梗是蝴蝶蘭組織培養的最佳外植體,植物生長激素濃度、蔗糖濃度等都是影響休眠芽萌發的關鍵因素[4,8,10]。筆者發現,蔗糖濃度會直接影響蝴蝶蘭不同品種的增殖率,不同品種的外植體也要進行不同時間的消毒,否則會提高污染率或毒殺芽體。

綜上所述,紅龍的最佳消毒時間為20 min,皇帝最佳的消毒時間是18 min,適合蝴蝶蘭紅龍組培快繁的最佳培養基為1/3 MS+5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+7 g/L瓊脂+25 g/L蔗糖,適合蝴蝶蘭皇帝組培快繁的最佳培養基為1/3MS+5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+ 7 g/L 瓊脂+20 g/L蔗糖。

參考文獻:

[1]劉翠蘭,王小芳,李雙云,等. 蝴蝶蘭花梗芽的組織培養[J]. 山東林業科技,2004(4):37.

[2]張偉,曾伏虎,張蘇鋒. 蝴蝶蘭的組織培養與快速繁殖[J]. 信陽師范學院學報:自然科學版,2004,17(3):335-337.

[3]林漢銳,鐘融融,洪生標,等. 蝴蝶蘭新品種滿天紅的特征特性及栽培技術[J]. 廣東農業科學,2003(2):11-12.

[4]胡松華. 蝴蝶蘭[M]. 廣州:廣東科學技術出版社,2001.

[5]潘學峰,王安石,李海珠. 蝴蝶蘭組培快繁技術的研究進展[J]. 熱帶林業,2005,33(1):45-47.

[6]周俊彥,郭扶興. 細胞分裂素類物質在植物體細胞胚發生中的作用[J]. 植物生理學通訊,1996,32(4):247-253.

[7]李進進,廖俊杰,柯麗婉,等. 蝴蝶蘭根段的組織培養[J]. 植物生理學通訊,2000,36(1):37.

[8]魯雪華,郭文杰,徐立暉,等. 蝴蝶蘭花梗節間段培養繁殖的初步研究[J]. 園藝學報,2002,29(5):491-492.

[9]王蒂. 植物組織培養[M]. 北京:中國農業出版社,2004.

[10]李浚明,編譯. 植物組織培養教程[M]

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