999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

Pseudomonas sp. F-12發(fā)酵優(yōu)化及轉(zhuǎn)化合成半胱氨酸的研究

2014-03-21 06:56:58趙婧楠李志敏葉勤
生物技術(shù)通報(bào) 2014年10期
關(guān)鍵詞:生長

趙婧楠 李志敏 葉勤

(華東理工大學(xué)生物反應(yīng)器工程國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海 200237)

Pseudomonas sp. F-12發(fā)酵優(yōu)化及轉(zhuǎn)化合成半胱氨酸的研究

趙婧楠 李志敏 葉勤

(華東理工大學(xué)生物反應(yīng)器工程國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海 200237)

通過不同發(fā)酵策略對Pseudomonas sp. F-12以DL-2-氨基-△2-噻唑啉-4-羧酸(DL-ATC)為底物生產(chǎn)L-半胱氨酸的過程進(jìn)行優(yōu)化,以分批發(fā)酵和指數(shù)流加發(fā)酵的形式進(jìn)行生產(chǎn),將發(fā)酵過程中的DL-ATC濃度分別控制在5 g/L和15 g/L。結(jié)果表明15 g/L DL-ATC分批發(fā)酵生產(chǎn)L-半胱氨酸得到最高酶活為149.1 U/mL,比活為70.9 U/mg DCW;采用15 g/L DL-ATC兩階段指數(shù)流加發(fā)酵,可使最高酶活達(dá)到313.3 U/mL,提高為分批發(fā)酵的2.1倍。同時在兩階段發(fā)酵過程中,能減少DL-ATC用量為5 g/L。兩階段發(fā)酵過程采用不同流加策略,證明菌體得率對酶活水平有顯著影響。首次考察了Pseudomonas sp. F-12全靜息細(xì)胞轉(zhuǎn)化合成L-半胱氨酸的主要影響因素。結(jié)果表明Pseudomonas sp. F-12的最適轉(zhuǎn)化pH為8.0,最適轉(zhuǎn)化溫度為30℃。加入甲苯等有機(jī)溶劑改變細(xì)胞膜通透性,使得半胱氨酸產(chǎn)量比對照組提高7.16倍,最高摩爾轉(zhuǎn)化率達(dá)到93.3 %。不同金屬離子對轉(zhuǎn)化影響不同,0.1 mmol/ L Fe2+對轉(zhuǎn)化反應(yīng)有促進(jìn)作用,0.1 mmol/L Co2+、Zn2+、Ni2+等重金屬離子有抑制作用。研究結(jié)果為微生物法發(fā)酵及全細(xì)胞轉(zhuǎn)化合成半胱氨酸的后續(xù)工業(yè)化奠定了基礎(chǔ)。

假單胞菌 L-半胱氨酸 DL-2-氨基-△2-噻唑啉-4-羧酸(DL-ATC) 發(fā)酵 生物轉(zhuǎn)化

L-半胱氨酸(L-cysteine,C3H7NO2S,分子量121.12)是唯一的含巰基氨基酸,肽鏈之間以二硫鍵(S-S)連接[1],化學(xué)性質(zhì)活潑。L-半胱氨酸可作為呼吸系統(tǒng)藥物,面團(tuán)性質(zhì)改良劑和美白用品等廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥、食品和化妝品行業(yè)[2]。

目前我國半胱氨酸的工業(yè)生產(chǎn)主要采用毛發(fā)水解法,但該工藝在制備過程中產(chǎn)生大量廢酸和廢氣,造成嚴(yán)重環(huán)境污染[3]。1977年,日本學(xué)者Sano等[4]發(fā)現(xiàn)嗜硫氮雜環(huán)戊烯假單胞菌(Pseudomonas thiozolinophilum)可以轉(zhuǎn)化DL-2-氨基-Δ2-噻唑啉-4

羧 酸(DL-2- Amino-Δ2-thiazoline-4-carboxylic Acid)合成L-半胱氨酸。相比毛發(fā)水解法,微生物轉(zhuǎn)化法具有工藝簡單、環(huán)境友好等優(yōu)點(diǎn)。其轉(zhuǎn)化途經(jīng)已進(jìn)行詳細(xì)研究,如圖1所示[5-7]。日本已能在工業(yè)規(guī)模利用微生物法轉(zhuǎn)化合成半胱氨酸,而我國仍然較多采用毛發(fā)水解法,因此開展微生物法生產(chǎn)L-半胱氨酸的研究十分有必要。

圖1 DL-ATC轉(zhuǎn)化半胱氨酸的途徑

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌種 假單胞菌F-12(Pseudomonas sp. F-12),本研究室篩選保存[8]。

1.1.2 材料與試劑 DL-ATC(分析純)購自天津試劑二廠,葡萄糖為食品級別。其他試劑為市售分析純。

1.1.3 培養(yǎng)基 (1)種子培養(yǎng)基(g/L):DL-ATC 15,KH2PO41,MgSO40.5,F(xiàn)eSO40.01,MnSO40.007。其中MnSO4,F(xiàn)eSO4溶液過濾滅菌加入,其余培養(yǎng)基121℃,滅菌20 min。(2)5 L罐分批發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):DL-ATC 15,KH2PO41,MgSO40.5,F(xiàn)eSO40.01。MnSO40.007。其中MnSO4,F(xiàn)eSO4過濾滅菌加入,其余培養(yǎng)基121℃,滅菌20 min。(3)5 L罐兩階段發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖2,KH2PO41,NH4Cl 2,MgSO40.5,F(xiàn)eSO40.01,MnSO40.007。 其中FeSO4和MnSO4過濾滅菌加入。補(bǔ)料葡萄糖為1 mol/L,25%的氨水調(diào)節(jié)pH7.0。

1.2 方法

1.2.1 種子培養(yǎng)條件 將-20℃甘油管保存的假單胞菌500 μL接種于的250 mL搖瓶,裝30 mL種子培養(yǎng)基。30℃,220 r/min搖床培養(yǎng)30 h。將一級種子液按1%-2%的接種量,接種于500 mL搖瓶,裝液量為100 mL,30℃,220 r/min搖床培養(yǎng)12 h。

1.2.2 5 L罐分批發(fā)酵 5 L發(fā)酵罐,裝2 L發(fā)酵培養(yǎng)基,按接種量10%進(jìn)行接種。培養(yǎng)條件為溫度30℃,通氣量2 vvm,攪拌轉(zhuǎn)速初始600 r/min,之后根據(jù)溶氧逐步提高。1 mol/L H2SO4控制發(fā)酵過程pH6.8-7.0。每1 h取樣,測定菌濃和發(fā)酵產(chǎn)物,留樣待測酶活。

1.2.3 5 L罐兩階段指數(shù)流加發(fā)酵 兩階段法生產(chǎn)半胱氨酸,第一階段為菌體高密度生長階段,以指數(shù)流加的方式流加葡萄糖,使菌體密度達(dá)到最大。第二階段加入5 g/L或15 g/L DL-ATC誘導(dǎo)酶活。

發(fā)酵罐裝液量2 L,接入二級種子200 mL,培養(yǎng)條件為溫度30℃,初始攪拌轉(zhuǎn)速600 r/min,初始通氣量2 vvm。菌體生長階段以25%氨水調(diào)節(jié)pH值,流加葡萄糖的濃度為1 mol/L。第二階段以1 mol/L H2SO4加入調(diào)節(jié)pH值。

1.2.4 DL-ATC濃度對菌體生長及酶活影響試驗(yàn)5 L罐發(fā)酵收集發(fā)酵液100 mL,4℃、12 000 r/min離心20 min。將離心得到的菌體利用種子培養(yǎng)基洗滌兩次,再重懸于20 mL的種子培養(yǎng)基中得到濃縮菌液。將濃縮菌液以2%的接種量加入到含有不同濃度DL-ATC的搖瓶中,30℃、220 r/min培養(yǎng)12 h,每2 h取樣1次,每組試驗(yàn)兩個平行對照。

1.2.5 假單胞菌F-12轉(zhuǎn)化細(xì)胞的制備 將-20℃保存的菌株接種到裝有30 mL種子培養(yǎng)基的三角瓶中,30℃、220 r/min培養(yǎng)30 h。將培養(yǎng)好的一級種子液按2%接種量接種到裝有100 mL培養(yǎng)基的500 mL三角瓶中,30℃、220 r/min培養(yǎng)12 h。發(fā)酵液6 000 r/min、4℃離心10 min,棄上清液,將菌體用1 mol/L的磷酸緩沖液離心洗滌2次,得到轉(zhuǎn)化反應(yīng)所需的靜息細(xì)胞。

1.2.6 pH對細(xì)胞轉(zhuǎn)化反應(yīng)的影響 用磷酸氫二鈉-檸檬酸緩沖體系配制pH值為4.0、5.0、6.0、7.0的轉(zhuǎn)化液,甘氨酸-氫氧化鈉緩沖配制pH值為8.0、9.0、10.0的轉(zhuǎn)化液。利用1 mol/L、pH8.0的磷酸緩沖液將靜息細(xì)胞配制成OD為8.9的細(xì)胞懸液,置于水浴搖床(100 r/min)進(jìn)行反應(yīng),每2 h取樣1 mL,12 000 r/min、4℃離心10 min,取上清測定L-半胱氨酸含量。

1.2.7 溫度對細(xì)胞轉(zhuǎn)化反應(yīng)的影響 配制pH為8.0,DL-ATC濃度為 10 g/L的轉(zhuǎn)化液。利用上述轉(zhuǎn)化液將發(fā)酵獲得的靜息細(xì)胞配置成OD為9.0的細(xì)胞懸液,分別在30℃、37℃、42℃、45℃水浴條件下進(jìn)行轉(zhuǎn)化,每2 h各取樣1 mL,測定半胱氨酸含量。

1.2.8 細(xì)胞滲透劑對轉(zhuǎn)化反應(yīng)的影響 將培養(yǎng)細(xì)胞離心重懸,在菌液中分別加入1 mL甲苯、吐溫80、氯仿、CTAB(十六烷基三甲基溴化銨),將各類有機(jī)試劑與細(xì)胞充分混勻,30℃混合培養(yǎng)20 min,12 000 r/min離心10 min棄去上清,加1 mL pH8.0的磷酸緩沖溶液重懸。取處理過的菌液作轉(zhuǎn)化,轉(zhuǎn)化液中DL-ATC濃度10 g/L。

1.2.9 金屬離子對轉(zhuǎn)化反應(yīng)的影響 考察了Mg2+、Fe2+、Co2+、Al3+、Ca2+、Zn2+、Ni2+、Mn2+對轉(zhuǎn)化的影響,配制含上述8種金屬離子(0.1 mmol/L)的DL-ATC轉(zhuǎn)化液。加入靜息細(xì)胞,置于水浴搖床進(jìn)行轉(zhuǎn)化,每2 h取樣1次,測定半胱氨酸含量。

1.2.10 分析方法

(1)菌體濃度采用濁度法測定。將培養(yǎng)的菌液按適當(dāng)比例進(jìn)行稀釋,使用721型分光光度計(jì)在600 nm下檢測發(fā)酵液的光密度(OD600)。

(2)發(fā)酵液中殘留的DL-ATC采用島津LC-20A型高效液相色譜儀測定[9]。色譜柱為C18柱(150 mm×4.6 mm,Wondasil,Japan),檢測器為紫外檢測器(SPD-20A),波長260 nm,柱溫30℃,流動相為1∶1的超純水和乙腈,流速為0.6 mL/min。

(3)酶活測定。在轉(zhuǎn)化過程中有3種酶存在,這3種酶結(jié)合在一起形成半胱氨酸合成酶,其活性能反應(yīng)完整細(xì)胞的轉(zhuǎn)化能力[10]。檢測表觀半胱氨酸合成酶活性的方法:細(xì)胞放置于1.5 mL離心管中,4℃,12 000 r/min離心5 min,加入0.1 mol/L 磷酸緩沖液(pH8.0)洗滌2次,重懸于包含10 g/L DLATC的0.1 mol/L磷酸緩沖液(pH 8.0),42℃ 水浴15 min,加入200 μL 10%(W/V)鹽酸停止反應(yīng),利用酸式茚三酮法測定半胱氨酸含量[11]。一個酶活單位定義為在上述標(biāo)準(zhǔn)條件下1 min產(chǎn)生1 μg L-半胱氨酸所需的酶量。單位菌體質(zhì)量的酶活力定義為比活。

(4)半胱氨酸含量的測定。取待測發(fā)酵液于4℃,12 000 r/min,離心10 min,棄上清,沉淀用25 mL溶有10 g/L DL-ATC的磷酸緩沖溶液(pH8.0)重懸。42℃水浴搖床(100 r/min)中,反應(yīng)10-12 h,每2 h取樣1 mL。將樣品12 000 r/min,室溫離心10 min,取上清煮沸1 min,相同條件離心,再取上清利用酸式茚三酮法測定半胱氨酸含量。

2 結(jié)果

2.1 5 L罐15 g/L DL-ATC分批及兩階段發(fā)酵

圖2 假單胞菌F-12 15 g/L DL-ATC分批發(fā)酵

5 L罐15 g/L DL-ATC分批發(fā)酵曲線如圖2所示。整個發(fā)酵過程為10 h,發(fā)酵8 h溶氧迅速跳升,9 h達(dá)到最高OD 5.38。在0-4 h基本檢測不到酶活的產(chǎn)生,說明此階段DL-ATC用于菌體生長,沒有誘導(dǎo)

出轉(zhuǎn)化的酶。5 h之后開始產(chǎn)生酶活。在溶氧跳升點(diǎn)后1 h,酶活產(chǎn)生最大值為148.1 U/mL,比活為70.9 U/mg DCW。在發(fā)酵過程中,溶氧和菌濃可作為重要指標(biāo)判斷出酶活情況。溶氧跳升說明碳氮源物質(zhì)供給不足,跳升后菌體濃度基本不再增加,此時DLATC消耗完全,產(chǎn)物積累最多,因此在溶氧跳升點(diǎn)產(chǎn)生酶活最大值。

分批發(fā)酵可知菌體生長和誘導(dǎo)酶活均依賴于唯一的碳氮源DL-ATC。因此若要降低成本,菌體生長階段可采用較廉價的碳氮源如葡萄糖。Pseudomonas sp. F-12在以DL-ATC為碳氮源的分批培養(yǎng)情況下,最大OD值僅為5.38。由分批試驗(yàn)可知,Pseudomonas sp. F-12產(chǎn)生酶活與菌體濃度相關(guān),若要獲得較高的酶活需要提高菌濃。考慮降低成本,同時希望獲得更高的酶活,故采用兩階段策略進(jìn)行發(fā)酵。兩階段發(fā)酵第一階段以葡萄糖為碳源,以氨水為氮源高密度發(fā)酵產(chǎn)生菌體;第2階段一次性補(bǔ)加DL-ATC進(jìn)行誘導(dǎo)。

圖3 假單胞菌F-12 15 g/L DL-ATC指數(shù)流加發(fā)酵

如圖3所示,葡萄糖作為碳源時菌體增加較快,在16 h菌體達(dá)到最大OD 29.1。生長階段初期,生長速率會超過0.2 h-1以上,之后隨限制性因素增加,代謝副產(chǎn)物大量積累,增長速率逐漸放緩。菌體達(dá)到最大OD加入DL-ATC進(jìn)行誘導(dǎo)。誘導(dǎo)階段溶氧逐漸下降,4 h后溶氧跳升發(fā)酵結(jié)束。在誘導(dǎo)后3 h,酶活最高,達(dá)到313.3 U/mL。指數(shù)流加發(fā)酵得到的最大單位酶活為分批發(fā)酵的2.1倍,有效提高了體積酶活,但是比酶活并未顯著升高。主要原因是菌體生長階段利用葡萄糖代謝,積累酸性物質(zhì),此酸性物質(zhì)會影響菌體轉(zhuǎn)化活力[8]。誘導(dǎo)后期,由于溶氧條件限制及代謝廢物的積累導(dǎo)致菌體的比生長速率明顯下降,大量菌體自溶,利用DL-ATC能力降低,因此菌體相對比活并無提高。

2.2 搖瓶試驗(yàn)對比不同濃度DL-ATC對生長和酶活的影響

搖瓶考察不同DL-ATC濃度對菌體生長和產(chǎn)酶的影響。由圖4可知,DL-ATC濃度對于菌體生長有一定影響。在20 g/L DL-ATC發(fā)酵6 h下,菌體得到最高菌濃OD600為5.67。在5 g/L、10 g/L和15 g/L DL-ATC濃度下,菌濃最高值OD600分別為5.33,5.34和5.65,為20 g/L DL-ATC的94%,94.5%和99.6%,其結(jié)果相差不大。由圖5可知,在DL-ATC濃度10 g/L時,酶活的誘導(dǎo)效果最好,達(dá)到13.12 U/mL。5 g/L、15 g/L和20 g/L DL-ATC濃度誘導(dǎo)的酶活分別為12.86 U/mL,12.73 U/mL,11.43 U/mL。酶活為10 g/L DL-ATC誘導(dǎo)的98%,97%和87%。搖瓶試驗(yàn)成功地將DL-ATC由原來的15-20 g/L降低為5-10 g/L。

圖4 不同DL-ATC濃度對菌體濃度及酶活影響曲線

2.3 5 L罐5 g/L DL-ATC分批及兩階段發(fā)酵

5 L罐Pseudomonas sp. F-12的分批發(fā)酵,DLATC的量減少為5 g/L。發(fā)酵趨勢與15 g/L DL-ATC差別不大,酶活測定結(jié)果見圖5。

圖5 假單胞菌F-12 5 g/L DL-ATC分批發(fā)酵過程中的酶活表達(dá)

5 L罐5 g/L DL-ATC分批發(fā)酵菌體OD達(dá)到最大值為3.19。 3-5 h比生長速率迅速升高,同時酶活逐漸增高。溶氧跳升后酶活達(dá)到最大為95.5 U/mL,比活為91.5 U/mg DCW。相比較15 g/L DL-ATC與5 g/L DL-ATC發(fā)酵情況,5 g/L DL-ATC菌體濃度為3.19,為15 g/L DL-ATC 最大菌體濃度的59.3%。5 g/L DL-ATC分批發(fā)酵最大酶活為95.5 U/mL,為15 g/L DL-ATC最大酶活148.1 U/mL的64.5%,而比酶活5 g/L DL-ATC分批發(fā)酵高于15 g/L DL-ATC分批發(fā)酵,說明5 L罐分批發(fā)酵降低DL-ATC濃度可行。

兩階段發(fā)酵降低DL-ATC濃度進(jìn)行誘導(dǎo),以兩種控制不同比生長速率的策略考察對于酶活的影響。第一種策略以比生長速率0.2 h-1控制菌體生長,再以5 g/L DL-ATC進(jìn)行誘導(dǎo)。第二種策略以比生長速率0.27 h-1控制菌體生長,再以5 g/L DL-ATC進(jìn)行誘導(dǎo),結(jié)果如圖6和圖7。

圖6 假單胞菌F-12 5 g/L DL-ATC 指數(shù)流加發(fā)酵(策略1)

圖7 假單胞菌F-12 5 g/L DL-ATC指數(shù)流加發(fā)酵(策略2)

第1種策略下的菌體最高OD為21.2,平均比生長速率為0.233 h-1,得率為0.296。第2種策略菌體最高OD為24.5,平均比生長速率為0.235 h-1,得率為0.241。兩種情況比生長速率基本一致,但得率有較大差別。第一種情況體積酶活為62.99 U/mL,比活為16.4 U/mg DCW。第2種情況下體積酶活為60.4 U/mL,比活為6.63 U/mg DCW。得率不同,積累的代謝副產(chǎn)物有機(jī)酸的量不同,因此兩種不同得率的情況酶活有較大差別。得率的高低和副產(chǎn)物的合成可與補(bǔ)堿消耗量相耦聯(lián)分析。Pseudomonas sp. F-12利用葡萄糖的過程中,會產(chǎn)生有機(jī)酸,造成pH的下降。補(bǔ)入的氨水可以中和生成的有機(jī)酸,使發(fā)酵液保持恒定的pH。消耗氨水的量越多,說明副產(chǎn)物有機(jī)酸產(chǎn)生越多。在策略一得率0.296的情況下,消耗氨水量較少,為153.7 g。在策略二得率0.241的情況下,氨水消耗為208.4 g,說明此時有機(jī)酸產(chǎn)生量多。初步推斷發(fā)酵過程中產(chǎn)生的未知有機(jī)酸,對于酶活有較大的影響。

2.4 轉(zhuǎn)化合成研究

發(fā)酵獲得全細(xì)胞后,研究不同pH,轉(zhuǎn)化溫度,底物濃度,不同表面活性劑及不同金屬離子對其轉(zhuǎn)化合成半胱氨酸的影響。

不同pH和溫度對全細(xì)胞轉(zhuǎn)化反應(yīng)有顯著影響(圖8)。反應(yīng)時間為8 h,pH值為8.0時合成L-半胱氨酸為1.65 g/L。當(dāng)pH值大于9.0時,L-半胱氨

酸產(chǎn)量顯著下降。pH值小于6.0時,幾乎沒有L-半胱氨酸生成。pH9.0轉(zhuǎn)化合成半胱氨酸的量要大于pH7.0,說明Pseudomonas sp. F-12在堿性條件下的轉(zhuǎn)化水平要優(yōu)于中性及酸性條件。Pseudomonas sp. F-12最適轉(zhuǎn)化pH值為8.0(圖8-A),與此前文獻(xiàn)報(bào)道的凍融細(xì)胞最適轉(zhuǎn)化pH一致[12,13]。

考察在30、37、42、45℃條件下合成L-半胱氨酸的情況(圖8-B)。轉(zhuǎn)化溫度為30和37℃時,L-半胱氨酸產(chǎn)量呈持續(xù)上升趨勢。轉(zhuǎn)化溫度為42℃和45℃時,L-半胱氨酸產(chǎn)量在8 h時達(dá)到最大值,隨后半胱氨酸轉(zhuǎn)化量下降。分析原因?yàn)楸驹囼?yàn)使用靜息細(xì)胞,未經(jīng)凍融,細(xì)胞內(nèi)物質(zhì)沒有破裂滲出,細(xì)胞內(nèi)絕大多數(shù)酶在30-37℃為最適轉(zhuǎn)化溫度,轉(zhuǎn)化溫度在42℃以上,超過細(xì)胞體內(nèi)酶的耐受范圍,因此轉(zhuǎn)化時間縮短且轉(zhuǎn)化量較低。由前期試驗(yàn)可知凍融細(xì)胞的最適轉(zhuǎn)化溫度為42℃,本試驗(yàn)證明靜息細(xì)胞與凍融細(xì)胞在轉(zhuǎn)化溫度上有較大差別。

圖8 轉(zhuǎn)化液pH值(A)和溫度(B)對L-半胱氨酸合成的影響

表面活性劑顯著降低表面張力,改變細(xì)胞通透性,使細(xì)胞內(nèi)的酶系更易滲出,從而促進(jìn)轉(zhuǎn)化反應(yīng)。不同表面活性劑對轉(zhuǎn)化反應(yīng)作用不同(表1)。甲苯的促進(jìn)效果最為顯著,為空白對照的7.16倍,最高摩爾轉(zhuǎn)化率達(dá)到93.3%。CTAB的促進(jìn)作用弱于甲苯,產(chǎn)量達(dá)空白對照的1.86倍。氯仿對轉(zhuǎn)化略有促進(jìn)作用。

金屬離子對轉(zhuǎn)化過程有不同程度的激活或抑制作用。試驗(yàn)考察了Mg2+、Fe2+、Co2+、Al3+、Ca2+、Zn2+、Ni2+、Mn2+對轉(zhuǎn)化的影響(表2)。過高金屬離子濃度會極大影響轉(zhuǎn)化反應(yīng)進(jìn)行,而過低的濃度則不能體現(xiàn)出金屬離子的影響,目前已知報(bào)道中多以濃度0.1 mmol/L為標(biāo)準(zhǔn)[14]。

相比較空白對照,F(xiàn)e2+對轉(zhuǎn)化反應(yīng)的促進(jìn)效果最顯著,為空白對照的1.5倍。Co2+、Zn2+、Ni2+、Al3+等重金屬離子對生物體往往具有毒性,這幾種金屬離子對于DL-ATC轉(zhuǎn)化L-半胱氨酸具有明顯抑制作用。在0.1 mmol/L 濃度下Mn2+、Ca2+、Mg2+等金屬離子對轉(zhuǎn)化反應(yīng)影響不明顯。

表1 表面活性劑對L-半胱氨酸合成的影響

表2 不同金屬離子對L-半胱氨酸合成的影響

3 討論

半胱氨酸在工業(yè)具有廣泛用途,日本微生物法已能實(shí)現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn),其摩爾轉(zhuǎn)化率能達(dá)到100%。而我國微生物酶法仍處在實(shí)驗(yàn)室階段。南開大學(xué)劉忠等[15]以DL-ATC為唯一氮源篩選到假單胞菌TS1138,鑒定其產(chǎn)物為L-半胱氨酸。懷麗華等[16,17]采用5 L發(fā)酵罐對TS1138菌株的補(bǔ)料分批發(fā)酵動力學(xué)及合成途徑的代謝控制進(jìn)行了研究。周昌平等[18]對酶促反應(yīng)條件進(jìn)行探討,菌體42℃下

轉(zhuǎn)化2.5 h,產(chǎn)物的質(zhì)量濃度可達(dá)6 g/L。浙江大學(xué)吳敏[19]等以假單胞菌酶法轉(zhuǎn)化DL-ATC合成L-半胱氨酸,篩選到的菌株進(jìn)行原生質(zhì)體誘變后,最高轉(zhuǎn)化量為10 g/L,摩爾轉(zhuǎn)化率達(dá)到76.5%。這些研究仍然與工業(yè)化微生物法生產(chǎn)半胱氨酸具有較大差距,因此優(yōu)化發(fā)酵過程,提高產(chǎn)量、轉(zhuǎn)化率和降低成本具有深遠(yuǎn)意義。

在本試驗(yàn)中Pseudomonas sp. F-12分批發(fā)酵以DL-ATC為唯一碳氮源,DL-ATC既可作為反應(yīng)底物也可作為酶活的誘導(dǎo)物,在發(fā)酵過程中能很快誘導(dǎo)出轉(zhuǎn)化的酶活體系。發(fā)酵過程中平均比生長速率達(dá)到0.305 h-1,比生長速率較高,酶活相對較高,說明菌體活力能明顯影響酶活。

兩階段發(fā)酵采用指數(shù)流加的方式控制菌體生長階段葡萄糖流加量,以葡萄糖作為限制性底物。結(jié)果表明,Pseudomonas sp. F-12細(xì)胞具有快速代謝葡萄糖的能力,如葡萄糖濃度超過2 g/L,其發(fā)酵液中可檢測到未知有機(jī)酸的存在。菌體在利用葡萄糖的過程中,過多的葡萄糖會導(dǎo)致副產(chǎn)物積累。

靜息細(xì)胞轉(zhuǎn)化反應(yīng),通過滲透處理可以促使底物進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)與酶進(jìn)行充分反應(yīng),同時也有利于轉(zhuǎn)化產(chǎn)物被運(yùn)輸?shù)降郊?xì)胞外。加入表面活性劑或有機(jī)溶劑使得細(xì)胞滲透性增大,加快物質(zhì)運(yùn)輸?shù)哪芰?。本研究通過在轉(zhuǎn)化過程中加入滲透劑,增加細(xì)胞通透性,并且將細(xì)胞懸液置于搖床充分振蕩,可有效增加細(xì)胞與滲透劑的接觸,提高轉(zhuǎn)化量7.16倍以上。在金屬離子對于轉(zhuǎn)化反應(yīng)的影響過程中,可以在現(xiàn)結(jié)果基礎(chǔ)上采用不同濃度梯度金屬離子進(jìn)行轉(zhuǎn)化。提高Fe2+離子濃度,測定其能促進(jìn)反應(yīng)的濃度范圍。降低Co2+、Zn2+、Ni2+、Al3+離子濃度,測定抑制范圍。

4 結(jié)論

研究了不同發(fā)酵策略對Pseudomonas sp. F-12發(fā)酵生產(chǎn)L-半胱氨酸的影響。分批發(fā)酵控制DL-ATC濃度在15 g/L,最大體積酶活達(dá)到148.1 U/mL。兩階段發(fā)酵過程中,利用15 g/L DL-ATC進(jìn)行誘導(dǎo)最高體積酶活為313.3 U/mL,提高酶活為分批發(fā)酵的2.1倍。利用5 g/L DL-ATC進(jìn)行誘導(dǎo)最高體積酶活為62.99 U/mL,最高比酶活為16.4 U/mg DCW。較多代謝副產(chǎn)物的情況下,酶活受到一定影響,說明代謝產(chǎn)生的未知有機(jī)酸對于菌體誘導(dǎo)產(chǎn)生酶活有抑制作用??疾炝宿D(zhuǎn)化液pH值、濃度,轉(zhuǎn)化溫度,不同滲透劑及金屬離子等因素對于轉(zhuǎn)化反應(yīng)的影響。在轉(zhuǎn)化液pH 8.0,加入1 mL甲苯的條件下,轉(zhuǎn)化量提高至原來的7.16倍,摩爾轉(zhuǎn)化率達(dá)到93.3%,是目前國內(nèi)報(bào)道的較高轉(zhuǎn)化水平。

[1]楊金奎, 何璧梅. 微生物方法生產(chǎn)L-半胱氨酸的研究進(jìn)展[J].國外醫(yī)藥:抗生素分冊, 2001, 22(4):179-183.

[2]賈存江, 王英燕, 趙麗麗. L-半胱氨酸的生產(chǎn)方法及應(yīng)用進(jìn)展[J]. 齊魯藥事, 2007, 26(9):553-555.

[3]Yu Y, Liu Z, Liu C, et al. Cloning, expression, and identification of genes involved in the conversion of Dl-2-Amino-△2-Thiazoline-4-carboxylic acid to L-cysteine via S-carbamyl-L-cysteine pathway in Pseudomonas sp. TS1138[J]. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry, 2006, 70(9):2262-2267.

[4]Sano K, Yokozek K, Tamura F, et al. Microbial conversion of Dl-2-amino-△2-thiazoline-4-carboxylic acid to L-cysteine and L-cystine:screening of microorganisms and identification of products[J]. Applied and Environmental Microbiology, 1977, 34(6):806-810.

[5]Ryu O, Shin C. Analysis of the Reaction Steps in the Bioconversion of D, L-ATC to L-Cysteine, Korea, KR9700090[P]. 1991.

[6]Tamura Y, Ohmachi T, Asada Y. Induction of 2-amino-△2-thiazoline-4-carboxylic acid hydrolase and N-carbamoyl-L-cysteine Amidohydrolase by S-compounds in Pseudomonas Putida AJ3865[J]. The Journal of General and Applied Microbiology, 2001, 47(4):193-200.

[7]Tamura Y, Nishino M, Ohmachi T, et al. N-carbamoyl-L-cysteine as an intermediate in the bioconversion from D, L-2-Amino-△2-thiazoline-4-carboxylic acid to L-cysteine by Pseudomonas sp. On-4a[J]. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry, 1998, 62(11):2226-2229.

[8]Fan CL, Li ZM, Ye Q. Two-stage cultivation of Pseudomonas Sp. F12 for the production of enzymes converting Dl-2-amino-Δ2-thiazoline-4-carboxylic acid to L-cysteine[J]. Applied Biochemistry and Biotechnology, 2012, 168(7):1867-1879.

[9]Yang B, Liu Z, Deng B, et al. Isolation and genetic improvement of Pseudomonas sp. strain HUT-78, capable of enzymatic production of L-cysteine from Dl-2-amino-△2-thiazoline-4-carboxylic Acid[J].

The Journal of General and Applied Microbiology, 2011, 57(6):379-386.

[10]Duan J, Zhang Q, Zhao H, et al. Cloning, Expression, characterization and application of atcA, atcB and atcC from Pseudomonas sp. for the production of L-cysteine[J]. Biotechnology Letters, 2012, 34(6):1101-1106.

[11]Gaitonde M. A spectrophotometric method for the direct determination of cysteine in the presence of other naturally occurring amino acids[J]. Biochemical Journal, 1967, 104(2):627-633.

[12]Huang Y, Zhao L, Dong T, et al. Optimization of enzymeproducing conditions of Micrococcus sp. S-11 for L-cysteine production[J]. Afr J Biotechnol, 2010, 10(4):615-623.

[13]陳曉云, 杜軍, 高智慧, 等. 惡臭假單胞菌TS1138透性化細(xì)胞的制備及其轉(zhuǎn)化 DL-ATC生成L-半胱氨酸的特性研究[J].南開大學(xué)學(xué)報(bào), 2012, 45(4):99-100.

[14]金永杰, 楊文博, 劉忠, 等. 假單胞菌L-半胱氨酸合成酶的純化和性質(zhì)研究[J]. 微生物學(xué)通報(bào), 2004, 31(6):68-71.

[15]劉忠, 楊文博, 白鋼, 等. 微生物酶法合成L-半胱氨酸和 L-胱氨酸[J]. 微生物學(xué)通報(bào), 2003, 30(6):16-21.

[16]懷麗華, 周昌平, 陳寧, 等. L-半胱氨酸產(chǎn)生菌TS1138的補(bǔ)料分批發(fā)酵動力學(xué)研究[J]. 河南工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2007.28(1):32-35.

[17]懷麗華, 寇廣會, 周昌平, 等. 碳氮源對酶法合成L-半胱氨酸的影響[J]. 現(xiàn)代食品科技, 2006, 22(4):85-87.

[18]周昌平, 寇廣會, 徐慶陽, 等. 微生物轉(zhuǎn)化法合成L-半胱氨酸的研究[J]. 現(xiàn)代化工, 2006, 26(2):275-278.

[19]吳敏, 陳蔚青, 王普, 等. 假單胞菌酶法轉(zhuǎn)化DL-ATC合成L-半胱氨酸[J]. 氨基酸和生物資源, 2009, 31(1):58-63.

(責(zé)任編輯 李楠)

Study on Fermentation and Conversion of L-cysteine by Pseudomonas sp. F-12

Zhao Jingnan Li Zhimin Ye Qin
(State Key Laboratory of Bioreactor Engineering,East China University of Science and Technology,Shanghai 200237)

L-cysteine has been widely applied in food and pharmaceuticals. In this study, different fermentation strategies of Pseudomonas sp. F-12 transforming DL-ATC to L-cysteine were investigated. The results showed that the highest enzyme activity of 15 g/L DL-ATC batch fermentation was 149.1 U/mL, specific activity was 70.9 U/mg DCW. The highest enzyme activity of two phase fermentation using 15 g/L DLATC was 313.3 U/mL, 2.1 times higher than the batch fermentation. The amount of DL-ATC was reduced to 5 g/L. In this study, the major factors on the biotransformation of L-cysteine by Pseudomonas sp. F-12 were investigated. The optimal reaction conditions for cells were 30℃, pH 8.0. The addition of organic solvents could change cellular permeability and enhance the production of L-cysteine by 7.16 times. The maximum conversion of L-cysteine was 93.3%. 0.1 mmol/L Fe2+benefitted the reaction, while 0.1 mmol/L Co2+, Zn2+, Ni2+and other heavy metal ions inhibited transformation.

Pseudomonas sp. F-12 L-cysteine DL-ATC Fermentation Bioconversion

2014-04-24

趙婧楠,女,碩士,研究方向:生物催化與基因克隆;E-mail:zhaojingnan0218@163.com

李志敏,女,博士,教授,研究方向:生物化工,發(fā)酵工程,代謝工程,微生物生理和代謝調(diào)控;E-mail:lizm@ecust.edu.cn

猜你喜歡
生長
野蠻生長
碗蓮生長記
小讀者(2021年2期)2021-03-29 05:03:48
生長的樹
自由生長的家
美是不斷生長的
快速生長劑
共享出行不再“野蠻生長”
生長在哪里的啟示
華人時刊(2019年13期)2019-11-17 14:59:54
野蠻生長
NBA特刊(2018年21期)2018-11-24 02:48:04
生長
文苑(2018年22期)2018-11-19 02:54:14
主站蜘蛛池模板: 亚洲日产2021三区在线| 91 九色视频丝袜| 日韩在线影院| 久久这里只有精品23| 巨熟乳波霸若妻中文观看免费| 日本久久免费| a级毛片免费看| 久草国产在线观看| 有专无码视频| 欧美成人看片一区二区三区| 日本黄色a视频| 国产精品开放后亚洲| 九色免费视频| 91尤物国产尤物福利在线| 亚洲有无码中文网| 免费高清自慰一区二区三区| 国产微拍一区| 中文字幕色站| 久久五月天综合| 在线高清亚洲精品二区| 国产在线观看精品| 国产亚洲欧美在线专区| 亚欧乱色视频网站大全| 免费无码网站| 99久久亚洲综合精品TS| 无码免费的亚洲视频| 69免费在线视频| 亚洲成人一区二区三区| 免费无码网站| 波多野结衣一二三| 思思热精品在线8| 2021国产乱人伦在线播放| 日韩欧美成人高清在线观看| 综合色天天| 996免费视频国产在线播放| 91精品综合| 欧美精品H在线播放| 另类综合视频| 国产成a人片在线播放| 在线观看国产精品日本不卡网| 日韩精品成人网页视频在线| 亚洲午夜天堂| 国产视频你懂得| 亚洲嫩模喷白浆| 成色7777精品在线| 亚洲无码视频一区二区三区| 国产视频欧美| www.国产福利| 97在线公开视频| 亚洲国产精品不卡在线| 中文字幕无线码一区| 国产在线观看精品| 精品丝袜美腿国产一区| 亚洲精品久综合蜜| 97免费在线观看视频| 91麻豆国产在线| 福利小视频在线播放| 国产噜噜在线视频观看| 亚洲av综合网| 少妇露出福利视频| 欧美亚洲日韩不卡在线在线观看| 精品国产91爱| 国产成人资源| 一级福利视频| 免费国产不卡午夜福在线观看| 国产精品尹人在线观看| 国产精品爽爽va在线无码观看| 欧美激情视频一区| 国产精品尤物在线| 国产成人三级在线观看视频| 亚洲精品大秀视频| 99re热精品视频国产免费| 日韩精品中文字幕一区三区| 最近最新中文字幕在线第一页| 欧美一区精品| 欧美精品黑人粗大| 欧美黄色网站在线看| 国产成人综合网在线观看| 四虎永久免费地址| 毛片在线播放a| 国产精品jizz在线观看软件| 亚洲美女操|