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齊墩果酸對氧化損傷模型人臍靜脈內皮細胞的保護作用Δ

2014-03-09 10:37:34王巧云李丙華韓志武青島大學藥學院山東青島66071青島市第八人民醫院藥劑科山東青島66100青島大學附屬醫院藥學部山東青島6600
中國藥房 2014年43期
關鍵詞:模型

王巧云,李丙華,朱 莉,李 萍,韓志武#(1.青島大學藥學院,山東青島 66071;.青島市第八人民醫院藥劑科,山東青島 66100;.青島大學附屬醫院藥學部,山東青島 6600)

動脈粥樣硬化(Atherosclerosis,AS)發生于全身動脈系統,近年來其發病率日益上升[1]。Ross提出AS是一種炎癥性疾病,探討藥物對內皮細胞炎癥反應的影響,成為國內外AS研究的熱點[2]。

齊墩果酸(Oleanic acid)是一種從天然產物中提取的五環三萜類化合物[3]。近十年來,齊墩果酸對心血管疾病的保護作用引起了國內外學者的關注。Somova LI[4]等發現齊墩果酸具有抗AS的作用。Sultana N[5]報道了齊墩果酸的心血管保護作用,與其自身所具有不飽和基團清除活性氧、提高抗氧化酶的活性有關。但是,齊墩果酸抗AS的具體機制仍有待探索。

血管內皮細胞的氧化損傷,尤其是低密度脂蛋白氧化修飾生成的氧化性低密度脂蛋白(Oxidized low density lipoprotein,ox-LDL)是誘發血管內皮細胞炎癥反應的主要因素[6],是AS預防和治療的關鍵靶點。本研究通過復制ox-LDL誘導的人臍靜脈內皮細胞(HUVECs)氧化損傷模型,探討齊墩果酸對HUVECs的保護作用,并進一步對其機制進行研究。

1 材料

1.1 儀器

680型酶標儀(美國Bio-Rad公司);723型分光光度計(上海第三分析儀器廠);IX50型倒置顯微鏡(日本Olympus公司);TDL-50B型低速臺式離心機(上海安亭科學儀器廠)。

1.2 藥品與試劑

齊墩果酸(美國Sigma公司,批號:05504,純度:99%);人膽囊收縮素(CCK-8,日本同仁化學研究所,批號:C0038);ox-LDL(廣州奕源生物科技有限公司,批號:YB-002-1);維生素E(美國Sigma公司,批號:S20796-254);過氧化氫酶(CAT)測試盒(批號:20140227)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-PX)測試盒(批號:20140220)、一氧化氮(NO)測試盒(批號:20140227)、總一氧化氮合酶(NOS)測試盒(批號:20140220)均購于南京建成生物工程研究院。

1.3 細胞

HUVECs(中國科學院上海細胞庫)。

2 方法

2.1 細胞培養

將生長狀態良好的傳代HUVECs加入胰蛋白酶消化1 min,吹打下細胞懸液離心后棄上清液,再加入適量含有10%滅活胎牛血清、100 u/ml青霉素和100 u/ml鏈霉素的DMEM高糖培養基,置37 ℃、5%CO2的細胞培養箱中培養,取對數生長期的細胞進行試驗。

2.2 復制模型細胞ox-LDL最適質量濃度的篩選

每孔分別加入終質量濃度含0(即對照組)、25、50、100、200、400 μg/ml ox-LDL的10%胎牛血清DMEM培養基孵育HUVECs 24 h后,每孔加入10μl CCK-8,繼續培養2 h后,用酶標儀在450 nm波長處檢測光密度(OD)為細胞活性,按下式計算細胞存活率,重復3次。另設僅有培養液的為空白對照組。細胞存活率(%)=(試驗組OD450-空白對照組OD450)/(對照組OD450-空白對照組OD450)×100%。

2.3 齊墩果酸最適濃度的篩選

精密稱取齊墩果酸0.022 8 g,溶于1 ml DMSO中制備50 mmol/L貯備液,-20 ℃貯藏,備用,試驗時用DMEM高糖培養基將貯備液稀釋;取HUVECs(細胞密度為1.5×108L-1),按每孔100 μl細胞加入96孔板,分別加入濃度為0、10、20、40、60、80、100μmol/L的齊墩果酸,每組6孔,培養24 h后,按“2.2”項下方法以CCK-8法檢測并計算細胞存活率。

2.4 齊墩果酸對模型細胞的保護作用

試驗隨機均分為7組,即正常對照(正常培養液)組、模型(正常培養液)組、維生素E(200μg/ml)組與齊墩果酸①、②、③、④(5、10、20、40 μmol/L)組。按“2.2”項下方法接種96孔板,加入相應藥液,預培養16 h后,除正常對照組外其余組加入終質量濃度為100 μg/ml ox-LDL繼續培養24 h,用CCK-8法檢測并計算各組細胞存活率。收集各組細胞,用PBS洗滌2次,加細胞裂解液,冰上裂解1 h,4 ℃下,以離心半徑為9 cm、12 000 r/min離心10 min,收集上清液,按試劑盒說明測定各組細胞內總蛋白及CAT、GSH-PX、NOS活性與NO含量。

2.5 統計學方法

3 結果

3.1 復制模型細胞ox-LDL最適質量濃度的篩選

與0μg/ml比較,其余質量濃度下細胞存活率差異有統計學意義(P<0.01)。IC50=100 μg/ml,因此選取100 μg/ml ox-LDL作為復制HUVECs損傷模型的質量濃度。復制模型細胞ox-LDL最適質量濃度的篩選見表1。

表1 復制模型細胞ox-LDL最適質量濃度的篩選(,n=6)Tab 1 Screening of optimal concentration of ox-LDL on model cell(,n=6)

表1 復制模型細胞ox-LDL最適質量濃度的篩選(,n=6)Tab 1 Screening of optimal concentration of ox-LDL on model cell(,n=6)

與0μg/ml比較:*P<0.05vs.0μg/ml:*P<0.05

3.2 齊墩果酸最適濃度的篩選

與0 μmol/L比較,齊墩果酸濃度為60 μmol/L時細胞存活率降低,且隨著齊墩果酸濃度的增高,細胞存活率逐漸降低,差異有統計學意義(P<0.05)。因此,選擇齊墩果酸濃度0~40 μmol/L范圍內進行以下試驗。齊墩果酸最適濃度的篩選見圖1。

圖1 齊墩果酸最適濃度的篩選(,n=6)與0 μmol/L比較:*P<0.05;與60 μmol/L比較:#P<0.05;與80 μmol/L比較:ΔP<0.05Fig 1 Screening of optimal concentration of oleanolic acid(,n=6)vs.0 μmol/L:*P<0.05;vs.60 μmol/L:#P<0.05;vs.80 μmol/L:ΔP<0.05

3.3 齊墩果酸對模型細胞存活率的影響

與正常對照組比較,模型組細胞存活率降低,差異有統計學意義(P<0.05);與模型組比較,齊墩果酸①、②、③、④組細胞存活率升高,差異有統計學意義(P<0.05),其中齊墩果酸④組比齊墩果酸①組細胞存活率高,差異有統計學意義(P<0.05),證明40μmol/ml齊墩果酸有較強的抗氧化能力。齊墩果酸對模型細胞存活率的影響見表2。

3.4 齊墩果酸對模型細胞NO、NOS、CAT、GSH-PX水平的影響

與正常對照組比較,模型組細胞CAT、GSH-PX、NOS活性減弱,NO含量減少,差異有統計學意義(P<0.05);與模型組比較,齊墩果酸①、②、③、④組CAT、GSH-PX、NOS活性增強,NO含量增加,差異有統計學意義(P<0.05)。齊墩果酸對模型細胞CAT、GSH-PX、NO、NOS水平的影響見表3。

4 討論

ox-LDL在AS的發展中起重要作用[7]。經氧化修飾而成的ox-LDL水平,已成為臨床心腦血管病的一個重要生化標志[7]。Fu R等[8]研究發現,ox-LDL作用內皮細胞24 h后,細胞中的F肌動蛋白(F-actin)被破壞,導致內皮細胞對脂質成分的通透性增加,刺激活性氧(ROS)過度生成,誘導氧化應激,造成細胞氧化損傷,此時機體開啟抗氧化系統,促進了GSH-PX、CAT等抗氧化酶合成[9]。這些抗氧化酶通過清除ROS,發揮抑制氧化損傷的作用[10-11]。本研究以ox-LDL刺激HUVECs復制AS模型,模型組HUVECs細胞存活率明顯降低,GSH-PX與CAT活性明顯下降,表明ox-LDL通過抑制GSH-PX與CAT活性,誘導氧化損傷。給予齊墩果酸預處理,能夠明顯提升HUVECs細胞活力,且GSH-PX與CAT的活力明顯增強。提示齊墩果酸通過提高抗氧化酶GSH-PX、CAT活性,減輕ox-LDL對HUVECs細胞的氧化損傷,能有效抑制AS進展。齊墩果酸提高抗氧化酶活性的作用,可能與其富含不飽和基團的三萜類物質結構有關[12]。

表2 齊墩果酸對模型細胞存活率的影響(,n=6)Tab 2 Effects of OA on survival rate of damaged cell(,n=6)

表2 齊墩果酸對模型細胞存活率的影響(,n=6)Tab 2 Effects of OA on survival rate of damaged cell(,n=6)

與正常對照組比較:*P<0.05;與模型組比較:#P<0.05;與齊墩果酸①組比較:ΔP<0.05vs.normal control group:*P<0.05;vs.model group:#P<0.05;vs.oleanolic acid ①group:ΔP<0.05

表3 齊墩果酸對模型細胞CAT、GSH-PX、NO、NOS水平的影響(,n=6)Tab 3 Effects of OA on the levels of CAT,GSH-PX,NO and NOS in damaged cell(,n=6)

表3 齊墩果酸對模型細胞CAT、GSH-PX、NO、NOS水平的影響(,n=6)Tab 3 Effects of OA on the levels of CAT,GSH-PX,NO and NOS in damaged cell(,n=6)

與正常對照組比較:*P<0.05;與模型組比較:#P<0.05vs.normal control group:*P<0.05;vs.model group:#P<0.05

正常情況下,內皮細胞中由內皮型一氧化氮合酶(eNOS)催化產生血管內皮舒張因子NO[13]。NO通過調控四氫生物蝶呤(BH4),降低體內ROS含量[14],起到保護內皮細胞免于氧化侵襲的作用。本研究對細胞中NO含量以及NOS活性進行測定,發現ox-LDL損傷的HUVECs細胞中,NO含量減少,NOS活性降低,表明NO和NOS作為抗氧化因子,在HUVECs細胞氧化損傷中受到抑制。經過齊墩果酸預處理,這兩項指標均有不同程度的升高,證實齊墩果酸通過激活NOS,促進NO生成,保護HUVECs細胞。最近,Gkaliagkousi E等[15]研究發現,ox-LDL可以顯著抑制內皮細胞、巨噬細胞NO合成酶基因表達,從而抑制NO合成。齊墩果酸提升NO和NOS的內皮保護作用,是由于NO對ROS的直接清除作用,還是涉及到NOS的基因調控,仍需進一步研究證實。

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