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同源重組敲除臨床肺炎克雷伯菌質粒blaKPC-2基因

2014-01-02 08:43:04田月如艾芙琪馬逸珉蔣曉飛
檢驗醫(yī)學 2014年6期
關鍵詞:耐藥

仉 英,田月如,艾芙琪,劉 紅,馬逸珉,王 蓓,蔣曉飛

(復旦大學附屬華山醫(yī)院檢驗科,上海200040)

由于抗菌藥物的濫用,導致臨床菌株的耐藥性不斷增強。最主要的耐藥機制是通過質?;蚱渌梢苿釉@取并不斷積累各種耐藥基因,導致同一菌株攜帶多種耐藥基因而產(chǎn)生多重耐藥、泛耐藥。我們研究小組通過研究2006年8月至2009年12月共57株泛耐藥臨床肺炎克雷伯菌株,發(fā)現(xiàn)其主要為2種多位點序列分析(multilocus sequence typing,MLST)型別:ST423型(HS062105)和ST11型(HS082416),所有菌株都攜帶 KPC-2、CTXM-14和 SHV-12型 β-內酰胺酶基因。為研究泛耐藥臨床肺炎克雷伯菌積累多種β-內酰胺酶基因的原因,以及每種耐藥酶在耐藥機制中所起的作用和其相互之間的作用,將這些基因從臨床菌株中逐一敲出,并逐一回補到肺炎克雷伯菌標準菌株中,這種快速、高效的研究方法目前尚未見報道。本研究小組成功地運用λ red同源重組法敲除了一株ST423型(HS062105)和一株ST11型(HS082416)肺炎克雷伯菌臨床菌株質粒上的KPC基因。

材料和方法

一、菌株和質粒

肺炎克雷伯菌HS062105(ST423型)來自華山醫(yī)院2006年8月從尿標本中分離到的臨床菌株,肺炎克雷伯菌HS082416(ST11型)于2009年10月從痰標本中分離。質粒 pKOBEG-Apr、pMQ300來自于英國Leicester大學實驗室。

二、主要儀器和試劑

Bio-tech公司生產(chǎn)的聚合酶鏈反應(polymerase chain reaction,PCR)儀、電導入儀、離心機,抗菌藥物氨芐西林(ampicillin,AMP)、頭孢噻肟(cefotaxime,CTX)、頭孢他啶(ceftazidime,CAZ)、亞胺培南(imipenem,IMP)、美羅培南(meropenem,MEM)和厄他培南(ertapenem,ETM)購自中國藥品生物制品檢定所,血瓊脂平板購自上海科瑪嘉生物有限公司,菌株的分離與鑒定使用法國生物梅里埃公司全自動微生物分析系統(tǒng)VITEK-Compect,PCR試劑購自大連寶生物TaKaRa公司。引物合成由上海英駿生物有限公司完成,電泳結果分析使用Tanon2500數(shù)碼凝膠圖像分析系統(tǒng)。

三、同源重組片段的制備和純化

以試驗臨床菌株質粒為模板,SOE1、SOE2和SOE5、SOE6為引物,質粒pMQ300為模板,SOE3、SOE4為引物,分別進行PCR擴增,見表1,得到PCR產(chǎn)物TS1、TS2和hph,然后以PCR產(chǎn)物TS1及hph為模板,SOE1、SOE4為引物進行重疊延伸基因擴增(gene splicing by overlap extension polymerase chain reaction,SOE-PCR),得到產(chǎn)物TS1-hph,再以 TS1-hph為模板,以 SOE1、SOE6為引物進行SOE-PCR即可得到產(chǎn)物TS1-hph-TS2。經(jīng)鑒定的PCR產(chǎn)物用瓊脂糖凝膠回收試劑盒進行回收純化并測定DNA濃度,試驗過程見圖1[1-3]。

表1 試驗引物

圖1 λ red同源重組片段的構建示意圖

四、λ red重組功能的誘導

1.λ red依托質粒pKOBEG-Apr電轉化進入試驗菌株 試驗菌株制備成為感受態(tài),取0.1 μg pKOBEG-APr質粒DNA電擊轉化感受態(tài)細胞,電轉后加入1 mL LB培養(yǎng)基,37℃振蕩培養(yǎng)60 min之后涂于含阿普霉素的LB平板上,30℃過夜。30℃過夜LB平板上生長的單克隆即為含有λ red依托質粒pKOBEG-Apr的試驗菌株。

2.λ red重組蛋白的誘導 挑取30℃過夜LB平板上的單克隆,加入5 mL LB培養(yǎng)液中過夜培養(yǎng),次日以1∶50的比例接種細菌至100 mL LB培養(yǎng)液中,30℃振蕩培養(yǎng)至吸光度(A)600值為0.2時,加入L-阿拉伯多糖至終濃度為0.1%,繼續(xù)30℃振蕩培養(yǎng)至A600值為0.6,在此期間exo/bet/gam蛋白在L-阿拉伯多糖的誘導下發(fā)生了短暫表達,將誘導表達后的細菌制備成為感受態(tài)。

五、λ red重組

取0.2 μg帶有同源臂的融合片段(步驟3)電擊轉化感受態(tài)細胞(步驟5),電轉后加入1 mL LB培養(yǎng)基,30℃振蕩培養(yǎng)60 min,最后取其中的100μL 涂于潮霉素(150 μg/mL)+ 阿普霉素(10 μg/mL)LB平板上,30℃過夜。30℃過夜LB平板上生長的單克隆同時含有λ red依托質粒pKOBEG-Apr和帶有同源臂的融合PCR產(chǎn)物,在λ red重組蛋白的誘導下,同源重組敲除試驗菌株的blaKPC-2基因。

六、重組后鑒定

挑取數(shù)個單克隆至2 mL LB培養(yǎng)基中[潮霉素(150 μg/mL)+ 阿普霉素(10 μg/mL)],37 ℃振蕩培養(yǎng)過夜,次日提取質粒 DNA,PCR擴增blaKPC-2及hph基因。

七、目的基因完全去除的驗證

抽提原試驗菌株及重組后菌株RNA,逆轉錄PCR定量檢測blaKPC-2基因的表達量。

八、抗菌藥物敏感性試驗

參照美國臨床實驗室標準化協(xié)會(Clinical and Laboratory Standards Institute,CLSI)M07-A8,采用微量肉湯最低抑菌濃度(minimal inhibitory concentration,MIC)法檢測野生株及 blaKPC-2缺陷突變株對 AMP、CTX、CAZ、IMP、MEM 和 ETM 的敏感性。

結 果

一、同源重組片段的構建

耐藥基因片段、上下游片段及融合片段電泳結果見圖2,泳道1~5為ST423型試驗菌株各片段電泳圖,泳道6~10為ST11型試驗菌株各片段電泳圖。

二、重組克隆株的篩選及確認

野生株中blaKPC-2基因為陽性,hph基因為陰性,而blaKPC-2缺陷突變株中blaKPC-2基因為陰性,hph基因為陽性,即可確認blaKPC-2缺陷突變株發(fā)生了同源重組,成功敲除了blaKPC-2基因,見圖3。

圖2 耐藥基因片段、上下游片段及融合片段電泳圖

圖3 原試驗菌株(野生株)和重組克隆株(blaKPC-2缺陷突變株)中blaKPC-2和hph基因電泳圖

三、野生株及blaKPC-2缺陷突變株中blaKPC-2基因的表達水平

使用逆轉錄PCR,以HS08763作為參考菌株,野生株HS062105(ST423型)blaKPC-2基因表達量為參考菌株表達量的1.9倍,野生株HS082416(ST11型)blaKPC-2基因表達量為參考菌株表達量的 0.9倍。blaKPC-2缺陷突變株 ΔHS062105、ΔHS082416 blaKPC-2基因表達量檢測不出,說明成功敲除了野生株blaKPC-2基因。

四、體外藥物敏感性試驗

野生株 HS062105(ST423型)、HS082416(ST11 型)對 AMP、CTX、CAZ、IMP、MEM、ETM均耐藥,blaKPC-2缺陷突變株 ΔHS062105對 IMP、MEM敏感,ΔHS082416對 IMP、MEM、ETM 敏感。見表2。

表2 野生株及blaKPC-2缺陷突變株藥物敏感性試驗結果

討 論

傳統(tǒng)的同源重組敲除某特定基因需要多步亞克隆,費時、費力。λ red重組質粒pKOBEG-Apr攜帶λ red,在L-阿拉伯糖的誘導下可表達同源重組蛋白exo/bet/gam,介導電轉入的線性融合產(chǎn)物與相應的基因發(fā)生同源重組,然后再用合適的抗菌藥物篩選,即可得到重組突變株,省時、省力。由于pKOBEG有一溫度敏感的復制起始位點,當溫度高于37℃時,細菌將消除質粒pKOBEG。不會對細菌后續(xù)研究造成干擾,是一種簡單、高效的敲除方法。

泛耐藥菌株對幾乎所有臨床常用的抗菌藥物都耐藥,很難找到合適的耐藥標記篩選特定的突變克隆株,造成臨床菌株的研究困難,進展緩慢。潮霉素和阿普霉素廣泛應用于農(nóng)業(yè)細菌學研究,未在臨床中使用。臨床菌株普遍對這2種藥物敏感,因此在臨床菌株中非常有用。

本研究選取了2006年8月至2009年12月分離的肺炎克雷伯菌 HS062105(ST423型)、HS082416(ST11型),在這個時間段內,泛耐藥肺炎克雷伯菌快速播散,臨床分離菌株數(shù)量呈指數(shù)增長,并由ST423型轉變?yōu)槎玖Ω叩腟T11型。研究耐藥基因水平傳播的機制,此時間節(jié)點分離到的泛耐藥肺炎克雷伯菌最具代表性。我們成功地用FKPCU-Hyg-FKPCD片段替換了細菌的KPC基因,克隆證實突變菌株KPC(-)、Hyg(+),藥物敏感性試驗結果顯示菌株敲除KPC基因后對IMP、MEM和ETM敏感,而菌株HS062105(ST423型)僅對IMP和MEM敏感,ETM仍耐藥。究其原因是HS062105(ST423型)、HS082416(ST11型)還產(chǎn)生CTXM-14及SHV-12,因此對CAZ、CTX等仍耐藥,HS062105(ST423型)對ETM仍耐藥是因為該菌株還產(chǎn)生一種頭孢菌素酶,有文獻報道高表達頭孢菌素酶加上膜孔蛋白缺陷可導致菌株對ETM 耐藥[4]。

[1]Chaveroche MK,Ghigo JM,d'Enfert C.A rapid method for efficient gene replacement in the filamentous fungus Aspergillus nidulans[J].Nucleic Acids Res,2000,28(22):E97.

[2]Lesic B,Rahme LG.Use of the lambda red recombinase system to rapidly generate mutants in Pseudomonas aeruginosa[J].BMC Mol Biol,2008,9:20.

[3]Hamann A,Krause K,Werner A,et al.A two-step protocolfor efficientdeletion ofgenes in the filamentous ascomycete Podospora anserina[J].Curr Genet,2005,48(4):270-275.

[4]Woodford N,Tierno PJ Jr,Young K,et al.Outbreak of Klebsiella pneumoniae producing a new carbapenemhydrolyzing class A beta-lactamase,KPC-3,in a New York MedicalCenter[J]. Antimicrob Agents Chemother,2004,48(12):4793-4799.

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