高 楊,吳 芹,楊丹莉,鄧 江,黃燮南
(貴州省基礎藥理重點實驗室暨遵義醫學院藥理學教研室,貴州遵義 563000)
經皮腔內冠狀動脈介入治療 (PCI)已成為治療冠心病的重要手段,然而,PCI術后存在的再狹窄問題卻嚴重影響了其遠期療效[1]。一般認為,血管平滑肌細胞(VSMC)增殖、肥大、遷移是血管術后再狹窄等的病理基礎[2]。已有研究表明,人參皂苷Rg1(Rg1)能抑制腫瘤壞死因子-α所致VSMC增殖[3-4]。我們先前的研究也證實,人參總皂苷及Rg1均能抑制球囊損傷所致大鼠頸動脈內膜增厚[5-6],在培養的 VSMC,人參總皂苷對血小板源性生長因子誘導的VSMC增殖也具有抑制作用[7]。然而,VSMC增殖受多種因素的調控,其中,氧化應激[8]和一氧化氮 (NO)形成[9]均明顯影響 VSMC增殖。因此,本研究擬觀察Rg1的抗血管內膜增生作用與其抗氧化應激和促NO生成的關系。
1.1 實驗動物 ♂ SD大鼠,清潔級,體質量300~350 g,由第三軍醫大學大坪醫院實驗動物中心提供[許可證號:SCXK-(軍)2007-017]。
1.2 藥品及試劑 Rg1:北京奧明興業科技有限責任公司提供 (純度95%);SOD、MDA檢測試劑盒(南京建成生物工程研究所);內皮型一氧化氮合酶(eNOS)、β-actin引物、TRIzol(TaKaRa生物工程公司);逆轉錄反應體系試劑盒(Applied Biosystems公司);SYBR?GREEN PCR Master Mix(Warrington WA14SR.UK);RNA純化試劑盒 (上海華舜生物工程有限公司)。
1.3 儀器 Fogarty導管(美國edwards lifescience公司);Leica光學顯微鏡及照相系統(德國Leica Microsystems Ltd);Mastercycler Gradient PCR儀、Centrifuge 5417R/5415D離心機 (德國Eppendorf公司);icycler熒光定量PCR儀(美國BIO-RAD公司)。
1.4 方法
1.4.1 大鼠頸總動脈球囊損傷模型的制備 大鼠用20%水合氯醛 (2 ml·kg-1)腹腔注射麻醉后仰臥位固定,用碘伏消毒頸部皮膚并作前正中切口,分離左頸總動脈和頸外動脈,用血管夾阻斷前者近心端和左頸內動脈;結扎頸外動脈遠心端并在其近心端剪一小口,將2 F球囊導管插入去除血管夾后的頸總動脈起始部,注入約0.1 ml生理鹽水使球囊略充盈,緩慢推拉球囊導管3次以剝脫頸動脈內皮,負壓回抽生理鹽水,退出導管,結扎左頸外動脈,縫合皮膚切口。假手術組除不插入球囊導管外,其余操作與模型組相同。術后每只大鼠注射12萬U芐星青霉素預防感染,清醒后置籠喂養。
1.4.2 動物分組及取材 大鼠隨機分5組:假手術組和模型組給予等體積生理鹽水;3個給藥組造模后分別給 Rg1 4、8、16 mg·kg-1。術后次日腹腔注射給藥,連續14 d。最后1次給藥的次日,將大鼠麻醉后取血用于SOD、MDA檢測,并迅速取出損傷的左頸總動脈,用預冷生理鹽水沖洗干凈,取中間段標本放入10%中性福爾馬林中固定24 h,石蠟包埋后用于形態學觀察。剩余標本用濾紙吸干后,立即置液氮中速凍,然后放-70℃冰箱中凍存用于Real-Time RT-PCR檢測。
1.4.3 SOD活性和MDA含量測定 按相應試劑測試盒說明操作。
1.4.4 病理學組織觀察 將上述石蠟包埋標本切片,行蘇木精-伊紅 (H.E.)染色,Leica光學顯微鏡下觀察血管腔形態、內膜增厚情況,并拍照記錄。用Q Win圖像處理與分析系統測定新生內膜面積和中膜面積,并計算內膜面積/中膜面積比值,每個標本觀察3張切片,取平均值。
1.4.5 Real-Time RT-PCR 檢測 VSMC 中 eNOS mRNA的表達 取冷凍血管標本置于0.5 ml TRIzol液中,用研磨杵充分勻漿至組織完全裂解,在上述含有樣品的Eppendorf(EP)管中加入0.2 ml氯仿,快速搖勻,以12 000×g·min-1在4 ℃下離心10 min,取出上清液,小心吸取上層水相置于另一無菌的新EP管中,加等量異丙醇,輕搖混勻后,室溫靜置10 min,再以12 000×g·min-14℃離心10 min,肉眼可見白色半透明的細胞總RNA沉于管底,棄去上清液。加入75%乙醇0.5 ml,以12 000×g·min-1在4℃下離心10 min,小心棄去乙醇。將EP管倒置于濾紙上,讓沉淀的RNA在室溫下自然干燥,至乙醇完全揮發,加DEPC水100 μl溶解。RNA純化后進行樣品純度鑒定。兩步法逆轉錄-聚合酶鏈反應如下:首先從基因庫GeneBank中查出相關引物序列,由TaKaRa生物工程公司合成相應引物(見Tab 1)。

Tab 1 Primer pairs used in Real-Time PCR
PCR反應體系為20 μl第一步,95℃×10 min;第二步,95℃ ×15 s,退火溫度 ×1 min,循環45次。結果分析處理(相對定量法),以Ct值為統計參數依次計算下列數據:(1)Ct average=(Ct1+Ct2+Ct3)/3(重復管);(2)dCt=Ct average-中間值;(3)基因的表達=2^(-dCt);(4)相對定量=目的基因的表達/內參基因的表達
1.4.6 統計學處理 采用SPSS16.0統計軟件,所有數據均以±s表示,組間比較采用單因素方差分析(One Way ANOVA)。

Fig 1 Effects of Rg1 administration on morphological changes of ballon-injured carotid artery of rats
2.1 Rg1對大鼠頸動脈球囊損傷模型血管形態學變化的影響
2.1.1 H.E.染色血管形態學變化及Rg1對其影響
光鏡下,與假手術組(Fig 1A)比較,可見球囊損傷的各組血管標本均有不同程度的內膜增厚,管腔狹窄,大量新生內膜形成,各處新生內膜厚薄不一,以模型組(Fig 1B)最為嚴重。Rg1(4、8、16 mg·kg-1)給藥各組較模型組新生內膜厚度明顯減小(Fig 1C,D,E)。
2.1.2 Rg1對大鼠球囊損傷后頸動脈形態學指標的影響 H.E.染色切片經圖像分析的結果表明,與假手術組比較,模型組的新生內膜面積和內膜面積/中膜面積比值均分別增加了十多倍。Rg1(4、8、16 mg·kg-1)給藥可呈劑量依賴性減輕球囊損傷所致新生內膜增厚(P<0.01),見Tab 2。
Tab 2 Effects of Rg1 administration on neointimal area and the ratio of neointimal area/media area in balloon-injured carotid artery of rats(±s,n=6)

Tab 2 Effects of Rg1 administration on neointimal area and the ratio of neointimal area/media area in balloon-injured carotid artery of rats(±s,n=6)
##P <0.01 vs sham;**P <0.01 vs model
Group Neointimal area/μm2 Neointimal area/media area Sham 6774.67 ±1094.84 0.13 ±0.01 Model 105020.7 ±27616.15## 1.71 ±0.28##Rg1 4 mg·kg-1 50539.68 ±27920.20** 0.81 ±0.45**Rg1 8 mg·kg-1 41533.91 ±23274.37** 0.67 ±0.29**Rg1 16 mg·kg-1 28434.56 ±17236.42** 0.45 ±0.27**
2.2 大鼠血漿中SOD活力的變化 Tab 3的結果表明,模型組較假手術組SOD活力降低了22%(P<0.01),Rg1(4、8、16 mg·kg-1)各給藥組與模型組比較,該指標分別升高了21%、23%、24%(P<0.05),3個劑量組間呈一定的劑量依賴性趨勢。
Tab 3 Effects of Rg1 administration on SOD activities in plasm of rats with balloon-injured carotid artery(±s)

Tab 3 Effects of Rg1 administration on SOD activities in plasm of rats with balloon-injured carotid artery(±s)
##P<0.01 vs sham;*P<0.05 vs model
Group n SOD/kU·L -1 Sham 8 104.30 ±11.37 Model 6 81.71 ±8.60##Rg1 4 mg·kg-1 8 98.68 ±4.99*Rg1 8 mg·kg-1 8 100.71 ±2.97*Rg1 16 mg·kg-1 7 101.62 ±7.20*
2.3 大鼠血漿中MDA含量的測定 模型組大鼠血漿中 MDA 的含量為 14.42 μmol·L-1,較假手術組約升高了168%(P<0.01);另一方面,Rg1(4、8、16 mg·kg-1)各給藥組的MDA含量均較模型組明顯降低(P<0.01),且3個劑量組間呈一定的劑量依賴關系(Tab 4)。
Tab 4 Effects of Rg1 administration on MDA level in
blood plasm of rats with balloon-injured carotid artery(±s)

##P <0.01 vs sham;**P <0.01 vs model
2.4 Rg1對球囊損傷后血管壁eNOS mRNA表達的影響 Real-Time RT-PCR檢測結果顯示,球囊擴張損傷頸動脈可明顯下調eNOS mRNA表達。與假手術組比較,模型組的eNOS mRNA表達僅為前者的4%(P<0.01)。Rg1 4 mg·kg-1對 eNOS mRNA表達下調雖無統計學上明顯的改善作用(P>0.05),但仍有上調的趨勢,當其劑量為8、16 mg·kg-1時,便能明顯上調由球囊損傷所降低的eNOS mRNA表達,使之分別恢復到假手術組的54%和56%(P<0.01)。

Fig 2 Effects of Rg1 administration on the expression of eNOS mRNA in balloon-injured carotid artery of rats(±s,n=6)
本實驗的結果顯示,Rg1 4,8,16 mg·kg-1給藥兩周,可明顯改善球囊損傷所致以血管新生內膜增厚為主的形態學變化,提示其對血管內膜異常增生有抑制作用。
研究表明,氧化應激通過活化巨噬細胞釋放細胞因子和生長因子,刺激基質重塑和平滑肌細胞增殖;活性氧還可調節基質金屬蛋白酶參與基質重塑,導致新的細胞外基質和平滑肌細胞的積聚以致新生內膜的形成,從而引起球囊損傷后管腔狹窄[8]。因此,氧化應激被認為與AS及經皮腔內冠狀動脈形成術(PCI)后再狹窄的發病有密切關系,抑制氧化應激便有可能抑制血管損傷后的再狹窄[10-11]。已有研究發現[12],每天給小劑量抗氧化劑普羅布考(probucol)可減輕PCI所致血管再狹窄的發生率和嚴重性。業已明了,SOD活力的高低可反映機體內抗自由基水平的高低。而測定MDA含量可間接反映自由基對機體的損傷程度。我們的實驗表明,Rg1呈劑量依賴性地降低頸動脈球囊損傷后大鼠血漿中MDA的含量,而提高SOD的活力。表明Rg1能減輕氧化應激,發揮抗脂質過氧化作用,該作用可能是其抗球囊損傷所致血管內膜增生的機制之一。
目前,NO抑制VSMC增殖的作用已得到充分肯定。有研究表明[9],NO生成藥如硝普鈉等能呈劑量依賴性地抑制VSMC增殖,給予NO前體藥左旋精氨酸、口服NO供體藥嗎多明(molsidomine)和長時間直接吸入NO均能明顯減輕球囊損傷所致血管內膜增厚。還有文獻報道,損傷的VSMC在轉染了eNOS基因后能充分分化,降低細胞的增殖率[13],從而肯定了eNOS在抑制細胞增殖中的作用。
本室既往研究發現,在培養的新生乳鼠心肌細胞,Rg1可促進NO釋放,參與其抗心肌細胞肥大效應[14];利用縮窄腹主動脈所致左室心肌肥厚模型的研究也發現,NO生成在Rg1的抗心肌肥厚中發揮一定作用[15]。在本研究中,我們雖未能測定血管壁NO濃度的變化,但發現模型組eNOS mRNA表達量僅為假手術組的4%,而Rg1給藥后,特別是8 mg·kg-1和 16 mg·kg-1組,大鼠頸動脈 eNOS mRNA 表達量可恢復到假手術組的一半以上。該結果似能表明,Rg1可通過改善和恢復大鼠球囊損傷后血管壁eNOS的表達,促進NO的產生,減輕內膜增殖,成為其抗囊損傷后血管再狹窄的另一個機制。
綜上所述,Rg1抑制球囊損傷后血管內膜異常增生的作用,可能與其抗氧化應激和上調NOS mRNA,促進NO生成有關。
[1]Garza L,Aude Y W,Saucedo J F.Can we prevent in-stent restenosis[J]?Curr Opin Cardiol,2002,17(5):518-25.
[2]Ross R.Atherosclerosis-an inflammatory disease[J].N Engl J Med,1999,340(2):115-26.
[3]Ma Z C,Gao Y,Wang Y G,et al.Ginsenoside Rg1 inhibits proliferation of vascular smooth muscle cells stimulated by tumor necrosis factor-α[J].Acta Pharmacol Sin,2006,27(8):1000-6.
[4]Zhang H S,Wang S Q.Ginsenoside Rg1 inhibits tumor necrosis factor-α (TNF-α )-induced human arterial smooth muscle cells(HASMCs)proliferation[J].J Cell Biochem,2006,98(6):1471-81.
[5]Yu X F,Deng J,Yang D L,et al.Total Ginsenosides suppress the neointimal hyperplasia of rat carotid artery induced by balloon injury[J].Vascul Pharmacol,2011,54(1-2):52-7.
[6]Gao Y,Deng J,Yang D L,et al.Ginsenoside Rg1 inhibits vascular intimal hyperplasia in balloon-injured rat carotid artery by downregulation of extracellular signal-regulated kinase 2[J].J Ethnopharmacol,2011,138(2):472-8.
[7]黃 警,黃燮南,張 紓,等.人參總皂苷對PDGF-BB所致血管平滑肌細胞增殖周期的影響[J].中國藥理學通報,2010,26(6):787-91.
[7]Huang J,Huang X N,Zhang S,et al.Effect of total ginsenosides on the cell cycle of rat vascular smooth muscle cell proliferation induced by PDGF-BB[J].Chin Pharmacol Bull,2010,26(6):787-91.
[8]Tardif J C,Gregoire J,L’Allier P L.Prevention of restenosis with antioxidants:mechanisms and implications[J].Am J Cardiovasc Drugs,2002,2(5):323-34.
[9]Kibbe M,Billiar T,Tzeng E.Inducible nitric oxide synthase and vascular injury[J].Cardiovasc Res,1999,43(3):650-7.
[10]Alexander R W.Hypertension and the pathogenesis of atherosclerosis.Oxidative stress and the mediation of arterial inflammatory response:a new perspective[J].Hypertension,1995,25(2):155-61.
[11]Bassenge E,Schneider H T,Daiber A.Oxidative stress and cardiovascular diseases[J].Dtsch Med Wochenschr,2005,130(50):2904-9.
[12]Kaminnyi A I,Lankin V Z,Samko A N,et al.Low daily dose of antioxidant probucol decreases incidence and severity of restenosis after transluminal coronary balloon angioplasty[J].Bull Exp Biol Med,2005,139(2):183-5.
[13]蔡文瑋,陸 平,盛 凈.eNOS基因體外轉染對大鼠頸總動脈球囊損傷后血管平滑肌細胞增殖規律的影響[J].中國微循環,2005,9(4):251-60.
[13]Cai W W,Lu P,Sheng J.The influence of the vascular smooth muscle cell proliferation in catheter injuried rat common carotid artery after eNOS transfectionin vitro[J].J Chin Microcirc,2005,9(4):251-60.
[14]王英婷,黃燮南,王風安.人參皂苷Rg1抑制PGF2α誘導心肌細胞肥大[J].中國藥理學通報,2008,24(5):611-5.
[14]Wang Y T,Huang X N,Wang F A.Ginsenoside Rg1 inhabits cardiomyocyte hypertrophy induced by prostaglandin F_(2α)[J].Chin Pharmacol Bull,2008,24(5):611-5.
[15]Deng J,Wang Y W,Chen W M,et al.Role of nitric oxide in ginsenoside Rg1-induced protection against left ventricular hypertrophy produced by abdominal aorta coartation in rats[J].Biol Pharm Bull,2010,33(4):631-5.