胡明華,梁永威,彭川叢
(1.無限極<中國>有限公司,廣東 廣州 510665; 2.廣州中醫藥大學,廣東 廣州 510006)
茯苓為多孔菌科真菌茯苓 Poria cocos(Schw.)Wolf的干燥菌核,為藥食兩用的傳統中藥,在我國分布于吉林、湖北、安徽、云南、四川、浙江、湖南、河南、福建、貴州、臺灣、廣西等地,生長栽培方式、加工炮制方法、儲藏條件等諸多因素會影響其化學成分的含量。茯苓中最主要的化學成分是茯苓多糖,含量可達茯苓干重的84.2%[1],主要存在于茯苓細胞壁中,按溶解度的不同又分為水溶性茯苓多糖和堿溶性多糖。堿溶性多糖不溶于水,是一種帶有(1→6)支鏈的(1→3)鍵接的β-D-葡聚糖,經化學改造增加其水溶性后具有顯著的抗腫瘤作用[2]。含量較低的水溶性茯苓多糖具有明顯的抗腫瘤活性[3]。筆者從產地和規格兩方面對茯苓水溶性多糖含量進行研究,比較了不同產地、不同規格茯苓之間的含量差異。現報道如下。
UV-2800型紫外可見分光光度計(尤尼柯<上海>儀器有限公司);TL-5.0W型臺式離心機(上海市離心機械研究所);PL-303型電子天平(梅特勒-托利多<上海>有限公司)。D-無水葡萄糖、濃硫酸、95%乙醇、苯酚均為國產分析純。各產地和規格的茯苓藥材采購于當地,共5個產地3種規格。
2.1.1 葡萄糖對照品溶液制備
精密稱取干燥至恒重的 D-無水葡萄糖0.010 g,加水溶解,并定容至100 mL,混勻,制成葡萄糖對照品溶液,質量濃度為0.1 g/L。
2.1.2 測定條件優選
測定波長[4-9]:精密吸取葡萄糖對照品溶液1.0 mL和供試品溶液1.0 mL,分別置20 mL試管中,準確補水至2 mL,加入5%苯酚液1.0 mL,在旋轉混勻器上混勻,然后迅速加入5 mL濃硫酸,再次混勻后,置沸水浴中煮沸15 min,冷卻至室溫,在紫外分光光度儀上測定400~520 nm波長之間的吸收度。結果葡萄糖對照品溶液、供試品溶液均在490 nm波長處有最大吸收,故以此為測定波長。
苯酚用量:精密吸取葡萄糖對照品溶液1.0 mL 5份,置20 mL的試管中,準確補水至2 mL,分別加入5%苯酚液0.6,0.8,1.0,1.2,1.4 mL,在旋轉混勻器上混勻后,各加入5 mL濃硫酸,再次混勻,置沸水浴中煮沸15 min,冷卻至室溫,以純凈水作空白對照,在490 nm波長處測定吸光度。結果當5%苯酚加入量為1.0 mL時,樣品的吸光度最大。
濃硫酸用量:精密吸取葡萄糖對照品溶液1.0 mL 5份,置20 mL試管中,準確補水至2 mL,各加入5%苯酚液1.0 mL,在旋轉混勻器上混勻后,分別加入濃硫酸 3,4,5,6,7 mL,再次混勻后,置沸水浴中煮沸15 min,冷卻至室溫,以純凈水作空白對照,在490 nm波長處測定吸光度。結果當濃硫酸加入量為5 mL時,樣品的吸光度最大。
2.1.3 方法學考察
線性關系考察:分別精密吸取葡萄糖對照品溶液0,0.1,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0 mL,置 20 mL 試管中,準確補水至 2 mL,分別加入5%苯酚液1.0 mL,在旋轉混勻器上混勻后,加入5 mL濃硫酸,再次混勻,置沸水浴中煮沸15 min,冷卻至室溫,以試劑空白作對照,在490 nm波長處測定吸光度。以吸光度 A為縱坐標、葡萄糖對照品溶液加入的體積 C為橫坐標繪制標準曲線,得回歸方程 A=0.698 7 C+0.010 3,R2=0.999 7(n=6)。結果表明,葡萄糖對照溶液加入體積在0.001~0.015 mL范圍內與吸光度線性關系良好。
重復性試驗:精密吸取供試品溶液1 mL,按含量測定項下方法操作,平行操作6份,以試劑空白作對照,測定吸光度。結果的RSD=0.92%(n=6),表明方法重復性良好。
穩定性試驗:精密吸取同一供試品溶液0.5 mL,按含量測定項下方法操作,以試劑空白作對照,每隔30 min測定1次吸光度,考察樣品3 h內的穩定性。結果的 RSD=0.15%,表明供試品溶液在3 h內顯色穩定。
精密度試驗:精密吸取葡萄糖對照品溶液1 mL,按含量測定項下方法操作,以試劑空白作對照,連續測定5次吸光度。結果的RSD=0.06%,表明儀器精密度良好。
回收率試驗:精密吸取供試品溶液0.5 mL,加入葡萄糖對照品溶液0.5 mL,按含量測定項下方法操作,平行操作6份,以試劑空白作對照,測定吸光度。結果平均回收率為94.32%,RSD=0.95%,表明方法準確度良好。
2.2.1 供試品溶液制備
分別取每個產地的3種不同規格茯苓等量混合粉碎,過60目篩,稱取10 g茯苓粉,按正交表設計的條件進行提取,趁熱用濾布過濾,濾渣用少量熱水洗滌,合并濾液,用大容量的離心機離心(3 000 r/min,10 min),取上清液,濃縮至 10 mL,加入 95% 乙醇50 mL,醇沉濃度為80%,放置過夜;離心(4 000 r/min,15 min),去掉上清液,沉淀用80%乙醇洗滌兩次,每次約15 mL,離心,傾去上清液;沉淀加入2 mol/L硫酸溶液5 mL,攪拌使其溶解,轉移至200 mL燒杯中,并加入約100 mL水,加熱至沸騰,使沉淀徹底溶解,冷卻后加水定容至500 mL,用小瓶留樣,備用,得供試品溶液。
2.2.2 含量測定
分別取1 mL供試品溶液,按線性關系考察項下方法操作,測定吸光度,計算含量。
2.2.3 正交試驗與結果
本試驗選取4個主要因素,因素A為第1次煎煮時間,因素B為第1次加水量,因素C為第2次煎煮時間,因素D為第2次加水量。每個因素擬2個水平,選用 L8(27)表進行正交試驗。因素水平見表1,正試驗結果見表2,方差分析見表3。由表2和表3可知,最優的提取條件為A2B2C1D2,即第1次加水20倍,第1次煎煮2h,第2次加水15倍,第2次煎煮1h。

表1 因素水平表

表2 正交試驗結果
2.3.1 不同產地茯苓水溶性多糖
分別取每個產地3種不同規格的茯苓,等量混合粉碎,過60目篩,稱取20 g粉末(平行操作3份),按最優條件進行提取,即第1次加入20倍水(400 mL)煎煮2 h,過濾后,濾渣再加入15倍水,煎煮1 h。按2.2.1項下供試品溶液制備方法制得溶液。

表3 方差分析
2.3.2 不同規格茯苓水溶性多糖
取湖南產地的茯苓藥材塊、丁和片,其中塊平均為5.0 cm×3.2 cm×0.8 cm,丁平均為0.8 cm×0.8 cm×0.6 cm,片平均為3.5 cm×1.1 cm×0.1 cm。分別取上述藥材20 g(平行操作3份),按2.3.1項下方法提取、溶解,定容至500 mL。
分別取各產地和規格的供試品溶液1 mL(茯苓片取0.5 mL),按2.1.3項下方法進行操作,測定吸光度。結果見表4和表5。可見,湖北產地的茯苓水溶性多糖提取率最高,云南產地的茯苓水溶性多糖提取率最低;茯苓片的茯苓水溶性多糖提取率最高,塊的提取率最低。

表4 不同產地茯苓多糖含量測定結果

表5 不同規格茯苓多糖含量測定結果
本試驗結果顯示,各產地中茯苓水溶性多糖的提取率最高為湖北(0.431%),其他依次為浙江、安徽、湖南、云南;在不同規格的茯苓中,茯苓片的多糖提取率明顯高于茯苓塊和丁,這可能是由于茯苓片得表面積較大,有利于水溶性多糖的溶出。這些結果為茯苓藥材的質量評價和開發利用奠定了一定基礎。
硫酸-苯酚比色法是測定多糖含量較經典有效的方法之一[5]。本試驗結果表明,該法用于茯苓多糖的測定時,供試品溶液3 h內顯色穩定,結果可靠。
[1]付 玲,于 淼.茯苓研究的新進展[J].新疆中醫藥,2005,23(3):79-82.
[2]金 勇.不同茯苓菌絲體的多糖結構和生物活性 [D].武漢:武漢大學,2004.
[3]胡順珍,賈 樂.食藥用真菌多糖構效關系研究進展[J].生物技術通報,2007(4):42-44,50.
[4]豐朝霞,張 鴻.分光光度法測定茯苓中多糖總糖含量[J].時珍國醫國藥,2000,11(2):109-110.
[5]才玉婷,武蕾蕾,王晶華,等.茯苓多糖提取方法研究進展[J].牡丹江醫學院學報,2009,30(6):58-60.
[6]張怡莎,陳華國,周 欣.不同產地茯苓及茯苓皮中多糖成分的研究[J].貴州師范大學學報,2010,28(3):101-103.
[7]石延榜,趙 娟,賀海花.茯苓飲片規格的研究[J].中國實用醫藥,2008,3(12):200-201.
[8]衛 華,趙聲蘭,趙榮華,等.云南不同產地茯苓中多糖的含量測定[J].云南中醫學院學報,2009,32(4):25-27.
[9]周燕霞,唐明林,殷輝安.茯苓中多糖的提取及含量測定[J].天然產物研究與開發,2003,15(4):330-333.