楊 鑫,胡家俊,方尚玲
湖北工業大學工程技術學院,湖北武漢 430068
酵母菌的菌落與細菌有相像的特征,但酵母菌的菌落小而薄,酵母菌的菌落質地均勻,表面平整,粘稠,酵母菌的各個部位的顏色都很平均。酵母菌發酵所需的條件就是其生長發育和繁殖所需的條件,因為酒精發酵只有在酵母菌出芽繁殖的條件下才能進行,而當發酵停止得時候,酵母菌就會停止生長并死亡。
釀酒酵母:實驗室冷凍保藏菌株。
液體YPD培養基;固體YPD培養基;TTC上層培養基;TIC下層培養基;發酵培養基;高滲再生完全培養基;滲透壓穩定劑;蝸牛酶酶液;脫壁預處理劑
2.1.1 酵母菌原生質體制備[1]
在YPD培養基斜面上將菌株活化并分別接種于三角瓶中,30℃振蕩培養至對數生長前期。將上述培養液3500r/min離心10min。為了盡可能的避免含有雜質,將使用無菌水沖洗離心。將親本細胞懸浮脫壁預處理溶液中,振蕩,離心收集菌體。將菌體懸浮于3mL的蝸牛酶液中,30℃振蕩培養。對其原生質形態進行跟蹤觀察,當形成率達90%以上時,停止反應,收集原生質體細胞,對其進行離心和沖洗以后將細胞懸浮于滲透壓穩定劑中。
2.1.2 酵母菌原生質體形成與再生條件正交試驗
從表1可以知道酵母菌原生質體形成與再生的最佳條件是通過酶解時間,蝸牛酶濃度,選取脫壁預處理時間這三個因素的三水平正交試驗得來的。

表1 正交試驗因素水平表
2.1.3 酵母菌原生質體形成率與再生率[2]的計算
1)總菌落數;
2)未形成原生質體的菌落數;
3)酶處理后未形成原生質體的菌落數和原生質體再生的菌落數之和:
原生質體形成率(%)=(A-B)/A×100%原生質體再生率(%)=(C-B)/(A-B)×100%
2.2.1 酵母菌原生質體紫外誘變株[3]的篩選
取原生質體菌懸液于無菌平皿中,對原生質體細胞進行紫外誘變,將照射后的菌液直接涂布于高滲再生平板和固體YPD平板,置于30℃避光恢復培養。然后將菌落分別接種于斜面平板。
1)初篩(TTC法)
在一定培養基上培養的酵母菌落上與TTC顯色劑會呈現不同的色差反應,當顏色為白色時,可能為野生菌落,當顏色為深紅時,可能是產量高的菌落,當為粉紅時可能產量要弱些。在TTC下層培養基中接入誘變后的菌株,培養24h,長出菌落,然后倒入TTC上層培養基,30℃下保溫(陰暗處)2h~3h。比較各菌株之間的產酒精能力。
2)復篩
將含有發酵培養基的三角瓶中接入初篩時使用TTC法篩出的的優良菌株并按10%的比例接入酵母菌株,于30℃下靜止發酵。每隔12h測一次二氧化碳失重,72h后可以認為發酵結束,發酵結束后測定發酵醪液酒精濃度、殘糖。
2.2.2 各參數的測定方法
1)殘還原糖量[4]:DNS法;2)發酵醪液酒精濃度[5]:蒸餾法;3)二氧化碳失重的測定:直接稱重法。

表2 酵母菌原生質體形成與再生正交試驗結果
酵母菌原生質體形成與再生正交試驗結果:
由表2可知,在脫壁預處理20min,然后1%的蝸牛酶酶解0.5h的條件下,得出原生質體形成率為和再生率分別為89.7%和19.3%。
為保證得到性狀優良的突變菌株,本試驗采用了紫外誘變方法對酵母菌株進行原生質體誘變。最終從再生平板中共得到20株誘變株。經過初篩(TTC法)得到5株呈現深紅色的酵母菌落。再將這5株菌株經過復篩得到各個菌株的發酵特性。

表3 誘變株的篩選
由表3可知,相對于出發菌株W酒精產量有所提高的誘變株有3株,占所有突變株的比例為15%。其中突變株W9產酒精量最高,為6.0%,相對于出發菌株W產酒精量提高了22.95%。殘還原糖含量為6.08mg/mL,相對于出發菌株W的6.35mg/mL,相差不大。負突變株W10產酒精量最低,僅為4.12%。
1)通過對原生質體形成與再生正交試驗而得到最佳條件如下:在先脫壁預處理20min,然后1%的蝸牛酶酶解30min的條件下,得出原生質體形成率為和再生率分別為89.7%和19.3%;
2)通過初篩和復篩,獲得5株在發酵性能上優越的菌株,初篩中的定性篩選是一個高通量的分析,明確刪除不符合要求的發酵能力弱的菌株。復篩是一個定量分析,可以將高產酒精的菌株給篩出。本次試驗在篩選的初篩中加入了TTC顯色劑,因此在初篩的時候刪去發酵能力弱的菌株,減少了復篩的使用率,說明TTC對于篩選高產酒精酵母菌也很有用;
3)采用原生質體紫外誘變方法,選育得到一株遺傳性狀穩定的突變株W9,發酵72h后,其成熟醪酒精體積分數為6.0%,殘還原糖含量為6.08mg/mL,對比出發菌株W,W9產酒精量提高22.95%。
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