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靈芝多糖對2型糖尿病大鼠心肌組織氧化應激的影響

2012-09-12 06:01:18
藥學與臨床研究 2012年5期
關鍵詞:氧化應激血糖糖尿病

馮 艷

江蘇省南通市第三人民醫院藥劑科,南通 226006

靈芝(Ganoderma lucidum)在我國自古就有“仙草”的美譽,已有悠久的藥用和食用歷史,《神農本草經》、《本草綱目》中都有靈芝的藥效記載。靈芝是滋補強壯、扶正固本的珍貴藥材。研究表明其主要有效成分是靈芝多糖(Ganoderma Polysaccharides,GLPs),具有免疫調節、抗腫瘤、降血糖、降血脂、抗氧化和延緩衰老等作用[1]。

糖尿病心肌?。╠iabetic cardiomyopathy,DCM)是糖尿?。╠iabetes mellitus,DM)患者嚴重的并發癥之一,其臨床發生率約為75%。有研究表明,糖尿病心肌纖維化與氧化應激之間關系密切。Brownlee[2]提出的糖尿病并發癥統一學說更是引起廣泛關注,該學說認為:高血糖引起線粒體中超氧陰離子生成過多,引起多元醇通路的激活、糖基化終末產物的形成、蛋白激酶C(PKC)途徑及氨基己糖途徑的激活,引起細胞功能紊亂,最終導致糖尿病并發癥的發生。因此,氧化應激可與糖基化終末產物(AGEs)相互作用加重纖維化,若能尋求有效的物質來降低機體氧化應激水平,對于糖尿病的心肌組織將具有明顯的保護作用。

DCM發病機制尚未明確,近年已有研究提示氧化應激在DCM發生和發展的各個環節中起了重要作用[3-4]。本實驗旨在研究GLPs對2型糖尿病(T2DM)大鼠氧化應激的影響,通過檢測心臟組織中 NO、SOD、MDA、CAT、GSH-Px的含量變化,以分析其作用是否與抗氧化應激有關,為今后更深入研究GLPs藥理作用提供依據。

1 材 料

1.1 藥物與試劑

靈芝多糖(江蘇安惠生物科技有限公司,批號:110601);小檗堿(南京白敬宇制藥有限責任公司,批號:110501);鏈脲佐菌素(streptozotocin,STZ,sigma公司); 一氧化氮(NO)試劑盒(批號:20110407)、過氧化氫酶(Catalase,CAT)測試盒(批號:20110411)、谷胱甘肽過氧化物酶(Glutathione peroxidase,GSH-PX)測試盒(批號:20110411)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)試劑盒(批號:20110312)、丙二醛(malondialdehyde,MDA)試劑盒(批號:20110313)均購自南京建成生物工程研究所。

1.2 儀器

Touch-one血糖儀(美國強生醫療器材有限公司);BH-NIC-B型倒置顯微鏡(日本Olympus公司)。

1.3 動物

SD清潔級大鼠80只,雌雄各半,體重150~180 g,由南通大學實驗動物中心提供,動物許可證:FYXK(蘇)2007-0021。

2 方 法

2.1 動物模型的建立與分組

將大鼠隨機分為正常對照組(N組,10只)和造模組(70只)。造模組大鼠,雌雄各半,給予高能量飲食(飼料配方:脂肪20%、奶粉5%、蛋黃粉5%、基礎飼料70%),4周后禁食12h,由腹腔注射STZ 30mg·kg-1(臨用前用0.1 mol·L-1的檸檬酸緩沖液配成濃度為1%的STZ溶液)。注射STZ 1周后,測空腹血糖,血糖值≥16.7 mmol·L-1即造模成功,繼續高脂飲食。取成模大鼠50只,隨機分為5組,每組10只:模型組(DM組)、靈芝多糖低劑量組(GLPs-L組,200mg·kg-1)、靈芝多糖中劑量組(GLPs-M 組,400mg·kg-1)、靈芝多糖高劑量組(GLPs-H 組,800 mg·kg-1)、小檗堿組(Ber組,30 mg·kg-1)。每天灌胃給藥 1次,持續12 w。實驗期間,各組大鼠均正常喂養,自由飲水。

2.2 各項指標測定

第12 w末,測量大鼠體重,禁食12 h后,經尾靜脈取血測空腹血糖,取心肌組織測定NO、SOD、MDA、CAT 及 GSH-Px。心臟組織中 NO、SOD、MDA、CAT、GSH-Px的測定,按試劑盒說明書操作。

2.3 數據處理

3 結 果

3.1 動物一般情況

實驗期間,N組大鼠活動自如,外觀狀態良好,進水、進食量穩定;模型組大鼠毛色無光澤,活動力差,出現多飲、多食現象;GLPs-M組、GLPs-H組和Ber組的大鼠一般情況與模型組相比有明顯改善。

3.2 靈芝多糖對T2DM大鼠血糖的影響

12周后,與DM組相比,GLPs-L組經治療后血糖無明顯變化(P>0.05),GLPs-M 組和 GLPs-H 組血糖濃度較DM組相比均明顯下降(P<0.01),而GLPs-H組血糖顯著低于GLPs-M組和Ber組(P<0.05)。見表1。

表1 灌胃靈芝多糖對T2DM大鼠血糖的影響(n=10)

3.3 靈芝多糖對 T2DM大鼠心肌 NO、SOD、CAT、GSH-Px活性和MDA含量的影響

與N組相比,DM組心肌NO水平明顯降低(P<0.01);與DM組相比,給藥后GLPs-L組無明顯變化(P>0.05),GLPs-M 組、GLPs-H 組和 Ber組明顯上升(P<0.01);與 Ber組相比,GLPs-M 組沒有統計學差異(P>0.05),而GLPs-H組的效果要明顯優于GLPs-M 組和 Ber組(P<0.05)。

DM組心肌MDA含量比N組明顯增高(P<0.01);與DM組相比,給藥后GLPs-L組無明顯變化(P>0.05),而 GLPs-M 組、GLPs-H 組和 Ber組與DM組相比,MDA含量下降顯著(P<0.01)。GLPs-H組與GLPs-M組和Ber組相比,更能降低MDA含量(P<0.01)。

DM組心肌組織中SOD、GSH-PX、CAT活性與N組比較均明顯降低(P<0.01);與DM組相比,GLPs-L 組無明顯變化(P>0.05),GLPs-M 組、GLPs-H組和Ber組明顯上升(P<0.05或 P<0.01); 其中GLPs-M組和Ber組相比,均無統計學差異(P>0.05),而 GLPs-H 組 SOD、GSH-PX、CAT 水平高于GLPs-M 組和 Ber組(P<0.01)。見表 2。

表2 靈芝多糖對T2DM大鼠心肌NO含量、抗氧化酶活性及脂質過氧化物的影響(±s,n=10)

表2 靈芝多糖對T2DM大鼠心肌NO含量、抗氧化酶活性及脂質過氧化物的影響(±s,n=10)

注:與 N 組相比,**P<0.01;與 DM 組相比,#P<0.05、##P<0.01;與 GLPs-M 組和 Ber組相比,△P<0.05、△△P<0.01

3.4 靈芝多糖對T2DM大鼠心肌細胞超微結構的影響

如圖1所示,N組心肌細胞內肌原纖維清晰,排列整齊,橫紋清楚,線粒體串珠樣整齊排列于肌原纖維之間,形態大小正常,可見清晰的閏盤;DM組和GLPs-L組心肌細胞內肌原纖維模糊,排列紊亂,斷裂嚴重,橫紋不清,線粒體大量增生,分布紊亂,腫脹變形,可見閏盤;GLPs-M組和Ber組較DM組明顯好轉,心肌膠原纖維排列相對整齊,可見閏盤,線粒體增生以及水腫減輕,但有一定程度的扭曲、斷裂;GLPs-H組大部分肌原纖維排列緊密,線粒體增生明顯減少,水腫明顯好轉,排列較整齊,可見閏盤,扭曲斷裂程度較GLPs-M組和Ber組減輕。

圖1 靈芝多糖對T2DM大鼠心肌細胞超微結構的影響(12000×)

4 討 論

糖尿病心肌病變是由糖尿病所致的一種心臟疾病,與血管及瓣膜病理改變無關,隨著病情的發展逐漸出現心肌收縮力減弱,心肌舒張受限,每搏心輸出量顯著減少,并出現代償性的左心室肥厚,最終導致充血性心力衰竭。糖尿病時,機體的高糖環境是糖尿病心肌病發生和發展的始動因素[5]。因此如能有效地降低機體內血糖水平,對DCM的預防和治療具有重大意義。本實驗中發現高劑量GLPs能夠有效降低T2DM大鼠血糖水平。已有研究發現,GLPs可能是通過修復T2DM大鼠的胰島素β細胞,促進胰島素的釋放,從而降低血糖[6]。

Kakkar等[7]學者研究發現,T2DM大鼠的心臟脂質過氧化程度明顯增加;Cail等[8]也在2型DM患者的血液和心肌組織中發現有氧化應激標志物的存在。在高糖環境下,機體一方面清除氧自由基的酶(SOD、CAT、GSH-Px)活性降低;另一方面體內的氧化應激作用增強,造成了體內大量活性氧自由基的積聚,導致活性氧連鎖反應,從而促進糖尿病心腦血管以及其他一系列并發癥的發生和發展[9]。

小檗堿(Berbrine,Ber),又稱黃連素,是黃連的主要活性成分。它具有良好的降血糖作用,并且對防治糖尿病心肌并發癥也具有一定的療效[10]。目前已被用于臨床治療或者輔助治療DM。本實驗中,GLPs-M組的療效與Ber組相當,GLPs-H組各個指標的改善都優于Ber組。

本研究顯示,GLPs的中、高劑量可以有效地提高其心肌組織中SOD、CAT、GSH-Px的活性,提高心肌組織中的NO含量,并降低MDA含量,高劑量組的療效要優于小檗堿組,表明GLPs對于防治DCM的發生發展具有一定的功效,而且GLPs防治DCM機制,除了本身降血糖的作用外,抗氧化應激可能也發揮著重要作用。DCM的發生和發展是受多種因素影響的,比如蛋白激酶C的活化、腎素血管緊張素系統的激活、心肌血管內皮功能的紊亂等,靈芝多糖是否能通過這些途徑來預防DCM的發生和發展,還需要更深入、更廣泛的研究。

[1]Lin ZB.The pharmacological effects of Ganoderma lucidum[M]//Lin ZB.Contemporary Studies of Ganoderma lucidum∶2nd Ed.Beijing∶Beijing Medical University Press,2001∶219-83.

[2]Boyer JK,Thanigaraj S,Schechtman KB,et al.Prevalence ofventriculardiastolic dysfunction in asymp tomatic,normotensive patients with diabetes mellitus[J].Am J Cardiol,2004,93(7)∶870-5.

[3]Singal PK,Bello Klein A,Farahmand F,et al.Oxidative stress and functional deficit in diabetic cardiomyopathy[J].Adv Exp Med Biol,2001,498(1)∶213-20.

[4]Hamblin M,Friedman DB,Hill S,et al.Alterations in the diabetic myocardialproteome coupled with increased myocardial oxidative stress underlies diabetic cardiomyopathy[J].Mol Cell Cardiol,2007,42(4)∶884-95.

[5]周慶峰,王洪新,王桂君,等.高糖對去甲腎上腺素誘導的心肌細胞肥大的促進作用 [J].中國藥理學通報,2003,19(9):1054-7.

[6]張慧娜,林志彬.靈芝多糖對大鼠胰島素細胞分泌胰島素功能的影響 [J].中國臨床藥理學與治療學,2003,8(3):265-8.

[7]Kakkar R,Kalra J,Mantha SV,et al.Lipid peroxidation and activity of antioxidant enzymes in diabetic rats[J].Mol Cell Biochem,1995,151(2)∶113-9.

[8]Cai L,Kang YJ.Oxidative stress and diabetic cardiomyopathy∶a briefreview [J].Cardiovasc Toxicol,2001,1(3)∶181-93.

[9]Johansen JS,Harris AK,Rychly DJ,et al.Oxidative stress and the use of antioxidants in diabetes:Linking basic science to clinical practice[J].Cardiovasc Diabetol,2005,4(1)∶5.

[10]趙洪濤.黃連素對實驗性2型糖尿病大鼠心肌SOD活性、MDA含量水平的影響 [J].牡丹江醫學院學報,2007,28(3):9-11.

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