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酸菜乳酸菌分離鑒定及共軛亞油酸含量分析

2012-09-05 14:21:36劉海霞鄭婷趙國芬包秋華張和平
食品研究與開發(fā) 2012年12期

劉海霞,鄭婷,趙國芬,*,包秋華,張和平

(1.內蒙古農(nóng)業(yè)大學生命科學學院,內蒙古呼和浩特010018;

2.內蒙古農(nóng)業(yè)大學食品科學學院,內蒙古呼和浩特 010018)

近年來,共軛亞油酸由于其重要的生理功能受到人們的重視[1],乳酸菌微生物合成共軛亞油酸是一種經(jīng)濟高效的途徑[2],而酸菜是世界性大眾化蔬菜腌制品,在我國歷史悠久[3],其自然發(fā)酵的主要菌群是乳酸菌[4]。本實驗從自然發(fā)酵的酸菜汁分離鑒定乳酸菌并用紫外法測定共軛亞油酸含量,并得到一株高產(chǎn)共軛亞油酸的菌株,為酸菜制品研究和共軛亞油酸工業(yè)化生產(chǎn)提供理論和實驗參考。

1 材料與方法

1.1 材料

自然發(fā)酵的酸菜汁;牛肉膏、蛋白胨:廣東環(huán)凱微生物科技有限公司;磷酸氫二鉀:北京益利粗細化學品有限公司;無水乙酸鈉:天津市永大化學試劑開發(fā)中心;檸檬酸銨:天津市凱通化學試劑有限公司;硫酸鎂、硫酸錳:天津市科盟化工工貿有限公司;吐溫80:廣東環(huán)凱微生物科技有限公司;溴甲基酚紫培養(yǎng)基:上海博微生物科技有限公司;瓊脂、亞油酸:美國sigma公司。

1.2 實驗主要設備

PYX-DHS電熱恒溫培養(yǎng)箱:上海一恒科技有限公司;SW-CJ-1FD超凈工作臺:蘇州安泰空氣技術公司;LS-B50L高壓蒸汽殺菌鍋:上海醫(yī)用核子廠;UV-1800PC紫外分光光度:計北京普析通用儀器有限責任公司;GS00001PCR 儀:Gene Technologies,Geldoc 2000凝膠成像系統(tǒng):Bio-Rad Laboratories,核酸電泳儀:Power pac Bio-Rad Laboratories。

1.3 方法

1.3.1 乳酸菌的分離純化

酸菜汁用無菌水梯度稀釋,稀釋度分別為10-1、10-2、10-3、10-4、10-5,各取 200 μL 倒入含溴甲基酚紫的平板培養(yǎng)皿中,用涂布棒將其涂勻,涂干;涂菌后放入37℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)48 h。從培養(yǎng)基長勢較好,菌落易分辨的培養(yǎng)基平板上挑起單菌落進行革蘭氏染色、顯微鏡鏡觀察形態(tài)[5]。將革蘭氏陽性菌涂在MRS固體培養(yǎng)基中(涂Z型),隨后放入37℃培養(yǎng)箱,培養(yǎng)48 h。挑選大的球菌反復在MRS固體培養(yǎng)基上幾次純化篩選。進行3次后,菌落基本純化。將純化的菌接到MRS液體培養(yǎng)基中培養(yǎng),進行擴大培養(yǎng)[6]。培養(yǎng)48 h進行DNA提取和16S rDNA鑒定。并取適量菌種加甘油于-70℃?zhèn)溆谩?/p>

1.3.2 乳酸菌的鑒定

1.3.2.1 乳酸菌形態(tài)的觀察

乳酸菌屬在MRS培養(yǎng)基上的菌落大致呈現(xiàn)乳白色,濕潤,桿菌邊緣不整齊,球菌邊緣整齊,直徑在1 mm~3 mm左右。乳酸菌為一類革蘭氏陽性球菌或桿菌[7]。

1.3.2.2 16 S rDNA菌種鑒定[8]

1)引物設計

根據(jù)細菌16 S rDNA一端長為1 225 bp保守序列,設計一對細菌的通用引物,用于PCR擴增,引物由上海生工生物工程技術服務有限公司合成。引物序列如下:

引物 1:5′-CCG GAT CCAGAG TTT GAT CAT GGC TCAGCA-3′

引 物 2:5′-CGG GAT CCTACG GCTACC TTG TTACGACTT-3′

2)乳酸菌DNA的提取

參照細菌提取方法提取乳酸菌DNA[9]。

3)PCR反應體系

按表1將下列成分加入PCR管中。

4)PCR擴增程序

按表2進行16 SrDNA PCR擴增。

5)PCR產(chǎn)物的克隆

將PCR產(chǎn)物經(jīng)10 g/L瓊脂糖凝膠電泳后,用膠回收試劑盒回收特異性目的片段。將回收的PCR產(chǎn)物與pMD19-T載體進行連接,反應采用10 μL反應體系,即:加入 pMD19-T 載體 0.5 μL,PCR 產(chǎn)物 5.0 μL,Ligation solution 4.5 μL,16℃連接過夜。用連接的產(chǎn)物轉化DH5α感受態(tài)細胞,涂布含有AMP的培養(yǎng)基平板,37℃培養(yǎng)12 h~16 h后,挑取白色菌落,進行PCR鑒定。

表116 SrDNA PCR MixTable 1 16S rDNA PCR Mix

表2 16 S rDNA PCR程序Table 2 Procedure of 16 S rDNA PCR

6)16 SrDNA的序列測定及與標準序列的比較

將經(jīng)過鑒定的含重組質粒的菌種送華大基因公司進行序列測定。序列測定結果通過Internet網(wǎng)(http://www.ncbi.nlm.nih gov/blast.cgi), 將 所 測 序 列 與Genbank數(shù)據(jù)庫中已報到的序列進行相似性比較。

1.4 產(chǎn)生共軛亞油酸能力的測定

共軛亞油酸在233 nm處有最大吸收峰。用色譜純的正已烷為溶劑,將CLA標樣稀釋成不同濃度的溶液,以正已烷為參照,在紫外233 nm處測定CLA(共軛亞油酸)標樣溶液的吸光值,以CLA濃度為橫坐標,吸光值為縱坐標,繪制標準曲線。線性回歸方程為y=0.094 6x-0.004 8[10]。

取0.2 mL活化好的菌液,接菌于裝有10 mL篩選培養(yǎng)基的試管中,37℃靜置培養(yǎng)36 h。發(fā)酵結束后,置于50 mL三角瓶中,加入25 mL正己烷,210 r/min萃取1 h,10 000 r/min離心20 min,以未接種的篩選培養(yǎng)基為參照,取正己烷層,233 nm處測定吸光值,根據(jù)標準曲線計算出共軛亞油酸的生成量[11]。

2 結果與分析

2.1 酸菜汁中乳酸菌的篩選結果

2.1.1 溴甲基酚紫培養(yǎng)基培養(yǎng)

通過培溴甲基酚紫培養(yǎng)基初步篩選發(fā)現(xiàn),10-5稀釋度試管中的菌長勢最好,生長情況如圖1。說明有產(chǎn)酸的細菌產(chǎn)生。

2.1.2 革蘭氏染色、電鏡觀察

將上述產(chǎn)酸的細菌進行電鏡觀察,為革蘭氏陽性桿菌,圖2和圖3的菌分別命名為L菌和S菌,均為為短棒狀。

2.1.3 MRS固體培養(yǎng)基培養(yǎng)

純化后的L菌落和純化后的S菌落,見圖4,圖5。

2.2 16 S rDNA鑒定結果2.2.1 DNA的電泳結果

對篩選出的L菌和S菌提取DNA電泳檢測結果如圖6,圖6表明L、S菌的DNA提取成功。

2.2.2 PCR的電泳結果

以篩選出L、S菌基因組DNA為模板,以特異性引物擴增16 S rDNA片段,結果如圖7。從圖7可以看出各菌均擴增出約1 300 bp片段,大小與預期的16Sr-DNA片段一致。

2.2.3 菌落PCR鑒定

菌落PCR電泳圖,見圖8。

菌落PCR結果如圖8所示,兩個菌株均得到了1.3 kb左右大小的片段,均為陽性克隆,與預期相符,表明兩株菌株的16 S rDNA均與pMD19-T載體連接成功。

2.2.4 菌株16SrDNA序列測定結果與比對

將擴增出L、S菌的16 S rDNA片段,送華大基因測序,序列結果如下:

表3 各菌測序比對結果Table 3 The sequencing alignment results of the strains

從表3可以看出L、S菌與棒狀乳桿菌的同源性均在99%,初步判斷L、S菌均為棒狀乳桿菌。

2.3 亞油酸異構酶酶活測定結果

發(fā)酵檢測L和S菌株的CLA濃度分別為0.004 4 mg/mL和0.010 7 mg/mL,CLA的轉化率分別是1.03%和2.51%。

3 結論

從自然發(fā)酵酸菜汁中用含溴甲基酚紫培養(yǎng)基只分離出兩株乳酸菌,說明這兩株菌為釀制酸菜過程中的優(yōu)勢菌株。該菌株經(jīng)過革蘭氏染色、電鏡觀察和16 S rDNA菌種鑒定為棒狀乳桿菌(Lactobacillus coryniformis subsp.torquens strain30),經(jīng)測定L和S菌株產(chǎn)CLA分別為0.004 4 mg/mL和0.010 7 mg/mL,CLA轉化率分別為1.03%和2.51%;S菌共軛亞油酸的能力較高,在以后的研究中對所選取的反應條件和時間進行改進和優(yōu)化,以進一步提高底物的轉化率和產(chǎn)物得率,為食品、醫(yī)藥、工業(yè)上的進一步應用提供參考。

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