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持續(xù)性心房顫動患者2型小電導(dǎo)鈣激活鉀通道基因和蛋白表達的變化

2012-03-17 02:01:14徐先增曾知恒伍偉鋒劉唐威
中國實用神經(jīng)疾病雜志 2012年11期

徐先增 黃 凱 曾知恒 伍偉鋒 劉唐威

廣西醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院心內(nèi)科 南寧 530021

心房顫動(房顫)是臨床上最常見的一種心律失常,發(fā)病后可致病死率明顯增加[1]。房顫發(fā)生后可使離子通道重構(gòu),動作電位時程縮短,頻率適應(yīng)性下降,易于房顫維持,即“電重構(gòu)”[2-3]。2型小電導(dǎo)鈣激活鉀通道(type 2small-conductance calcium-activated potassium channel,SK2)是鈣激活鉀通道的一種亞型,人心肌細(xì)胞上有表達,參與心肌細(xì)胞的復(fù)極過程,心房表達多于心室[4],已有研究證實SK2表達量的變化與房顫有關(guān)[5-6]。但目前對于SK2和房顫關(guān)系的研究多限于動物實驗,本研究以持續(xù)性房顫患者為研究對象,目的在于探究人患持續(xù)性房顫后SK2的變化在電重構(gòu)中的作用。

1 資料與方法

1.1 一般資料 收集我院心胸外科住院的風(fēng)濕性心臟病行二尖瓣置換成形術(shù)的患者,持續(xù)性房顫23例(房顫組),其中3例既往合并腦栓塞,竇性心律18例(竇律組),取體外循環(huán)插管前的新鮮右心耳組織,分兩份分別用于逆轉(zhuǎn)錄酶聯(lián)聚合反應(yīng)(reverse transcription polymerase chain reaction,PTPCR)和免疫組化。取材前患者簽署知情同意書,且獲得醫(yī)院倫理委員會同意。

1.2 RT-PCR (1)總RNA提?。喊?mL Trizol(Invitrogen公司)/100mg心耳組織,分步提取總RNA。(2)逆轉(zhuǎn)錄:取1μg總RNA參照逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(Invitrogen公司)說明書將其中的mRNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA。(3)引物設(shè)計:用primer 5.0軟件設(shè)計,由上海生工公司合成。目的基因KCNN2(SK2的編碼基因,NCBI編號NM_021614.2)上游5'-GGACTGTCCGAGCTTGTG-3',下游5'-TGATGTTCTGGGTCTTTGC-3',擴增片段486bp;內(nèi)參基因GAPDH(NCBI編號NM_002046.3)上游5'-AGAAGGCTGGGGCTCATTTG-3',5'-AGGGGCCATCCACAGTCTTC-3',擴增片段258bp。(4)PCR反應(yīng):反應(yīng)體系(25μL)包括cDNA 1μL,目的基因上下游引物各0.5μL,內(nèi)參基因上下游引物各0.5 μL,2×PCR Mix(北京天根公司)12.5μL,去離子水9.5μL;反應(yīng)程序為94℃5min(94℃30s,62℃30s,72℃30s)×35個循環(huán),72℃10min。(5)電泳及圖像掃描:2%瓊脂糖凝膠100V穩(wěn)壓電泳,ChemiDoc XRS凝膠成像系統(tǒng)(Bio Rad公司)成像,Quantity one軟件分析PCR電泳結(jié)果,測量同泳道目的和內(nèi)參兩條帶的Trace Qty值,用其比值代表目的基因的相對表達量。

1.3 免疫組化 心耳標(biāo)本經(jīng)4%多聚甲醛固定,制作蠟塊,切片,SP法染色。一抗:兔抗人KCNN2(Abcam公司,編號ab83733)1:1000,二抗:羊抗兔(碧云天公司)1:5000。陰性對照實驗不加一抗,其余步驟相同。每張切片隨機取5個高倍視野(×400),應(yīng)用圖像分析軟件(imagepro plus,IPP)測定每個視野陽性信號的累積光密度(integrate optical density,IOD),并取均值。IOD值越大,表明組織中SK2蛋白表達量越多。

1.4 統(tǒng)計學(xué)方法 應(yīng)用SPSS 16.0統(tǒng)計軟件包進行統(tǒng)計處理。所測得數(shù)據(jù)用±s表示。正態(tài)資料用t檢驗,偏態(tài)資料用秩和檢驗,兩樣本構(gòu)成比用χ2檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 基線資料 與竇律組比較,房顫組患者二尖瓣狹窄病變更多,左房內(nèi)徑和心胸比率更大,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P< 0.05),其他相關(guān)指標(biāo)差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見表 1。

表1 2組患者基線資料比較

2.2 RT-PCR 同一心房組織同時擴增目的基因KCNN2和內(nèi)參基因GAPDH的特異性引物,瓊脂糖凝膠電泳顯示相互之間無明顯干擾,為兩條分離的條帶。見圖1。條帶分子量與待擴增的片段長度一致,分別為486bp和258bp。2組內(nèi)參基因GAPDH基因表達差別無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),但房顫組較竇律組KCNN2表達顯著降低(P<0.05),與內(nèi)參基因的比值亦顯著降低(P<0.05),下調(diào)幅度44%,提示房顫組患者心房組織的KCNN2mRNA水平明顯降低。見表2。

圖1 PT-PRC測定右心房KCNN2的基因表達 1~4來自4例竇律患者,5~7來自3例房顫患者

表2 2組患者心房組織KCNN2的基因表達 (±s)

表2 2組患者心房組織KCNN2的基因表達 (±s)

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2.3 免疫組化 與竇律組比較,房顫組心房肌細(xì)胞增大明顯。SK2蛋白陽性表達呈棕黃色,在胞膜和胞漿均有分布,胞核內(nèi)則無明顯分布。胞膜陽性表達呈相對淡染的環(huán)狀;胞漿陽性表達主要在核周。心耳各層心肌細(xì)胞組織表達相對均勻,無明顯灶性或區(qū)域性表達。房顫組與竇律組比較SK2蛋白表達減少,IOD分別為2 525 900±772 807.4和2 206 917±1 170 312,下調(diào)幅度13%,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),但細(xì)胞內(nèi)分布特點變化不明顯。見圖2。

圖2 免疫組化測定右心房SK2的蛋白表達(×400)A竇律患者的陽性表達,B房顫患者的陽性表達,C竇律患者的陰性對照,D房顫患者的陰性對照

3 討論

心房顫動是臨床上常見的心律失常,各種類型心臟病均可導(dǎo)致心房顫動。一旦發(fā)生心房顫動,可使心房有效不應(yīng)期縮短,降低頻率適應(yīng)性,即所謂“電重構(gòu)現(xiàn)象”,使得心房顫動更加易于發(fā)生和維持。離子通道的重構(gòu)是導(dǎo)致電重構(gòu)的基礎(chǔ),探究各種離子通道的重構(gòu)對于研究心房顫動的發(fā)生和維持機制以及尋找可能的治療靶點都有重要意義。目前治療心房顫動的抗心律失常藥物往往導(dǎo)致嚴(yán)重的致惡性室性心律失常,原因是其作用的離子通道靶點房室間分布不具有選擇性,而為了盡量避免可能的致惡性室性心律失常作用,尋找僅作用于心房分布特異性離子通道靶點如I(Kur)的抗心律失常藥物成為研究的熱點[7]。鈣激活鉀通道分布非常廣泛,被細(xì)胞內(nèi)微量鈣離子(<1.0μM)激活,按電導(dǎo)大小可分為大電導(dǎo)(BK)、中電導(dǎo)(MK)和小電導(dǎo)(SK)三種類型,SK2則屬于SK的一種亞型,α亞基是通道的功能亞基,為KCNN2基因所編碼,可被極低濃度(100pM~10nM)的蜂毒明肽特異性阻斷[8]。研究證明心房的SK2表達明顯多于心室[4],短時間快速刺激肺靜脈即可見SK2表達增加,蛋白膜向轉(zhuǎn)移增強,全細(xì)胞水平電流密度加大,且這些變化與動作電位的縮短關(guān)系明顯,因此被認(rèn)為是治療心房顫動的另一個可能的理想靶點[9]。而近期的動物實驗確實也證明,應(yīng)用SK2阻斷劑能夠預(yù)防和終止心房顫動的發(fā)作[10]。但以上研究均為模擬短期心房顫動的動物實驗,人患持續(xù)性心房顫動后SK2的結(jié)構(gòu)和功能的改變并不為人知曉。

本研究則探討人患持續(xù)性心房顫動后SK2基因和蛋白的變化,為能使2組更具可比性,我們選擇的對象均為風(fēng)濕性心臟病二尖瓣病變病例,但房顫組中二尖瓣狹窄比例更大,而竇律組二尖瓣關(guān)閉不全比例更大。對比發(fā)現(xiàn),房顫患者的左房內(nèi)徑以及心胸比例更大,提示心功能不全與房顫存在互為因果的關(guān)系。通過RT-PCR發(fā)現(xiàn),房顫組SK2基因表達下降明顯,而通過免疫組化發(fā)現(xiàn)蛋白表達也有小幅下降,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義。這一結(jié)果與初步的動物實驗提示該通道表達上調(diào)的結(jié)果不相符,原因有以下幾種可能:(1)長期持續(xù)性的房顫通過某些機制,使SK2基因蛋白早期上調(diào),但晚期出現(xiàn)再次下調(diào),這一推斷需要來自陣發(fā)性房顫患者實驗結(jié)果的進一步證實;(2)人患房顫后SK2基因蛋白的表達本就下調(diào),畢竟動物模型的實驗結(jié)果不能完全適用于臨床患者。本研究未從全細(xì)胞或單通道水平測定離子通道功能的變化,但一些學(xué)者認(rèn)為離子通道功能的改變很大程度上取決于通道基因表達的改變[11]。因為人患持續(xù)性房顫后SK2基因和蛋白表達下調(diào),用于防治動物陣發(fā)性房顫有效的SK2特異性阻斷劑用于持續(xù)性房顫患者可能無效或有害。但也應(yīng)看到,細(xì)胞內(nèi)鈣負(fù)荷增加導(dǎo)致的L型鈣電流密度下降是心房顫動發(fā)生后電重構(gòu)中最重要的改變[12-13],而一些鉀電流如I電流密度下降可能僅為次要作用[14],其綜合改變的結(jié)果仍然是有效不應(yīng)期縮短,而此時應(yīng)用I的阻斷劑仍可改善電重構(gòu),預(yù)防或終止房顫的發(fā)生[7]。另外,SK2功能水平主要受細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度影響,房顫發(fā)生后細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度增加,因此即使SK2基因和蛋白表達下調(diào),其功能水平仍然因為Ca2+濃度增加而上調(diào),此時應(yīng)用SK2特異性阻斷劑后,仍然有益于預(yù)防或終止房顫的發(fā)生,當(dāng)然這些推測需要進一步實驗證實。因此即使SK2基因蛋白表達下調(diào),同樣也可能不會影響SK2特異性阻斷劑預(yù)防和治療房顫患者,但最終結(jié)果仍需進一步研究證實。

綜上所述,與初步的動物實驗結(jié)果不同,人患持續(xù)性房顫后SK2基因和蛋白表達下調(diào),用于防治動物陣發(fā)性房顫有效的SK2特異性阻斷劑是否適用于持續(xù)性房顫患者仍然有待于進一步實驗證實。

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