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飼料中不同脂肪源對鯉魚生長性能、脂質代謝和抗氧化能力的影響

2012-03-14 05:33:54毛述宏林仕梅高啟平
動物營養學報 2012年7期

潘 瑜 毛述宏 關 勇 林 鑫 林仕梅,2* 高啟平 羅 莉,2

(1.西南大學動物科技學院,重慶400716;2.西南大學淡水魚類資源與生殖發育教育部重點實驗室,重慶400716;3.通威股份水產研究所,成都 610041)

我國水產養殖業高效、持續發展需要高能低氮的飼料策略,而飼料中的脂肪是魚類主要的能量來源。選擇恰當的脂肪源和脂肪水平,能節約蛋白質,降低飼料成本,減少環境污染[1]。魚油作為水產飼料的優質脂肪源一直備受青睞,但目前因其資源、價格以及含有二口惡英和多氯聯苯類不安全物質等問題,迫使飼料企業去尋找魚油替代品[2]。已有的研究表明,在滿足魚體必需脂肪酸需求的前提下,其他油脂替代魚油不僅不會對魚體生長產生負面影響[3],而且適宜的替代還會有更好的促生長效果[4],但是不同脂肪源會對魚類脂質代謝和抗氧化能力產生不同的影響[5-7]。鯉魚(Cyprinus carpio)是我國主要的經濟魚類,Schwarz等[8]和Steffens等[9]相繼報道了不同單一脂肪源對鯉魚生長和體組成的影響,但均未涉及脂質代謝和抗氧化能力方面的研究。結合本課題組近年來有關脂質代謝調控和機制方面的研究,本試驗以鯉魚為研究對象,通過測定其生長性能、體組成、脂質代謝和抗氧化能力等指標綜合評價魚油、豆油、菜籽油、亞麻籽油和豬油這5種脂肪源的營養效價,為油脂的科學使用提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 試驗飼料

首先以秘魯紅魚粉(粗蛋白質含量64.5%)、豆粕(粗蛋白質含量43.0%,預壓浸提)、菜籽粕(粗蛋白質含量37.0%,預壓浸提)和棉籽粕(粗蛋白質含量43.0%,預壓浸提)作為蛋白質源配制基礎飼料,然后在基礎飼料中分別添加1.5%的魚油、豆油、菜籽油、亞麻籽油和豬油,制成5種等能等氮(粗蛋白質含量35%,總能15MJ/kg)的試驗飼料,其組成及營養水平見表1。各飼料原料均粉碎過40目篩并混合均勻,飼料調質溫度為80℃,制成直徑為1.5mm的硬顆粒飼料,60℃烘干后保存于-15℃冰柜中備用。

表1 試驗飼料組成及營養水平(風干基礎)Table 1 Composition and nutrient levels of experimental diets(air-dry basis) %

1.2 飼養管理

試驗魚選用當年培育的鯉魚苗,取自重慶璧山縣魚種場。試驗魚馴食適應環境10d后,選取體質健壯、規格整齊、平均初重為(5.83±0.01)g的鯉魚750尾,隨機分成5組,每組3個重復,每個重復50尾魚。試驗魚飼養在室內淡水循環玻璃水族箱(有效體積為300L)中,養殖水源為曝氣自來水,養殖全程水溫為(26.8±2.2)℃,pH 為7.2±0.3,溶 解 氧 為 >6.2mg/L,氨 氮 <0.50mg/L,亞硝酸鹽氮<0.06mg/L。日投喂率為體重的4%~6%,每天08:30、12:30和17:30各投喂1次,每天早上清除箱內糞便,并換水1/4。飼養時間為8周。

1.3 樣品制備與分析

飼養試驗結束,禁食24h后稱重,每箱取5尾魚作為全魚樣品;每箱另取5尾魚采用搗毀脊髓法處死,分離出肝胰臟,并立即放入液氮罐中速凍,然后轉入-80℃低溫冰箱保存。肝胰臟用生理鹽水以1∶9的質量體積比冰浴勻漿,勻漿液在3 000×g 4℃條件下離心10min,取上清液作為酶活性分析樣品,-20℃保存備用。

飼料原料及魚體樣品均在105℃烘干至恒重,然后進行營養成分測定。粗蛋白質含量采用凱氏定氮法測定,粗脂肪含量采用索氏抽提法測定,粗灰分含量采用高溫(550℃)灰化法測定。

血清脂蛋白酯酶(LPL)、蘋果酸脫氫酶(MDH)、超氧化物歧化酶(SOD)活性和總抗氧化能力(T-AOC)采用南京建成生物工程研究所生產的試劑盒進行測定。SOD的活性單位定義:每毫克組織蛋白質在1mL反應液中SOD抑制率達50%時所反應的SOD量為1個酶活性單位;TAOC單位定義:在37℃時,每分鐘每毫克組織蛋白質使反應體系的吸光度(OD)值增加0.01時為1個T-AOC單位;MDH的活性單位定義:每毫克組織蛋白質在本反應系統中1min內催化1μmol的底物轉變成產物為1個酶活性單位;LPL的活性單位定義:每毫克組織蛋白質每小時在反應系統中產生1μmol的游離脂肪酸(FFA)時為1個酶活性單位。組織中蛋白質含量采用考馬斯亮藍法測定。

1.4 計算公式

1.5 數據處理與分析

數據均以平均值±標準誤表示,采用SPSS 11.0對所得數據進行單因素方差分析(one-way ANOVA),若差異達到顯著水平,則采用Duncan氏法進行多重比較,顯著性水平為P<0.05。

2 結果與分析

2.1 飼料中不同脂肪源對鯉魚生長性能的影響

由表2可知,SGR、PER均以魚油組最高,豬油組最低,其中SGR魚油組顯著高于其他各組,豬油組顯著低于除豆油組外的其他各組(P<0.05);PER豬油組顯著低于其他各組(P<0.05),魚油組與豆油組、菜籽油組、亞麻籽油組間無顯著差異(P>0.05)。FCR以豬油組最高,魚油組最低,且魚油組顯著高于其他各組(P<0.05),豬油組顯著低于其他各組(P<0.05)。SGR、PER和FCR在豆油組、菜籽油組、亞麻籽油組間無顯著差異(P>0.05)。

表2 不同脂肪源對鯉魚生長性能的影響Table 2 Effects of different lipid sources on growth performance of common carp

2.2 飼料中不同脂肪源對鯉魚體組成的影響

由表3可知,全魚粗蛋白質含量魚油組顯著高于其他各組(P<0.05),而其他各組間無顯著差異(P>0.05);全魚粗脂肪含量以魚油組最低,豬油組最高,其中魚油組顯著高于除亞麻籽油組外的其他各組(P<0.05),豬油組顯著低于魚油組和亞麻籽油組(P<0.05),豆油組、菜籽油組、亞麻籽油組間無顯著差異(P>0.05);全魚干物質和粗灰分含量組間無顯著差異(P>0.05)。

表3 不同脂肪源對鯉魚體組成的影響Table 3 Effects of different lipid sources on body composition of common carp %

2.3 飼料中不同脂肪源對鯉魚肝胰臟脂質代謝和抗氧化指標的影響

由表4可知,LPL活性以魚油組最高,其次是豆油組、菜籽油組、亞麻籽油組,以豬油組最低,除菜籽油組與亞麻籽油組間差異不顯著(P>0.05)外,其他組間差異均顯著(P<0.05)。MDH活性以亞麻籽油組最高,顯著高于其他各組(P<0.05);以豬油組最低,顯著低于其他各組(P<0.05)。SOD活性豬油組顯著低于其他各組(P<0.05),而其他各組間差異不顯著(P>0.05)。TAOC表現為魚油組>豆油組>菜籽油組>亞麻籽油組>豬油組,除菜籽油組與豆油組、亞麻籽油組差異顯著不顯著(P>0.05)外,其余組間差異顯著(P<0.05)。

表4 不同脂肪源對鯉魚肝胰臟脂質代謝和抗氧化指標的影響Table 4 Effects of different lipid sources on indices of lipid metabolism and antioxidant in hepatopancreas of common carp

3 討 論

3.1 不同脂肪源對鯉魚生長性能的影響

本試驗結果顯示,魚油、豆油、菜籽油、亞麻籽油和豬油作為單一脂肪源,對鯉魚的生長性能可產生不同的影響,以魚油促生長效果最好,而豬油不利于魚體的生長。類似的研究結果在草魚[10]、羅非魚[5]和異育 銀鯽[11]上已有 報道。然 而,Steffens等[9]卻發現在高魚粉(26%)飼料中添加魚油、玉米油、葵花籽油、菜籽油作為單一脂肪源對鯉魚的生長沒有影響,與本試驗結果存在差異,這可能是飼料配方差異所致。與Steffens等[9]的試驗相比,本試驗基礎飼料中魚粉的用量僅為9%,可能是高魚粉飼料中含有足夠的高不飽和脂肪酸(HUFA)可以滿足魚體正常生長的需求。

脂肪源的差異實質上就是脂肪酸組成及比例(n-3/n-6)的差異,脂肪酸組成及比例可對魚體生長產生不同的影響[12]。魚油富含具有重要生理功能的HUFA[13],這可能是本試驗中魚油組鯉魚生長效果較好的原因。本試驗中菜籽油組和亞麻籽油組鯉魚也表現出較好的促生長效果,可能是由于菜籽油中豐富的油酸能優先被魚類β氧化供能[14],加之,鯉魚能將亞麻籽油中的亞麻酸轉化為二十二碳六烯酸(DHA)和二十碳五烯酸(EPA)[15]。已有研究發現,黃鱔[16]和羅非魚[5]利用豆油的能力與魚油接近,優于菜籽油和豬油。這與本試驗的研究結果不一致,可能是魚種不同,或者是豆油中含有大量的亞油酸致使飼料中n-3/n-6過低所致。Giovanni等[17]在丁鱥的研究中也有類似的發現,即飼料中n-3/n-6越低,丁鱥生長效果越差。本試驗中豬油組鯉魚生長效果最差,可能與其含有大量飽和脂肪酸有關。已有研究表明,飼料中飽和脂肪酸C16∶0和C18∶0含量高會降低動物對飼料脂肪和干物質的消化率[18-19],從而影響生長。

3.2 不同脂肪源對鯉魚體組成的影響

已有研究表明,飼料組成對魚體組成有重要影響[20]。本試驗發現,魚油組全魚粗脂肪含量最低,粗蛋白質含量最高;而豬油組全魚粗脂肪含量最高,粗蛋白質含量最低。類似的結果在草魚[10]上已有報道。魚油富含n-3HUFA,會抑制脂肪合成,繼而降 低脂肪 沉積量[21],此 外,n-3HUFA 還能促進蛋白質在肌肉中的沉積[22],這可能是魚油組全魚粗脂肪含量最低、粗蛋白質含量最高的原因。豬油影響脂肪和蛋白質沉積量的機理還未見報道,這可能與不同脂肪酸調控脂質代謝酶活性密切相關。

3.3 不同脂肪源對鯉魚肝胰臟脂質代謝的影響

魚類組織中脂質的積累和脂質合成與外源性脂質進入密切相關。動物體內MDH、葡萄糖-6-磷酸脫氫酶(G-6-PD)活性的高低直接關系到煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADPH)的生成[23-24],而體內 NADPH的含量會直接影響脂類物質的合成[25]。Shikata等[26]研究發現,n-3HUFA和硬脂酸(SA)比亞油酸更能抑制鯉魚肝胰臟MDH活性。隨后,周繼術等[6]的研究指出,魚油組鯉魚肝胰臟MDH活性顯著低于豆油組。本試驗中魚油或豬油較豆油和亞麻籽油能夠顯著降低鯉魚肝胰臟MDH活性,說明富含HUFA的魚油和富含SA的豬油抑制了鯉魚肝胰臟脂肪酸的合成。

LPL催化水解脂蛋白,并釋放出游離脂肪酸以供機體貯存或氧化,因而在機體脂質代謝調控上起關鍵作用[27]。目前,有關不同脂肪源對魚類肝胰臟LPL活性影響的研究在異育銀鯽[7]、虹鱒[28]、舌齒鱸[29]等魚類上已有報道,研究結果也因養殖品種不同而有所差異。本研究發現,魚油組肝胰臟LPL活性最大,而豬油組則最小。王煜恒等[7]的研究也證實不同脂肪源對異育銀鯽肝胰臟LPL活性產生不同的影響。這可能是由于隨著脂肪酸不飽和度的增加,脂肪酸促進LPL的基因mRNA表達的作用加強,進而誘導肝胰臟LPL合成增加所致[30]。魚類肝臟是脂質代謝和貯存的重要場所。已有研究證實,LPL活性的升高會增加魚類患脂肪肝的風險[30-31]。但王煜恒等[7]卻發現LPL活性最高的魚油組其肝脂含量最低。肝胰臟LPL活性的升高將導致肝胰臟游離脂肪酸含量的增加,而增加的游離脂肪酸是用于氧化供能還是用于貯存呢?這是值得我們進一步深入研究的問題。

3.4 不同脂肪源對鯉魚肝胰臟抗氧化能力的影響

脂質過氧化會破壞細胞膜的正常結構和功能[32]。一般認為,組織中多不飽和脂肪酸(PUFA)的含量及其不飽和程度直接決定了可能發生的脂質過氧化程度[33]。T-AOC是機體內抗氧化能力的總體體現,是酶促[SOD、過氧化氫酶(CAT)、谷胱甘肽硫轉移酶(GST)等]和非酶促(維生素、氨基酸和金屬蛋白等)2方面因子抗氧化能力的總和。SOD對機體的氧化與抗氧化平衡起著至關重要的作用,它能清除超氧陰離子(O-2),保護細胞免受損傷。本試驗中,豬油組SOD活性和T-AOC顯著低于其他各組,表明豬油作為鯉魚飼料單一脂肪源會損害鯉魚肝胰臟健康。魚油組SOD活性與植物油組(豆油組、菜籽油組、亞麻籽油組)間沒有顯著性差異,但T-AOC顯著高于其他各組,這與吉紅等[31,34]發現 HUFA能提高草魚和鯉魚肝胰臟T-AOC的研究結果類似。然而,Huang等[5]發現羅非魚肝胰臟脂質過氧化物丙二醛(MDA)的含量以HUFA組最高,其次是魚油組、豆油組,以豬油組最低。Peng等[35]也發現豆油替代魚油能降低黑鯛肝胰臟丙二醛含量。目前,有關脂肪源對組織抗氧化能力影響的研究結果存在矛盾,可能是由于魚種不同或飼料脂肪含量不同所致。

4 結 論

①飼料中脂肪源不同會影響鯉魚的生長性能、脂肪代謝和抗氧化能力。

② 作為鯉魚單一的脂肪源,魚油的促生長效果要優于豆油、菜籽油和亞麻籽油;而豬油不適宜作為鯉魚單一的脂肪源,會損害肝胰臟健康,進而阻礙魚體生長。

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