王媛媛,曹春紅,楊旭,肖冬光
(天津科技大學生物工程學院,工業發酵微生物教育部重點實驗室,天津,300457)
核苷酸類物質及其衍生物是遺傳工程、醫藥、食品、農業生產和科研領域十分重要的生化試劑和原料[1],核苷酸幾乎在所有的細胞結構、代謝、能量和調節功能等方面起著重要作用[2]。Uauy表明[3]將核苷酸添加到以牛奶為基礎的代乳品中,對嬰幼兒的胃腸道發育、胃腸道健康的維持以及血漿脂蛋白的組成都有有利的影響,Brunser[4]研究結果表明外源核苷酸能減少嬰兒腹瀉的發生。從全球來看,核苷酸供不應求,是很有發展潛力的項目。
核酸酵母是工業上制取核酸的常用材料[5-6],目前核酸酵母的培養多數采用以糖蜜為碳源的培養基,糖蜜內除了含有大量可發酵糖(主要是蔗糖)外,還含有豐富的礦物質與維生素,是培養酵母較好的碳源。工業生產中核酸酵母菌體培養濃度偏低,大多在10g/L左右,主要原因是核酸酵母只有在對數期收獲才可得到較高核酸含量,延長培養時間提高細胞濃度,往往不能保證在對數生長期收獲菌體,致使菌體細胞內的核酸含量下降。本研究通過對糖蜜原料處理工藝及對核酸酵母的培養條件進行優化,旨在延長酵母生長的對數期,在保證高核酸含量的同時,提高酵母細胞濃度。
1.1.1 菌株
高核酸酵母NY-1(High nuclear Saccharomyces NY-1)天津科技大學微生物菌種中心保藏。
1.1.2 實驗材料
工業糖蜜;尿素,NaCl、ZnSO4、FeSO4、MgSO4、KH2PO4,等均為化學純試劑;瓊脂、酵母浸粉為生化試劑。
1.1.3 實驗儀器
UV757型紫外光柵分光光度計、752N可見分光光度計,上海精科上海分析儀器廠;GHP-9050生化培養箱,上海精密儀器廠;HH-2數顯溫控水浴鍋,蘇州學森儀器設備有限公司;TDZ5-WS高速離心機,上海盧湘儀離心機儀器有限公司。
1.1.4 液體發酵培養基
總糖 40 g/L,MgSO41.2 g/L,尿素 1.2 g/L,(NH4)2SO40.3 g/L,ZnSO40.15 g/L,無水 FeSO40.15 g/L,NaCl0.1 g/L,H3PO41.8 mL,用氨水調節至pH 5.0。
1.2.1 酵母泥RNA含量測定[7]
吸取4 mL發酵液于4 000r/min、10 min離心,棄上清液,稱菌體濕重;用生理鹽水洗滌菌體2次,再加入2 mL生理鹽水振蕩均勻,再加入2 mL 10%的高氯酸溶液,搖勻,于70℃水浴鍋保溫20 min(每5 min振搖1次);再于10 000 r/min、5 min條件下離心。將上清液稀釋50倍后于紫外分光光度計260 nm處測光密度OD值,計算干菌內含RNA的質量分數(%)。
空氣開關屬于一種電器元件,其存在優勢的同時也存在著一定的缺點,也并不是在任何條件下都能將其自身的優勢發揮出來。筆者在多年的實踐工作中發現使用空氣開關保護變壓器時,如果變壓器的輸出端出現短路的現象,空氣開關將不能起到保護的作用。因此為了能夠將此類問題解決,應從空氣開關的自身工作原理與變壓器的工作參數和結構角度出發,分析其不能對變壓器起到保護作用的因素。[1]
1.2.2 發酵液菌體干重的測定
取定量發酵液離心洗滌2次,將濕菌體于105℃烘干箱內烘干至恒重。
1.2.3 殘余還原糖測定方法
取發酵液樣品,離心,將上清液用斐林滴定法測定。
1.2.4 總糖的測定方法[8]
用4 mol/L的鹽酸將待測樣品在68℃水浴下進行水解,待溫度達到68℃開始計時10 min,間斷搖勻,冷卻后,用NaOH溶液中和至中性并定容至100mL,然后用斐林滴定法測定。
1.2.5 糖蜜原料的處理工藝優化
1.2.5.1 糖蜜初始處理條件[9]
1.2.5.2 糖蜜優化處理條件
方案1:用濃H2SO4調節至pH 3.8,在電爐上煮沸1 h。
方案2:用濃H2SO4調節至pH 4.0,在電爐上煮沸1 h。
方案3:用濃H2SO4調節至pH 4.0,在電爐上煮沸1.5 h。
冷卻后將3個樣品進行離心,取上清分別進行還原糖及總糖測定。
2.1 氮源優化
在以糖蜜為碳源的液體發酵培養基中,添加5種不同的氮源,(NH4)2SO4、尿素、酵母粉3種單一氮源及(NH4)2SO4與酵母粉、尿素與酵母粉2種復合氮源分別進行發酵培養,選出最適合酵母生長的氮源。
2.1.1 氮源種類的選擇
氮源總添加量與1.1.4中氮源的添加量相同,其中,酵母粉以含氮量12%,菌體利用率50%計算。

圖1 氮源種類選擇實驗結果
由圖1知,添加了酵母粉的實驗組在菌體干重、發酵液中RNA含量及RNA理論產量上都明顯優于其他實驗組,但是由于酵母粉的價格較高,因此應選擇酵母粉和尿素的復合氮源培養該菌,并在此基礎上優化酵母粉和尿素的添加比例,以在提高酵母產量的同時盡可能減少酵母粉用量,從而降低生產成本。
2.1.2 復合氮源比例的選擇

圖2 復合氮源最適添加量的優化選擇
總氮源添加量相同的前提下,將酵母粉與尿素以不同比例混合添加,接種高核酸酵母菌株進行液態發酵,結果見圖2。由圖2可以看出,隨著酵母粉添加量的增加,菌體的干重和RNA含量都有所提高,但提高幅度都不是很明顯,從節約成本考慮,采用酵母粉添加量為2 g/L,尿素添加量為2.5 g/L。

圖3 培養基初始pH值優化結果
由圖3可以看出初始pH 5.0的實驗組,其RNA理論產量最高,菌體干重也相對較高,因此選取培養基的初始pH值為pH5.0。
圖4所示為3種糖濃度下酵母的生長曲線,從圖4可以看出,該菌在3種投糖濃度下生長時均在6h進入減速生長期,且菌體生物量沒有顯著差別,糖濃度為40、50和60g/L時,菌體濃度分別為8.72、8.34和8.66g/L。投糖濃度越高,酵母對糖的利用率就越低,說明培養基中的糖未得到有效利用。

圖4 三種投糖濃度下菌體的生長曲線
糖濃度為60 g/L時發酵過程中發酵液總糖和還原糖的變化情況見表1。從表1看,發酵至6 h時,發酵液中還原糖的含量降至6.95 g/L,糖濃度較低可能是酵母進入減數生長期的原因之一。另一方面,發酵至6 h時的總糖濃度為25.1 g/L,糖蜜中的蔗糖基本上沒有水解,這說明該菌體的蔗糖酶活性偏低,對蔗糖的利用速率較慢。因此要延長菌體生長的對數期,應先從糖蜜的預處理方法上著手,即提高糖蜜處理完后總糖的水解率。

表1 投糖60 g/L時發酵過程中發酵液總糖和還原糖的變化情況
2.4.1 不同糖蜜處理方法下總糖的水解情況
表2為不同糖蜜處理工藝下總糖的水解情況,由表2知,加熱時間相同,酸度越低,蔗糖水解率越高;酸度相同,加熱時間越長,蔗糖水解率越高。本實驗中總糖水解率最高的糖蜜處理條件為方案3,即用H2SO4調節至pH4.0,煮沸1.5 h,此時總糖的水解率可達到75%。

表2 不同糖蜜處理方法下總糖水解情況
2.4.2 提高糖蜜水解率前后菌體培養結果
圖5為提高糖蜜水解率后菌體的生長曲線,從圖5看,提高糖蜜水解率后,相同投糖濃度(60 g/L),菌體生長的對數期被延長大約3 h,菌體濃度提高約25%。表3為提高糖蜜水解率后發酵過程中總糖與還原糖的情況,從表3看,發酵至6 h時還原糖含量為12.4 g/L,明顯高于提高水解率前的糖濃度;發酵至9 h時,發酵液中還原糖含量下降至6.5 g/L,與未處理糖蜜時發酵6 h時還原糖濃度相當,酵母進入減速生長期,說明提高糖蜜中總糖的水解率后可以延長酵母對數生長期,提高糖的利用率。

圖5 提高糖蜜中蔗糖水解率前、后核酸酵母的生長曲線

表3 提高糖蜜總糖水解率后發酵液總糖和還原糖的變化情況
表4為提高糖蜜總糖水解率前后培養核酸酵母的結果,由表4可知,提高糖蜜總糖水解率后,菌體RNA含量提高了16.5%,但菌體濃度基本不變,酵母對糖的得率仍然較低。

表4 提高糖蜜總糖水解率前后60 g/L投糖時菌體生長情況對比表
表5為溶氧對菌體生長的影響,由表5可以看出,在普通的三角瓶內,減少裝液量可以提高菌體的生物量,用擋板瓶代替普通的三角瓶提高溶氧效果,可明顯提高菌體的生物量,可見提高溶氧有利于菌體生物量的增加。

表5 溶氧對菌體生長的影響
實驗證明,核酸酵母在生長過程中對溶氧的需求較高,其內的蔗糖酶活性較低,因此,在工業生產中要著重完善供氧設備,同時采用較高的糖蜜水解率。另外,可從菌種出發,篩選出蔗糖酶活性高的核酸酵母,這樣在工業生產過程中可大大減少糖蜜原料處理過程中的用酸量,有利于進一步降低生產成本。
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