張艷英,肖冬光,張翠英,王文陽(yáng),汪東升,李月強(qiáng)
(工業(yè)發(fā)酵微生物教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津市工業(yè)微生物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院,天津,300457)
白酒是中國(guó)特有的蒸餾酒,風(fēng)味獨(dú)特,深受人們喜愛(ài)。高級(jí)醇類(lèi)物質(zhì)是形成白酒風(fēng)味的重要物質(zhì)之一,若含量適宜,可使白酒口感柔和豐滿(mǎn)、味道獨(dú)特;但如果含量過(guò)高,會(huì)使白酒產(chǎn)生異雜味,影響酒的風(fēng)味和品質(zhì),并且飲用后易上頭,危害身體健康;反之,高級(jí)醇含量不足,酒味將變得稀薄單調(diào)。因此,必須控制白酒中高級(jí)醇的含量。而我國(guó)目前以玉米等蛋白質(zhì)含量豐富的原料發(fā)酵生產(chǎn)的白酒中高級(jí)醇含量較高,發(fā)酵結(jié)束后總含量通常在300 mg/L(或300 mg/kg,以異丁醇和異戊醇計(jì))以上。
釀酒酵母酒精發(fā)酵過(guò)程中,高級(jí)醇主要有兩條形成途徑,分別為氨基酸分解代謝途徑(Ehrlich途徑)[1]和糖代謝合成途徑[2]。BAT2 是控制酵母細(xì)胞質(zhì)中氨基酸轉(zhuǎn)氨酶的編碼基因,本實(shí)驗(yàn)室前期通過(guò)同源重組構(gòu)建了BAT2缺失單倍體突變株A8-B和C22-B,但其染色體上帶有G418抗性基因KanMX且酵母單倍體突變株不穩(wěn)定,不能應(yīng)用到工業(yè)生產(chǎn)中,因此必須去除A8-B和C22-B基因組上的G418抗性基因KanMX,并且將它們雜交成雙倍體,構(gòu)建優(yōu)良的低產(chǎn)高級(jí)醇基因工程安全菌株。
大腸桿菌P1噬菌體Cre基因的38.5ku產(chǎn)物(該產(chǎn)物是一種重組酶 ,recombinase)能識(shí)別并催化loxP位點(diǎn)間的重組;loxP位點(diǎn)含34bp,包括被8bp間隔的2個(gè)13bp反向重復(fù),每個(gè)反向重復(fù)及其臨近的4bp 構(gòu)成一個(gè) Cre 蛋白的結(jié)合區(qū)[3-4]。Hegemann[5]等人構(gòu)建了loxP-Marker-loxP系列基因敲除體系,通過(guò)PCR反應(yīng)將loxP-Marker-loxP基因片段從模板質(zhì)粒pUG6擴(kuò)增出來(lái),同時(shí)在兩端帶上擬敲除基因約50bp的同源區(qū),此基因片段進(jìn)入酵母后與擬敲除基因發(fā)生同源重組,根據(jù)G418抗性篩選出陽(yáng)性克隆。然后將帶有Cre重組酶的質(zhì)粒導(dǎo)入陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子,通過(guò)半乳糖的誘導(dǎo)表達(dá)將兩個(gè)loxP位點(diǎn)間的抗性基因去除。文獻(xiàn)[6-7]就是利用Cre/loxp系統(tǒng)實(shí)現(xiàn)loxP位點(diǎn)間目的片段的精確去除。
本文以2株BAT2缺失單倍體突變株為出發(fā)菌株,利用重組質(zhì)粒pGAPZA中的Cre重組酶編碼基因去除G418抗性基因KanMX,然后將這2株單倍體雜交成雙倍體菌株ΔBAT2,該菌株具有良好的遺傳穩(wěn)定性,以野生菌株和出發(fā)菌株為對(duì)照,通過(guò)白酒發(fā)酵試驗(yàn)測(cè)定了其主要發(fā)酵指標(biāo)。
大腸桿菌(Escherichia coli)JM109、釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)AY15及其生孢子得到的單倍體菌株A8和C22、BAT2缺失單倍體突變株A8-B和C22-B及質(zhì)粒pGAPZA(帶有Zeocin抗性和Cre重組酶基因)均為本實(shí)驗(yàn)室保存。
電熱恒溫水浴鍋,電子天平,臺(tái)式高速離心機(jī),生化培養(yǎng)箱,HS-1300-V型超凈臺(tái),恒溫?fù)u床,光學(xué)顯微鏡,全自動(dòng)凝膠成像儀,GL20A型高速冷凍離心機(jī),PCT-200型PCR基因擴(kuò)增儀,P型移液器,DYY-4c型電泳儀,AgilentGC 7890,DL102x型電熱鼓風(fēng)干燥箱。
YEPD培養(yǎng)基,YPG誘導(dǎo)培養(yǎng)基(將YEPD培養(yǎng)基中葡萄糖改為半乳糖),LB培養(yǎng)基,棉子糖生孢培養(yǎng)基[8]
1.4.1 引物
利用Primer5.0設(shè)計(jì)PCR反應(yīng)引物(表1)。

表1 本文所用引物
1.4.2 酵母轉(zhuǎn)化
利用醋酸鋰轉(zhuǎn)化法[9]將pGAPZA質(zhì)粒轉(zhuǎn)入A8-B和C22-B中,提取酵母質(zhì)粒,PCR擴(kuò)增驗(yàn)證pGAPZA質(zhì)粒是否轉(zhuǎn)入A8-B和C22-B中。
1.4.3 G418抗性基因的去除
已攜帶有pGAPZA質(zhì)粒的A8-B和C22-B在半乳糖培養(yǎng)基中誘導(dǎo)表達(dá)4~5 h,稀釋涂布,挑出單菌落于YEPD平板上,再影印到G418抗性平板上,30℃靜置培養(yǎng)48 h。在YEPD上生長(zhǎng)而在G418抗性平板上不生長(zhǎng)即為所得到的菌株。提取酵母基因組,PCR擴(kuò)增驗(yàn)證KanMX基因是否去除。
1.4.4 質(zhì)粒pGAPZA的丟失
將帶有質(zhì)粒pGAPZA的酵母菌株接入10 mL YEPD液體培養(yǎng)基中,30℃、200 r/min搖瓶培養(yǎng)12 h。按1∶100的接種量,接到新的10 mL YEPD培養(yǎng)基中,同樣條件下培養(yǎng)12 h,如此反復(fù),直至pGAPZA質(zhì)粒丟失。取適量每次傳代的菌液稀釋涂布于YEPD平板上,挑取單菌落于5 mL YEPD中,培養(yǎng)12 h,提取酵母質(zhì)粒,PCR驗(yàn)證pGAPZA質(zhì)粒是否丟失。
1.4.5 單倍體雜交
將單倍體菌株按照吳帥等所述方法[10]雜交成雙倍體,提取其基因組,PCR驗(yàn)證BAT2缺失且無(wú)G418抗性基因。
1.4.6 雙倍體的遺傳穩(wěn)定性
從斜面上挑取1環(huán)雙倍體ΔBAT2于5 mL YEPD培養(yǎng)基中,每隔12 h轉(zhuǎn)接1次,如此反復(fù)轉(zhuǎn)接20次以上,對(duì)第 1、5、10、15、20 次的雙倍體進(jìn)行 PCR 驗(yàn)證。
1.5.1 CO2失重的測(cè)定
接種二級(jí)種子于玉米糊培養(yǎng)基中,30℃靜置培養(yǎng),按照文獻(xiàn)[11]描述的方法每隔12 h測(cè)CO2失重。
1.5.2 還原糖的測(cè)定
斐林試劑法[11]。
1.5.3 酒精度的測(cè)定
酒精計(jì)比重法[11]。
1.5.4 高級(jí)醇測(cè)定方法[12-13]
發(fā)酵結(jié)束后蒸餾發(fā)酵液得到含有高級(jí)醇的待測(cè)樣品。本試驗(yàn)測(cè)定高級(jí)醇的最佳條件為:色譜柱Agilent1909N -213:260℃;30 m ×320 μm ×0.5 μm;柱溫55℃保持5 min,然后以15℃/min的速度升溫至100℃,再保持6 min;進(jìn)樣口溫度230℃;檢測(cè)器溫度250℃;載氣流速1.000 mL/min保持5 min,然后以1.000 mL/min的速度升至5.000 mL/min,再保持1 min;氫氣流速30 mL/min;空氣流速400 mL/min;尾吹速度 25 mL/min;分流比 20∶1;進(jìn)樣量 1 μL。
2.1.1 pGAPZA質(zhì)粒轉(zhuǎn)化突變株A8-B和C22-B
將質(zhì)粒 pGAPZA分別轉(zhuǎn)化 A8-B和 C22-B,在Zeocin抗性平板上挑轉(zhuǎn)化子,提取酵母質(zhì)粒,通過(guò)PCR驗(yàn)證篩選出帶有pGAPZA質(zhì)粒的菌株,PCR結(jié)果如圖1所示。
由圖1可知pGAPZA質(zhì)粒上存在大小為1100bp的Cre基因和1200bp的 Zeocin抗性基因;未攜帶pGAPZA質(zhì)粒的A8-B和C22-B酵母質(zhì)粒上不存在Cre基因和Zeocin抗性基因;攜帶pGAPZA質(zhì)粒的A8-B和C22-B酵母質(zhì)粒上PCR擴(kuò)增的Cre基因和Zeocin抗性基因片段與陽(yáng)性對(duì)照pGAPZA質(zhì)粒上擴(kuò)增到的片段大小一致。這些結(jié)果證明pGAPZA質(zhì)粒已成功轉(zhuǎn)入釀酒酵母A8-B和C22-B中。
反映其成礦是在基性火山熔巖噴發(fā)間歇期沉積形成,其圍巖為基性火山巖(斜長(zhǎng)角閃巖)。說(shuō)明其成礦物質(zhì)來(lái)源除部分來(lái)自陸源外,大部分與其中火山沉積建造有關(guān)。

圖1 攜帶pGAPZA質(zhì)粒的釀酒酵母A8-B和C22-B的PCR驗(yàn)證
2.1.2 單倍體菌株ΔBAT2a和ΔBAT2α的獲得
半乳糖培養(yǎng)基誘導(dǎo)已攜帶pGAPZA質(zhì)粒的A8-B和C22-B,利用影印平板法篩選出YEPD平板上生長(zhǎng)而G418平板上不生長(zhǎng)的菌株,分別命名為ΔBAT2a和ΔBAT2α,并通過(guò)PCR驗(yàn)證G418抗性基因是否去除,結(jié)果如圖2所示。

圖2 KanMX基因去除的PCR驗(yàn)證
由圖2可知,A8和C22基因組上存在完整的BAT2基因,PCR擴(kuò)增的BA-BAT2-BB片段大小為2100bp;BAT2缺失突變株A8-B和C22-B基因組上BAT2基因被抗性基因KanMX替代,PCR擴(kuò)增得到2600bp的BA-KanMX-BB重組盒和1 600bp的KanMX基因;ΔBAT2a和 ΔBAT2α 基因組上去除KanMX基因后PCR擴(kuò)增得到1100bp的BA-BB片段。這些結(jié)果證明已成功獲得了無(wú)G418抗性基因的菌株 ΔBAT2a和 ΔBAT2α。
2.1.3 pGAPZA質(zhì)粒的丟失
在YEPD培養(yǎng)基上連續(xù)傳代 ΔBAT2a和ΔBAT2α,PCR驗(yàn)證pGAPZA質(zhì)粒是否丟失,結(jié)果如圖3所示。

圖3 pGAPZA質(zhì)粒丟失PCR驗(yàn)證
由圖3可知,從ΔBAT2a和ΔBAT2α酵母質(zhì)粒上擴(kuò)增不到Zeocin抗性基因片段,證明pGAPZA質(zhì)粒已丟失。
將單倍體 ΔBAT2a和 ΔBAT2α 進(jìn)行雜交(圖4 A),獲得雙倍體菌株ΔBAT2,并進(jìn)行生孢驗(yàn)證(圖4 B)。提取雙倍體菌株ΔBAT2的基因組,以BA-U和BB-D為引物進(jìn)行 PCR擴(kuò)增,結(jié)果如圖2泳道5(略)。

圖4 A,單倍體ΔBAT2a和ΔBAT2α的融合;B,雙倍體ΔBAT2的生孢驗(yàn)證
提取第1、5、10、15、20 次轉(zhuǎn)接的 ΔBAT2 的基因組,以BA-U和BB-D為引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,結(jié)果得到大小為1 100bp的BA-BB片段,如圖2第5個(gè)泳道(略),這就證明了單倍體ΔBAT2a和ΔBAT2α雜交的雙倍體ΔBAT2具有很好的遺傳穩(wěn)定性。
將野生菌株、出發(fā)菌株與BAT2缺失且無(wú)G418抗性基因的ΔBAT2同時(shí)進(jìn)行白酒發(fā)酵試驗(yàn),發(fā)酵結(jié)束后測(cè)定菌株的主要發(fā)酵指標(biāo)(表2)。

表2 菌株主要發(fā)酵指標(biāo)
由表2可以看出,BAT2缺失且無(wú)G418抗性基因的ΔBAT2與出發(fā)菌株A8-B和C22-B相比,CO2失重高,殘?zhí)堑?,乙醇含量?野生菌株AY15的異丁醇、異戊醇、總高級(jí)醇含量分別為 8.60 mg/100 mL、20.81 mg/100 mL、33.89 mg/100 mL,突變株 ΔBAT2的異丁醇、異戊醇、總高級(jí)醇含量分別為4.30 mg/100 mL、13.86 mg/100 mL、23.53 mg/100 mL,分別比野生菌株AY15降低50.00%、33.40%、30.57%。
高級(jí)醇是白酒中重要的風(fēng)味物質(zhì)之一,但是其含量超過(guò)一定量又會(huì)影響到白酒風(fēng)味。在酵母菌發(fā)酵過(guò)程中,高級(jí)醇主要有兩條代謝途徑,一是氨基酸轉(zhuǎn)氨途徑(Ehrlich代謝途徑),另一是糖代謝途徑(Harris途徑),分別由 BAT基因編碼的氨基酸轉(zhuǎn)氨酶[14-15]和YDL080C基因編碼的類(lèi)丙酮酸脫羧酶調(diào)控[16]。本實(shí)驗(yàn)室前期敲除了野生菌株AY15的單倍體A8和C22基因組上的YDL080C基因,但獲得的突變菌株生成的異丁醇、異戊醇及總高級(jí)醇與野生菌株相比沒(méi)有明顯變化[17];因此又構(gòu)建了氨基酸分解代謝途徑中細(xì)胞質(zhì)氨基酸轉(zhuǎn)氨酶的編碼基因BAT2完全缺失的突變株A8-B和C22-B[18],但突變株染色體上帶有G418抗性基因KanMX且單倍體突變株不穩(wěn)定,不能進(jìn)行工業(yè)生產(chǎn),因此必須去除抗性基因KanMX并將其雜交成雙倍體,構(gòu)建優(yōu)良的低產(chǎn)高級(jí)醇基因工程安全菌株。
本實(shí)驗(yàn)通過(guò)Cre/loxp系統(tǒng)去除BAT2完全缺失的突變株A8-B和C22-B染色體上的G418抗性基因KanMX,并將其雜交為雙倍體ΔBAT2,且雙倍體具有良好的遺傳穩(wěn)定性。白酒發(fā)酵試驗(yàn)結(jié)果顯示,構(gòu)建的基因工程安全菌株ΔBAT2與出發(fā)菌株A8-B和C22-B相比,CO2失重高,殘?zhí)堑?,乙醇含量?與野生菌株AY15相比,高級(jí)醇明顯降低。ΔBAT2生成的異丁醇、異戊醇、總高級(jí)醇分別為4.30 mg/100 mL、13.86 mg/100 mL、23.53 mg/100 mL,比野生菌株分別降低了50.00%、33.40%、30.57%。
基因工程安全菌株ΔBAT2的構(gòu)建不僅實(shí)現(xiàn)了低產(chǎn)高級(jí)醇,而且去除了G418抗性基因,具有雙倍體的遺傳穩(wěn)定性,可直接用于白酒工業(yè)生產(chǎn),這個(gè)實(shí)驗(yàn)成果對(duì)改善白酒品質(zhì),提高我國(guó)釀酒工業(yè)的生產(chǎn)技術(shù)水平和國(guó)際競(jìng)爭(zhēng)力具有重要意義。
[1] Lucie A Hazelwood,Jean-Marc Daran,Antonius J A van Maris,et al.The Ehrlich pathway for fusel alcohol production:a century of research on Saccharomyces cerevisiae metabolism[J].Applied and Environmental Microbilolgy,2008,74(8):2 259 -2 266.
[2] Ough C,Guymon F.Formation of higher alcohols during grape juice fermentation at various temperatures[J].Journal of Food Science,1966,31(4):620 -625.
[3] Hoess R,Abremski K,Sternberg N.The nature of the interaction of the P1 recombinase Cre with the recombining site loxP [J].Cold Spring Harb Symp Quant Biol,1984,49:7 612-7 681.
[4] Hoess R H,Wierzbicki A,Abremski K.The role of the loxP spacer region in P1 site-specific recombination[J].Nucleic Acids Research,1986,14(5):2 287 -2 300.
[5] Johannes H Hegemann,Ulrich Güldener,Susanne Heck,et al.A new efficient gene disruption cassette for repeated use in budding yeast[J].Nucleic Acids Research,1996,24(13):2 519-2 524.
[6] Gueldener U,Heinisch J,Koehler G J,et al.A second set of loxP marker cassettes for Cre-mediated multiple gene knockouts in budding yeast[J].Nucleic Acids Research,2002,30(6):e23.
[7] Jan Faix,Lisa Kreppel,Gad Shaulsky,et al.A rapid and efficient method to generate multiple gene disruptions in dictyostelium discoideum using a single selectable marker and the Cre-loxP system[J].Nucleic Acids Research,2004,32(19):e143.
[8] 肖冬光,劉 青,李 靜,等.釀酒酵母單倍體制備方法的優(yōu)化[J].釀酒科技,2004,124(4):21 -22.
[9] Gietz R D,Woods R A.Yeast transformation by the LiAc/SS Carrier DNA/PEG method[J].Methods Mol Biol,2006,313:107-120.
[10] 吳帥,陳葉福,沈楠,等.高耐性釀酒酵母的雜交育種[J].釀酒科技,2006,148(10):20 -22.
[11] 王福榮.釀酒分析與檢測(cè)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2005:110-112.
[12] 陳貽文.有機(jī)儀器分析[M].長(zhǎng)沙:湖南大學(xué)出版社,1996:150-151.
[13] 李斌,帥桂蘭,趙光鰲,等.獼猴桃酒中高級(jí)醇的研究[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2003,29(12):83 -86.
[14] Eden A,Simchen G,Benvenisty N.Two yeast homologs of ECA39,a target for c-Myc regulation,code for cytosolic and mitochondrial branched-chain amino acid aminotransferases[J].Journal of Biological Chemistry,1996,271(34):20 242-20 245.
[15] Kispal G,Steiner H,Court D A,et al.Mitochondrial and cytosolic branched-chain amino acid transaminases from yeast,homologs of the myc oncogene-regulated Eca39 protein[J].Journal of Biological Chemistry,1996,271(40):24 458-24 464.
[16] Dickinson J R,Lanterman M M,Danner D J,et al.A 13C nuclear magnetic resonance investigation of the metabolism of leucine to isoamyl alcohol in Saccharomyces cerevisiae[J].Journal of Biological Chemistry,1997,272(43):26 871-26 878.
[17] 郝欣,肖冬光,張翠英.釀酒酵母類(lèi)丙酮酸脫羧酶基因缺失對(duì)高級(jí)醇生成量的影響[J].微生物學(xué)報(bào),2010,50(8):1 030-1 035.
[18] Hao Xin,Xiao Dong-guang,Zhang Cui-ying,et al.Decreased higher alcohols production by BAT2 gene deletion mutants of industrial Saccharomyces cerevisiae[J].European Food Research and Technology,Applied Microbiology and Biotechnology,to be submitted.