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過度訓練動物模型制備的研究進展

2011-11-09 07:51:58麗,常
沈陽體育學院學報 2011年5期
關鍵詞:動物模型小鼠實驗

李 麗,常 波

(1.嘉應學院體育學院,廣東梅州 514015;2.沈陽體育學院運動人體科學學院,遼寧沈陽 110102)

過度訓練動物模型制備的研究進展

李 麗1,常 波2

(1.嘉應學院體育學院,廣東梅州 514015;2.沈陽體育學院運動人體科學學院,遼寧沈陽 110102)

通過整理與分析過度訓練動物模型、模型制備的注意事項及評價指標,探討過度訓練動物模型存在的問題,為過度訓練的深入研究提供參考。

過度訓練;實驗動物;模型

運動員長時間訓練導致的身體疲勞和機能下降不能在短時間內恢復,使其疲勞癥狀不斷增加或積累且運動成績下降,這種訓練稱為過度訓練(overtraining)。由于過度訓練對運動員的不利影響較大,研究者積極探索其機理、如何早期診斷、如何合理防治等,但這些深層次、創傷性的研究很難直接在人體上進行,所以人們常借助各種實驗動物實現這樣的實驗研究。但查閱國內外相關文獻,人們在建模中所采用的實驗對象、實驗條件、判斷標準均有較大差異,影響了有關研究的開展與深入。因此,筆者對相關動物模型進行綜述,以期為研究過度訓練提供基礎性參考。

1 模型制備方法

1.1 大鼠力竭性跑臺訓練

1.1.1 跑臺速度控制法

(1)選用雄性SD大鼠,體重(142.72±5.76)g。室溫(25±3)℃,濕度55%±15%。適應性飼養1周后,進行跑臺訓練,跑臺坡度為10度,周日休息。第1周每天適應性訓練10m/min×30min。第2至7周進行正式訓練,每次從15m/ min開始,每5min速度增加5m/min,直至40m/min,保持此強度至力竭。力竭標準:連續予大鼠施加聲、光、機械刺激后,大鼠不能跑動,下跑臺后連續喘息,暫時無逃避反應。造模后,大鼠血清睪酮濃度明顯降低,血清皮質酮濃度顯著升高,T/C比值顯著下降,尿液中TP、Alb和β2-MG的含量顯著增高。同時,大鼠體重明顯減少,且逐漸出現懶惰、無力、易受驚嚇、目光呆滯黯淡等一系列過度訓練反應癥狀[1]。此模型強度較大,與體育運動中由從事短時間、大強度運動的速度、爆發性項目(如100米跑、跳高、跳遠以及投擲等項目)引起的人體過度訓練效果相當。

(2)選用雄性Wistar大鼠,60天,體重200~280g。室溫22~24°C。大鼠在水平跑臺上(坡度為0%)適應性訓練3天,跑速為12m/min,每天進行10min。剔除拒絕運動及運動能力低于平均水平的大鼠。合格大鼠按照表1進行訓練,每周訓練5天,休息2天。

表1 大鼠跑臺運動方案

實驗控制:跑臺底端安有可產生微弱電流(2,0mA)的電柵來保證大鼠維持跑速。造模后,大鼠運動能力下降,血睪酮濃度顯著減少,皮質醇濃度顯著增多,睪酮/皮質醇顯著下降[2]。此強度大致為80%~85%最大攝氧量,與體育運動中,由從事長時間、中等強度的項目(如800m跑、200m游泳等項目)引起的人體運動性疲勞的效果相當。

1.1.2 步頻與跑臺速度對照控制法

選用雄性SD大鼠,120~123天,體重220~260g。在改建的大鼠多道跑臺上進行大負荷量的反復長時間跑臺訓練(吸氧量51.1ml/kg)。采用單位時間內步頻數與記錄器上顯示的數據對照控制的方法,即大鼠每10s內跑動步頻為25次左右,記錄器上的速度為 15m~22m/min。上午訓練150min,下午訓練150min,坡度均為5%(注:90°=100%)。造模15天,大鼠神態倦怠、眼睛變得暗淡無光,皮毛有少許脫落,進食量與大小便均減少,飲水量增加,大鼠出現體重明顯下降(超過1/30),可觀察到四肢足指有輕度腫脹,肌肉明顯萎縮等體征。末次運動12h后處死大鼠,可觀察到大鼠心肌的病理性損害和肝組織的組織學變化等[3]。此模型特點:采用不遵循序漸進原則的不合理的大運動量,在較短的時間內引起了大鼠過度訓練的產生。

1.2 大鼠力竭性游泳訓練

1.2.1 靜水條件下游泳訓練

1.2.1.1 無負重游泳訓練 選用雄性SD大鼠,體重280~300g左右。飼養溫度21~24℃。在150 cm×60 cm×70 cm,水深60cm,水溫31~32℃的水池中進行無負重游泳。每周訓練6天,休息1天。第一周:前3天進行30min/d適應性游泳,并在1周內延長時間至120min;第二周:120min/d;第三至六周:進行每天1次的力竭性訓練,力竭標準:游泳動作明顯失調,沉入水底3s不能回到水面。發現上述情況及時撈起,用吸水紙擦干,放回鼠籠休息;第七至八周:每天早晚各1次力竭性訓練,在短時間內力竭的大鼠,撈出休息5min后,再進行游泳訓練使游泳時間不少于2h。造模后血紅蛋白和紅細胞數顯著下降,睪酮/皮質醇比值顯著下降,其下降幅度可達到71.6%[4]。

1.2.1.2 負重游泳訓練 (1)選用雄性Wistar雄性大鼠,體重200g左右。飼養溫度(23±3)℃,相對濕度為70% ~80%。大鼠在水溫(34±2)℃、水深50cm、100cm×60cm× 70cm的玻璃缸中游泳,每周訓練6天,每天訓練1次,訓練6周。在大鼠游泳過程中出現力竭時(力竭標準為大鼠從水面下沉,經10s后仍不能返回水面),將其撈出,休息5min左右后,放入泳缸中繼續完成游泳負荷[5-7]。具體方案見表2。

表2 大鼠負重游泳運動方案

(2)選用SD雄性大鼠,體重180~220g。飼養溫度22~28℃,相對濕度50% ~55%。游泳池為100cm×60cm× 60cm,水溫控制在(30±1)℃,水深50cm。每周訓練7次,共訓練6周,開始前3天進行適應性訓練30~60min,第一周每次持續訓練180min,第二至四周起尾部負體重的4%~5%,時間延長至200min,第五~六周減量(觀察大鼠游泳能力的變化,當下沉水下無能力浮上時,立刻托起減量至3%)。造模后大鼠運動能力下降,食量大減,體重降低(20%),體毛不潔,精神倦怠,心電圖異常(12例竇性,節律整齊;2例房室傳導阻滯;2例充血性心衰),血紅蛋白、血睪酮和睪酮/皮質醇比值下降(17.4%、16.8%和53.3%),尿蛋白、皮質醇和血乳酸升高(分別為704.6%、86.5%和55.3%)[8-10]。

1.2.2 流動水條件下游泳訓練

選用Wistar雄性大鼠,體重(209±20)g。先適應性喂養3天,同時每天在流動水游泳水槽里進行20min適應性游泳訓練1次,將游泳時間少于20min的大鼠篩除,之后開始正式訓練,訓練時間為7周。如在游泳期間發現有力竭表現(大鼠游泳力竭標準為:在水下10s不能上浮),撈出水面休息5min后繼續游泳至游滿規定時間,具體訓練時間和負荷見表3。造模后,大鼠血清總睪酮水平及睪丸AQP9 mRNA表達均降低[11]。

表3 流動水槽中大鼠游泳訓練方案

1.3 小鼠游泳訓練

1.3.1 負重力竭性訓練

選用雄性昆明種小鼠,18~22g。在直徑50cm的圓桶狀游泳池中進行訓練。水深50cm,內壁光滑,每周訓練5天,每天1次。第一次下水游10min,此后逐日累加,第一周末每天游半小時;第二周末每天游1h;第三周末每天游2h。第四周負1%體重,每天游2h;第五周末增加到2%,且上、下午各訓練一次,每次訓練2h。如發現力竭表現(在水下10s不能上游),撈出水面休息5min后繼續訓練滿2h。第六周于夜間再加訓練1次,負3% ~7%體重,反復游至力竭,訓練2h。訓練中不能達到預定強度的小鼠予以淘汰。造模后,小鼠神態疲憊,毛發稀疏,眼神暗淡無光,食量大幅減少,體重顯著下降(超過1/30),血紅蛋白濃度降低(14%),尿蛋白排泄量顯著增加(322%)[12]。

1.3.2 無負重長期訓練

選用2月齡C57BL/6雌性小鼠,在高40cm、直徑45cm的游泳池中游泳,水溫(32士2)℃。第一天訓練15min,以后每天增加5min,至120min后恒定運動時間,每周6次,每天下午2-4點進行。每天訓練后均立即用清潔毛巾擦干小鼠。對照組置有鐵柵網的相同溫度水中30min,小鼠不運動,以盡可能減少水溫和捉拿刺激對小鼠免疫功能的影響。3個月后各組靜休72h后,處死大鼠。測定各項指標。結果表明:小鼠體重顯著下降(超過1/30)、脾細胞數顯著下降(P<0.001)[13]。

2 制備模型注意事項

2.1 模型要盡可能再現所要求的過度訓練狀態

復制運動員在訓練過程中出現的過度訓練狀態,應注意其與運動性疲勞造模的區別:運動員過度訓練時機體疲勞和機能下降不能在短時間內恢復。其中,短則不適癥狀在1~2周內恢復,長則不適癥狀在2周內仍不能恢復[5]。目前的研究主要是側重于造模過程中血液指標的連續性變化(斷尾或部分處死)[14-16]和運動后24h的恢復情況,缺乏更長恢復時間的生理、生化指標對照。

2.2 模型動物的選擇

在進行過度訓練模型的制備時要求實驗動物進行較長時間的疲勞訓練,而大鼠的身體素質好、生命力強、適應能力強,在過度訓練的造模過程中存活率相對較高,同時大鼠體液、血液和器官組織等資源相對充足,易于取材,因此大多數學者選用大鼠進行實驗。而小鼠死亡耗損率較高、資源相對有限(在數量上要予以保證),所以采用小鼠進行過度訓練造模的實驗很少。

2.3 訓練方法的選擇

2.3.1 跑臺

跑臺運動的強度主要由跑速和坡度決定,較容易控制。但為了使實驗動物能夠按照預定好的強度進行訓練,一般需采取電擊、聲音刺激、毛刷刺激或強氣流等來驅使動物進行奔跑,其產生的是非主動性運動,這是動物跑臺應用中的一個局限性因素。運動時當大鼠的跑速低于跑臺速度,會受到較強的刺激來強迫它以規定的強度和時間完成運動,這種刺激嚴格地說是一種傷害性刺激,使大鼠產生了防御性反射應激,這不是運動應激,過度應激有時會導致動物死亡[17]。有研究表明:僅僅刺激尾部的皮膚,就會引起大鼠生理上的改變,如引起去甲腎上腺素和腎上腺素的升高。而且并非所有大鼠都能學會在跑臺上奔跑。易造成尾部和足部的機械性損傷,引起出血和繼發感染,影響實驗結果[18]。另外,不同運動時間、強度運動,對大鼠造成的過度訓練程度亦有所不同。相同的運動強度下,不同的刺激方式對大鼠機體的影響也不一樣。因此,研究結果進行比較與交流時,要統一刺激方法、頻率等實驗條件。

2.3.2 游泳

游泳所需實驗設備大多簡便易得。由于游泳是大鼠和小鼠的本能,采用游泳方式訓練時大鼠和小鼠不會產生強烈的抵觸情緒,在使用流動水或不停攪動水使動物不停運動時,實驗動物承受體力外的不良刺激少,是一種卷入“情感因素”最少的訓練方式[19],而且易維持運動強度在較高水平[4]。另外,游泳對心臟的影響比較顯著[20]。但也存在不足:①需水量較大:為避免實驗動物尾巴撐在池底休息,要求靜水深要超過實驗動物身長的2倍,一般大鼠游泳水深50cm以上,小鼠游泳水深20cm以上;每只實驗動物占用的水面積大多在300cm2以上。②時刻監控水溫,無特殊需求一般應控制在28~36℃之間,一般上下波動幅度為1~2℃。③工作量大。有的動物可游數小時而不疲勞,這就需要加大強度,如負重。常用的負重方法有尾部負重、腋下胸前負重和背后負重,不同的負重部位對動物的疲勞時間、疲勞強度是否有影響,目前還不清楚。同時,不論大鼠還是小鼠在游泳時都會排便、排尿,并釋放某種“警戒物質”[21]。同批次游泳要不斷地清除糞便、雜草、鋸末等雜質。不同批次實驗動物進行游泳時,要保證游泳水的清潔,最好是換水。另外,實驗動物運動完要進行擦拭、吹風等干燥處理。不難看出從負重、準備游泳用水、清除雜質、保證水溫、驅趕動物或攪動水、換水到干燥,制備游泳模型的實驗工作量很大。④在大鼠游泳訓練中,游泳時間越長,呼吸道感染的發生率就越高,故需對保健問題予以足夠的重視[22]。

2.4 注意環境因素對模型動物的影響

造模的成敗往往與環境的改變有密切關系。擁擠、飲食改變、過度光照、噪音,溫度、濕度(小鼠對溫度和濕度均比較敏感)、通風情況的破壞等,任何一項被忽視都可能給模型動物帶來嚴重影響。另外,在實驗過程中,對照組動物與實驗組動物應保持在同一環境中,例如實驗組動物游泳,對照組動物應在同溫度的淺水中不進行游泳,以排除水溫因素對實驗的干擾[23]。實驗動物在跑道上跑步,對照組動物應放在同規格跑道上,以排除環境的影響。

3 判斷模型成功的典型的形態、生化指標

目前對于過度訓練的診斷主要從既往病史、運動員的主觀感覺、一些生理生化指標的變化以及運動實驗的結果而綜合判斷。對動物過度訓練的確定由于缺乏主述只能建立在觀察其形態指標、訓練史及生理、生化指標的變化等方面。

3.1 一般狀況指標

3.1.1 形態的觀察、運動姿勢和運動能力的觀察

過度訓練造模過程中,實驗動物的形態、運動姿勢與運動性疲勞的一般狀況指標大體相一致(參見本課題組關于運動性疲勞動物模型制備的報道)。但其運動能力下降更為明顯:在運動訓練后期實驗動物易發生抽搐,運動期間需多次休息,運動至力竭的時間明顯縮短。死亡率明顯上升:運動訓練過程中因疲勞衰竭而死亡動物明顯增多,死亡率可高達50%以上[4]。

3.1.2 體重(weight)

體重的下降常常提示存在過度訓練的可能,特別是體重下降超過1/30時,常被作為判斷運動員過度訓練的依據之一。在過度訓練動物模型的制備中,也認為動物體重負增長大于1/30時,發生了過度訓練[16]。這種負增長指體重的增長為負數,是自身前后變化的一種比較。一般情況下,在訓練的最初階段訓練組大鼠體重與對照組均呈相似的正性增長趨勢,而在訓練后期大鼠體重出現明顯不同的變化,對照組呈正性增長,訓練組則呈負性增長。

3.2 典型的生化指標

3.2.1 血紅蛋白(hemoglobin,Hb)

血紅蛋白常被用作判斷過度訓練的指標之一。許多研究報道,無論是運動員或是動物發生過度訓練時均表現出血紅蛋白水平顯著下降。人類過度訓練時血紅蛋白的診斷標準為下降20%以上[24]。以往過度訓練動物模型制備中常見的比例為10%以上[4,18,25]。目前,對實驗動物血紅蛋白基礎值的研究并不多。有學者報道:6~8周的Wistar大鼠的正常參考值[26]:雌性100~155g/L,雄性100~160g/L。而SD大鼠的血紅蛋白值主要集中在140~170g/L,小鼠的血紅蛋白值主要集中在100~160g/L,兩者均缺乏更為科學的研究。

3.2.2 血睪酮(testosterone,T)和皮質醇(cortisol,C)

血睪酮和皮質醇作為運動員機能評定的重要指標也常應用于動物模型的評定。人類過度訓練時的診斷標準為:血睪酮下降25%~30%以上,皮質醇下降20%左右或在原安靜值水平上下降[24]。以往過度訓練動物模型制備中常見的比例為血睪酮下降40%以上,皮質醇下降90%以上[5,27,28]。睪酮/皮質醇常被作為了解運動員身體合成代謝與分解代謝平衡狀態,進而判斷疲勞和競技狀態的重要指標。人類過度訓練時血清游離睪酮/皮質醇的診斷標準為持續下降、下降30%以上[24]。以往過度訓練動物模型制備中常見的比例為40% ~100%[5,27,28,29]。文獻中睪酮/皮質醇比值主要集中在0.01~0.60之間。

3.2.3 血尿素(blood urea nitrogen,BUN)

血尿素水平可反應機體對運動負荷的適應及訓練后的恢復狀況。人類過度訓練時血尿素連續幾天晨>7~8mmol/ L[24]。以往過度訓練動物模型制備中常見的比例為:次日晨升高45%以上[5,30]。有學者報道:6-8周的Wistar大鼠的正常參考值[31]:雌性 5.1~21.7mmol/L,雄性 5.8~21.4mmol/L。

3.2.4 血清肌酸激酶(creatine kinase,CK)

肌酸激酶是骨骼肌細胞中能量代謝的關鍵酶之一,血清肌酸激酶活性變化可作為評定肌肉承受刺激、骨骼肌微細胞損傷及其適應與恢復的一個敏感指標。人類過度訓練時血清肌酸激酶的診斷標準為持續幾天>200~300IU/L,升高40%[24]。以往過度訓練動物模型制備中常見的比例為:次日晨升高50%以上[32-34]。由于血清酸激酶活性水平的個體差異較大,更適用于個體自身的縱向比較[35],這里不做介紹。

3.2.5 尿蛋白(urine protein)

運動后尿中蛋白質排出的數量,可以作為評定運動員身體機能狀態、運動強度和量度的指標。人類過度訓練時尿蛋白連續幾天在訓練后增加3~4倍,次日晨尿蛋白,恢復慢。以往過度訓練動物模型制備中常見的比例為次日晨升高100% ~500%[5,29,36],甚至更高[8]。文獻中160~200g左右的大鼠24小時尿蛋白排泄率主要集中在6~20mg/24h。尿蛋白濃度主要集中在10~90mg/L之間。

3.2.6 血乳酸(blood lactic acid)動態變化

乳酸是糖酵解產物,乳酸的堆積是引起短時劇烈運動疲勞的原因,主要通過改變體液的pH值而限制運動能力。有學者報道[37]:訓練前期,隨著運動時間的增加血乳酸也相應增加,說明該運動是糖酵解供能為主的運動,且由于機體酸堿平衡調節機構尚能適應該運動,乳酸還尚未成為限制運動能力的主要因素。而訓練后期,由于繼續施加過度負荷,機體調節能力下降,血乳酸相對于前一階段減少,說明糖酵解供能下降,因而運動能力下降。在以糖酵解供能為主的運動中血乳酸值較前階段相同運動后減少可視為過度訓練的早期反應。

3.2.7 血糖(blood glucose)

血糖是運動中主要的能源物質之一,血糖濃度降低和肌糖原儲備的減少是導致運動疲勞的重要原因[38]。反過來,過度訓練時也會伴隨血糖濃度的下降。人類過度訓練時血糖下降7%~12%,且運動強度加大,下降增多。以往過度訓練動物模型制備中常見的比例為30%以上[31,39]。文獻報道的小白鼠正常血糖值的差別較大,這些差異可能與血糖的測試方法、測試時間、動物禁食與否和禁食時間等因素有關[40],這里不做介紹。

近年來也有學者致力于其他敏感指標的研究,如熱休克蛋白(Hsp72),研究發現:骨骼肌中Hsp72表達下調在時間上早于血液激素指標變化和過度訓練階段發展變化過程;與血紅蛋白和CK濃度變化同步[41]。

4 典型模型制備的舉例

4.1 跑臺

選用雄性SD大鼠,2月齡,體重(228±17)g,在BCPT-96型跑臺機上進行8周的跑臺訓練。包括一般訓練和力竭性訓練各4周。動物跑臺坡度為10度,每周訓練6天,周日休息。

第1周:每天完成10m/min×10min的跑臺運動;第2周:每天完成10m/min×10min跑后,繼續加速至15m/min× 10 min;第3周:每天進行10m/min、15m/min、20m/min各10 min的持續跑臺訓練;第4周:每天分別進行10m/min、15m/ min、20m/min、25 m/min各10min的持續運動;第五至八周進行遞增負荷跑臺跑,每天以15 m/min、20 m/min、25 m/min各10 min運動后加速至30m/min、35m/min各20 min運動,并不斷遞增跑速,直到大鼠力竭。力竭標準:連續予大鼠施加聲、光、機械刺激后,大鼠不能跑動,下跑臺后連續喘息,暫時無逃避反應。末次運動48h處死大鼠,測定各項指標。結果表明:造模組大鼠體重(6%)、血紅蛋白(17%)、血尿素氮(5%)、血漿總睪酮(26%)均下降[16]。

4.2 游泳

選用雄性Wistar大鼠,體重150~190g,在直徑為45cm的圓形游泳池中進行訓練。水深70cm,水溫34~36℃。包括一般游泳訓練和過度負荷訓練。第1周第1次下水游10min,此后逐日累加,第1周末時每天游半小時,第2周末時每天游1h,第3周末時每天游2小時。第4周開始時于大鼠尾部負0.5%體重的重物,每天游2h,第4周末時增加負重量到體重的1%,第5周末增加到2%。第6周起每天上、下午各訓練1次,上午負2%體重游2h,下午負3%~7%體重游約2h,如發現有力竭表現(在水下10s不能上浮),撈出水面休息5min后繼續訓練至滿2h,第7至8周時,于夜間再加訓1次,負3%~7%體重,反復游至力竭,訓練2h。末次運動24處死大鼠,測定各項指標。結果表明:造模組大鼠體重(7%)、血紅蛋白(17%)、血尿素氮(5%)、血漿總睪酮(26%)均下降[20]。

5 存在的問題及思考

過度訓練動物模型制備的原則是盡量模擬運動員的訓練,這就提示我們有些問題值得思考。

首先,如何創造訓練條件及環境。游泳訓練中,多只實驗動物在一個容器內,動物間難免出現互相蹬踩、借力,這可能會引起動物嗆水、憋氣上串等現象發生。Ishihara K等人[42]利用電流將游泳池分隔為幾個泳道從而避免了游泳動物間的物理干擾。但會不會帶來其他的干擾因素還有待于進一步研究。運動員在白天訓練,符合自身的24h生物節律。鼠類則一般在白天睡覺休息,晚上出來活動,而在白天進行強迫性的運動訓練是不是會引起實驗動物體力、免疫功能等下降呢?Wax TM等在研究C57BL/6J小鼠24h的跑籠規律時發現,小鼠在暗周期(6pm~6am)時的活動量明顯大于明周期,尤以下午6時至午夜的活動量最大[43]。而這在過度訓練造模過程中很少強調或體現。

第二,訓練方案的制定。運動方式的選擇:有學者把運動員過度訓練分為交感性和副交感性過度訓練。交感性過度訓練的特點是興奮、煩躁,多發于無氧類型的運動項目,如短跑、跳躍等;副交感性過度訓練的特點是機體表現抑郁、沮喪,多發于有氧類型的運動項目,如長跑、游泳等[44]。而學者在制備動物模型時多關注于跑步、游泳及其引起的過度訓練,對跳躍類項目研究較少。有學者用大耳兔制備了運動性疲勞模型[45],而利用大耳兔進行過度訓練的研究還未見報道。而轉籠(是一種自主運動無需外界刺激強迫,現階段該模型主要用于機體適應性生理變化的研究)、舉重(屬于自主性隨意運動,對動物無侵害,易進行調控,適用于重復阻力訓練的運動能力和生理學機制等多方面的研究,但為了維持其較大強度的運動有時需要食物刺激)、負重爬(可負重,主要用于骨骼肌肥大的造模,為了維持其較大強度的運動有時需要食物或電刺激等)[46]在過度訓練的模型中應用亦少見。運動強度的確定:在現有的動物模型中,對運動負荷的描述多為定性描述,如“耐力訓練”、“大負荷訓練”、“中等強度運動”“遞增負荷運動”等,而無法做到對大鼠運動負荷的定量描述。有學者嘗試用攝氧量[47]、血乳酸[48-49]等指標對強度進行監測,但其在國內應用的并不多。運動時間:在以往模型中,訓練時間從15天到3個月不等,屬于短期過度訓練還是長期過度訓練亦沒有一定的界定標準。

第三,對造模成功與否的評價或診斷。對運動員過度訓練的診斷往往參照所選指標的正常參考范圍,如所測值高于或低于正常范圍的上下線,則說明運動員某方面出現了異常。各種實驗動物是否也有這樣的正常參考值呢?王玉良等人曾對小鼠、Wistar大白鼠血清尿素氮、血紅蛋白、血糖等指標進行了抽樣測試與統計分析,但對其他實驗動物及部分常見血尿指標還沒有測試、對比,還缺乏更為系統的研究。(從整體上看,實驗動物血尿指標的正常參考值較難確定,這與實驗動物的所在地區、種屬、受試動物的日齡、飼養管理條件、測試方法、測試時間等因素有關,因此系統研究的工作量將會很大。)再者,參照運動員訓練前后的生理生化指標變化幅度,實驗動物是不是和人類的變化幅度一致呢?目前,研究者報道的模型動物的指標變化幅度均大于人類的變化幅度,但程度不一。如果實驗動物過度訓練后各指標變化幅度本身就大于人類的變化幅度,那又該如何呢?末次運動后指標測試時間的確定:運動員發生過度訓練時恢復較慢、時間較長,實驗動物也應該如此。現階段各指標的測試時間主要是末次運動后24h、48h,偶見72h,缺乏更為系統的、動態的參照。

[1]唐智明,鄧玉強,金其貫.補充谷氨酰胺對過度訓練大鼠腎臟濾過屏障形態結構和尿液成分的影響[J].西安體育學院學報,2009,26(1):77-80.

[2]Fábio S Lira,José C Rosa,Gustavo D Pimentel,et al.Inflammation and adipose tissue:effects of progressive load training in rats[J].Lipids in Health and Disease,2010,9:109-118.

[3]步 斌,肖邦良,步 宏,等.模擬過度訓練對肝組織病理和酶組織化學影響的實驗研究[J].成都體育學院學報,1995,21 (3):59-64.

[4]李寧川,金其貫,孫新榮.力竭性游泳訓練對建立過度訓練動物模型的作用[J].體育與科學,2000,21(1):53-55.

[5]李 麗,常 波.遼東楤木對過度訓練大鼠腎功能損傷預防作用的研究[J].北京體育大學學報,2009,32(4):64-66.

[6]李素萍,常 波.微量全血單細胞凝膠電泳評定過度訓練大鼠淋巴細胞DNA損傷[J].中國組織工程研究與臨床康復,2008,12(38):7547-7550.

[7]劉建華,常 波.遼東楤木對過度訓練大鼠心肌線粒體游離鈣的影響[J].天津體育學院學報,2006,21(5):423-425.

[8]田振軍,熊正英,郭 進,等.大鼠游泳過度訓練模型的建立及心室構型改建研究[J].陜西師范大學學報(自然科學版),1996,24(3):104-109.

[9]田振軍.過度訓練對心肌間質膠原、心肌舒縮性能和AngⅡ變化的研究[J].中國應用生理學雜志,2002,18(1):63-67.

[10]田振軍,熊正英.過度訓練對大鼠心肌鈣細胞化學及EDAX能譜分析和心肌收縮性能變化的研究[J].體育科學,1997,17 (3):57-60.

[11]張忠芳,趙 丹,趙雪儉,等.過度訓練對大鼠睪丸AQP9表達的影響[J].北華大學學報(自然科學版),2006,7(5):407-410.

[12]李驍君,王廣峰,余俊明,等.過度訓練對小鼠NK細胞、單核吞噬細胞系統活性的影響[J].山東體育學院學報,2001,17(1): 30-31.

[13]姚毓才,張寶慧.運動訓練對小鼠NK細胞殺傷功能和脾細胞IL-2產生能力的影響[J].中國運動醫學雜志,1995,14(1): 17-20.

[14]馮小東,秦 香.過度訓練狀態下大鼠腸黏膜超微結構和免疫病理性變化研究[J].天津體育學院學報,2008,23(1):71-73.

[15]劉鐵民,吳衍忠.過度訓練狀態下大鼠心肌線粒體病理性變化的研究[J].北京體育大學學報,2004,27(2):219-221.

[16]鄭 陸,隋 波,潘力平,等.過度訓練動物模型的建立[J].中國運動醫學雜志,2000,19(2):179-181.

[17]楊曉紅,王 震,徐國琴.過度訓練動物模型分析[J].廣州體育學院學報,2010,30(3):88-91.

[18]朱 全,浦鈞宗.大鼠游泳訓練在運動實驗中的應用方法[J].中國運動醫學雜志,1996,15(2):125-129.

[19]Kramer K,Dijkstra H,Bast A.Control of physical exercise of rats in a swimming basin[J].Physiol Behav,1993,53(2):271-276.

[20]朱 全,浦鈞宗,張 敏.游泳方法建立大鼠模擬過度訓練模型[J].中國運動醫學雜志,1997,20(2):137-140.

[21]Abel EL,Bilitzke PJ.Adrenal activity does not mediate alarm substance reaction in the forced swim test[J].Psychoneuroendocrinology,1992,17(2-3):255-259.

[22]毛 杰.大白鼠游泳訓練的實驗方法和運動模型[J].武漢體育學院學報,2004(3):32-34,41.

[23]田振軍,張志琪.小鼠運動性疲勞相關基因篩選的初步研究[J].中國運動醫學雜,2002,21(1):4-6.

[24]馮煒權.運動疲勞及過度訓練的生化診斷-運動生物化學動態之三[J].北京體育大學學報,2000,23(4):498-502.

[25]楊建昌,王 軍,陳樂琴,等.過度訓練對大鼠胃腸道組織形態及功能的影響[J].中國體育科技,2005,41(5):123-126.

[26]李顯華,張 宏,向紹杰,等.Wistar大白鼠血紅蛋白的抽樣測試與統計分析[J].動物學雜志,2000,35(1):24-26.

[27]王海軍.過度訓練對大鼠腸道免疫功能的影響及谷氨酰胺-大豆多肽的干預作用[D].揚州:揚州大學,2008.

[28]劉志二,趙大林,李進華,等.人參莖葉提取物對過度訓練大鼠肝組織氧化損傷的預防作用[J].沈陽體育學院學報,2009,28 (5):59-61,70.

[29]律海濤,何 敘.補充谷氨酰胺和大豆多肽對過度訓練大鼠血清睪酮和皮質酮水平影響的研究[J].中國體育科技,2008,44 (5):126-129.

[30]常波,衣雪潔,于瑩.過度訓練和補糖對大鼠骨骼GLUT4和PKb活性的影響[J].武漢體育學院學報,2010,44(1):68-72.

[31]向紹杰,杜佳林,張 宏,等.6~8周齡Wistar大白鼠血清尿素氮的抽樣測試與統計分析[J].動物學雜志,1999,34(3):25-27.

[32]伊木清,周麗麗,許葆華,等.過度游泳訓練及力竭降低大鼠骨骼肌肌漿網Ca2+相對釋放能力[J].中國運動醫學雜志,2005,24(6):668-675.

[33]龐立杰.大鼠過度訓練后血清cTnI、CK-MB和TNF-α的變化及復方丹參的干預效應[D].太原:山西大學,2007.

[34]王 沛.過度訓練對大鼠血清心肌酶活性的影響[J].西安體育學院學報,2001,18(2):35-37.

[35]華 冰,董 柔,蘇全生.大強度離心運動大鼠不同時相骨骼肌結構及血白細胞介素6、肌酸激酶、肌酸激酶同工酶的變化[J].中國組織工程研究與臨床康復,2009,13(28):5534-5538.

[36]徐 昕,岑浩望,尤春英,等,模擬過度訓練對大鼠腎臟細胞內鈣穩態的影響[J].中國運動醫學雜志,1999,18(3):233-235.

[37]陳協芳,程旭光.大鼠過度訓練時間與血乳酸值變化的關系探討[J].四川體育科學,1997(1):21-22.

[38]李世成,方子龍,王啟榮,等.個體化補充抗疲勞促恢復飲料對運動人體血糖應答及體能恢復的影響[J].西安體育學院學報,2010,27(3):325-330.

[39]衣雪潔,張慶榮,于 瑩.健脾補糖對過度訓練脾虛大鼠骨骼肌GLUT4和P38活性的影響[J].北京體育大學學報,2007,30 (9):1212-1215.

[40]王玉良,李顯華,張 宏,等.沈陽地區小白鼠血糖值的測試與分析[J].動物學雜志,1994,29(2):33-36,53.

[41]張學林.熱休克蛋白72(Hsp72)作為過度訓練監測指標的研究[D].石家莊:河北師范大學,2004.

[42]Ishihara K,Yamada A,Mita Y,et al.Improved swimming pool achieves higher reproducibility and sensitivity to effect of food components as ergogenic AIDS[J].J Nutr Sci Vitaminol(Tokyo),2009,55(3):301-308.

[43]陳運才,姚志彬,顧耀銘,等.長期運動對小鼠運動功能年齡變化的影響-1.曠場試驗[J].中國運動醫學雜志,1996,15(1):2-6.

[44]任昭君,孫 丹,殷 紅.分析過度訓練的產生與診斷[J].吉林體育學院學報,2004,20(2):79-80.

[45]劉 波,鄒 明,馬 建,等.運動性形體疲勞“肝腎虧虛”動物模型的實驗研究[J].中國中醫骨傷科雜志,2001,9(4):20-23.

[46]李俊平,徐玉明,王瑞元.常用動物運動模型的方式與發展[J].北京體育大學學報,2006,29(12):1669-1671.

[47]嚴 翊,謝敏豪.大鼠游泳運動的最大乳酸穩態負荷的確定——乳酸最小試驗[J].北京體育大學學報,2010,33(9):43-45,51.

[48]張 勇,文 立,時慶德,等.大鼠運動狀態下攝氧量測定方法的初步研究——小動物密閉跑臺結合氣相色譜分析法測定[J].中國運動醫學雜志,1998,17(4):339-341.

[49]Leandro CG,Levada AC,Hirabara SM,et al.program of moderate physical training for Wistar rats based on maximal oxygen consumption[J].J Strength Cond Res,2007,21(3):751-756.

A Summarizing Study on Preparation of Overtraining Animal Model

LI Li1,CHANG Bo2
(1.PE Department of Jiaying University,Meizhou 514015,Guangdong,China;
2.School of Sports Human Science,Shenyang Sport University,Shenyang 110102,Liaoning,China)

This paper consolidated and analyzed overtraining animal model,its cautions and assessment,problem in overtraining animal model.It provided reference for in-depth research on overtraining.

overtraining;experimental animal;model

G804.7

A

1004-0560(2011)05-0077-06

2011-05-22;

2011-06-25

國家自然科學基金課題面上項目(編號:30971414);遼寧省高等學校優秀人才支持計劃(2011年)。

李 麗(1979-),女,講師,碩士,主要研究方向為運動人體科學、體育人文社會學。

責任編輯:喬艷春

?體育教育訓練學

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