齊牧遙,趙 丹,王 芬,謝 云,陳五嶺
(西北大學生命科學學院,陜西西安710069)
美國紅提葡萄又名美國紅提、晚紅、大紅球,是美國加州大學育成的優質葡萄新品種,晚熟[1-2],它以個大、色艷、肉厚、味甜、質優、耐貯等優良性狀而著稱,深受廣大人民群眾的喜愛。但是,紅提葡萄屬歐亞品種,抗病性較差,不抗多種病害,在多雨的年份或栽植在溫暖濕潤的地區,其主要病害尤其是真菌性病害發生嚴重,病害一旦蔓延,對產量、品質、效益影響較大,造成許多果園減產甚至面臨毀園的危險,因此,防治病害至關重要[3-4]。
目前,紅提葡萄的主要病害為葡萄黑痘病、葡萄霜霉病、葡萄白腐病,防治措施主要為套袋或者化學防治,但其往往會帶來人力成本過高、用藥盲目、超濃度用藥等問題[5-6]。由于生物防治技術具有安全、無污染、無殘留等特點,越來越受到人們的廣泛關注。葡萄白腐病又稱腐爛病,全世界均有分布,它是紅提葡萄主要的真菌性病害之一。該病常年發生,一般年份會造成減產15%~20%,在流行年份達到60%以上,是紅提葡萄病害中造成損失最重、危害最大的一種病害[7-8]。Guetsky等[9]證實,不同的拮抗微生物具有不同的功能,混合使用比單獨使用效果更好。
本試驗選取紅提葡萄真菌性病害中發生頻率最高、范圍最廣、病害嚴重性最強的白腐病的拮抗菌作為研究對象,將實驗室已有的2種拮抗菌混合培養,從而獲得拮抗能力更強的混合拮抗菌液,并嘗試優化培養基配方,提高混合菌液的拮抗能力,旨在為進一步配制復合生防菌肥、無公害防治葡萄白腐病打下基礎。
1.1.1 菌種 枯草芽孢桿菌PT2′(由西北大學生命科學學院實驗室誘變得到,保存于4℃冰箱),QM34(由西北大學胡青平博士篩選并予以鑒定),葡萄白腐病病原指示菌(為西北大學生命科學學院實驗室保藏菌種)。
1.1.2 培養基 搖瓶種子培養基(g/L):蛋白胨10.0,葡萄糖 5.0,牛肉膏 5.0,NaCl5.0,MgSO4·7H2O 0.15,MnCl2·7H2O 0.01。
牛肉膏蛋白胨培養基(g/L):蛋白胨10.0,牛肉膏 3.0,NaCl15.0,瓊脂 20.0。
玉米粉液體培養基:糖化酶(2 000單位),α-淀粉酶(2 000 單位),玉米粉,KH2PO4,CO(NH2)2。
牛肉膏蛋白胨液體培養基(g/L):牛肉膏3.0,蛋白胨 10.0,NaCl15.0。
以上培養基使用的試劑均為化學純,調整pH值為7.0,121℃下滅菌30min。
1.1.3 儀器設備 超凈臺SW-CJ-1F,上海蘇凈實業有限公司;立式壓力蒸汽滅菌鍋LDZX-40BI,上海申安醫療器械廠;電熱恒溫干燥箱GZX-DH 400-BS-Ⅱ,上海躍進醫療器械廠;顯微鏡Eclipse E200,尼康公司;電子天平Sartorius BS210S,北京賽文利斯;培養箱MJ-160-Ⅱ,上海躍進醫療器械廠;分光光度儀UV-2401,PC。
1.2.1 最佳發酵條件的確定
1.2.1.1 最佳培養基的選擇 將菌種PT2′及QM34按照接種量各1%混合,分別接種于裝有無菌牛肉膏蛋白胨培養基、無菌搖瓶種子培養基和無菌玉米粉液體培養基的錐形瓶中,做好標記。然后將3個錐形瓶置于30℃,200 r/min的搖床中振蕩培養24 h。重復3次。
1.2.1.2 發酵培養基生物量測量 取1.2.1.1的3種發酵液各1mL,于5mL無菌水中稀釋后,分別取1mL,在660 nm下測定吸光值,標記為A660,每種發酵液重復測定3次。以未接種的無菌培養基按照相同的取量作為空白對照。
1.2.1.3 發酵培養基抑菌能力的觀察 于4℃,1 000 r/min離心10min得到1.2.1.1的3種發酵液的上清液,經過微孔濾膜過濾得到無菌發酵液,以葡萄白腐病致病真菌為拮抗對象,四點杯碟對峙法[8]做拮抗試驗,每個平板試驗重復3次,記錄拮抗抑菌圈的大小。離心得到的3組發酵液試驗互為對照。
1.2.2 工業發酵培養基的優化
通過查閱相關文獻[10],在試驗確定的最佳培養基的基礎上,加入低濃度的MnS,以觀察混合拮抗菌發酵液A660值以及抑菌能力的變化。
1.2.2.1 最佳培養基的優化 用SPSS 19.0設計6因素3水平的正交表,隨機產生18組試驗(表1)。30℃培養24 h后測定A660值,然后取拮抗菌株發酵液做拮抗試驗,6 d后觀察抑菌圈的大小,重復3次。

表1 L18(36)正交設計 g/L
1.2.2.2 統計分析 采用SPSS 19.0進行正交試驗表格設計及方差分析。
將PT2′與QM34混合分別接入無菌牛肉膏蛋白胨培養基、無菌搖瓶種子培養基和無菌玉米粉液體培養基中,記為N組、Z組和Y組。振蕩培養24 h,測定A660值,記錄發酵液中菌數變化的結果(表2)。

表2 3種培養基發酵液的A660值
從表2可以看出,經過液體搖床發酵,Y組的吸光度值A660明顯高于Z組和N組,這說明在玉米粉液體培養基中,PT2′與QM34的混合發酵液含菌量最多。
以表2數據為基礎,假設Y組培養基中,PT2′與QM34的混合發酵液含菌量最多為正確,經過SPSS數據分析,得到表3。
從表3可以看出,N,Z,Y這3組數據的P值均小于0.01,說明根據表2推理的假設成立,且Y組的A660較N組和Z組有顯著差異,這說明Y組的發酵液中含菌量最多,即Y組較N組和Z組發酵液更適宜混合菌的生長。

表3 3種不同培養基發酵液A660值差異性檢驗
為了觀察不同培養基對混合菌液拮抗能力的影響,將培養1 d以上的PT2′與QM34的混合培養液制成無菌發酵液,做拮抗試驗,每種培養基3組重復,記錄各組的抑菌圈直徑大小(表4、圖 1)。

表4 不同培養基發酵液的抑菌效果

從表4和圖1可以看出,Y組培養基發酵液的抑菌圈大小高于N組和Z組,說明其拮抗能力顯著高于N組、Z組發酵液的拮抗能力。
由圖2可知,Y組發酵液的抑菌圈大小和吸光度均高于N組和Z組,由此可得出結論:PT2′與QM34在玉米粉液體培養基中混合培養,產生發酵液與其他2種培養基的相比,拮抗能力更強,即本試驗中玉米粉液體培養基為最優培養基,這為下一步培養基的優化提供了理論基礎。

為了進一步提高試驗確定的最優培養基——玉米粉液體培養基的抑菌效價,我們在培養基中加入少量的MnS,并用SPSS軟件對試驗數據進行正交極差分析。
2.3.1 正交結果極差分析 從表5可以看出,當極差分析中以吸光度值為指標時,各因素的影響順序為:B>A=C=D>E>F;以抑菌圈大小為指標時,各因素的影響順序為:A>F>B>E>D>C,但僅以此數據還不能分析確定各因素的影響大小,所以需對其再進行方差分析來確定。
2.3.2 正交結果方差分析 分別以吸光度值A660和抑菌圈大小為標準,用SPSS軟件進行方差分析,統計各因素對優化培養基配比影響的顯著性結果。方差分析結果如表6和表7所示。
由表6、表7分析比較得知,以吸光度A660為衡量指標,各因素水平之間并沒有顯著性差異;相比較,各因素水平對抑菌圈的影響較大,因此,在選擇水平的時候,將對抑菌圈的影響作為主要因素考慮。

表5 正交結果的極差分析

表6 依靠A660的方差分析結果
由表7可知,以抑菌圈大小為指標,因素A對拮抗菌的生長有顯著性的影響,各因素影響大小順序為:A>F>B>E>D>C,極差表中分析得到最優組合為A2B2C2D1E1F1;表6中反映的影響順序為:B>A>D>C>E>F,分析得到最優組合為:A2B3C2D2E3F1。綜合極差分析及方差分析可以得出,因素A,B,D無論是對拮抗菌的吸光度值,還是抑菌圈大小都產生了較為穩定的影響,同時,因素A,B表現出了顯著的促進作用,而因素C,E則無顯著影響,從而確定玉米粉液體培養基的最優組合為A2B3C2D2E1F1,即玉米粉150.0 g/L、糖化酶1.1 g/L、α-淀粉酶1.5 g/L、CO(NH2)25.0 g/L、KH2PO45.0 g/L。

表7 依靠抑菌圈大小的方差分析結果
本試驗通過對比,篩選出紅提葡萄白腐病拮抗菌PT2′與廣譜拮抗菌株QM34混合培養的最佳培養基,并且利用SPSS軟件的分析,確定了最佳培養基的最優組合,這為今后工業上大規模生產發酵打下了基礎。
同時通過查閱文獻,在混合菌株的培養基中加入少量的MnS,以期提高混合菌株的拮抗能力。試驗結果表明,MnS確實可以提高混合菌液的抑菌能力,但是對其中的菌量并沒有顯著影響,具體原因還有待進一步深入研究。
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