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胡黃連SRAP反應(yīng)體系的建立與引物篩選*

2011-07-26 02:29:44任李玥劉小莉
關(guān)鍵詞:體系實(shí)驗(yàn)

任李玥,劉小莉

(1.云南中醫(yī)學(xué)院中藥學(xué)院,云南昆明 650500;2.云南省食品藥品檢驗(yàn)所,云南昆明 650011)

胡黃連Neopicrorhiza scrophulariiflora(Pennell)Hong為玄參科Scrophulariaceae胡黃連屬Neopicrorhiza的多年生草本植物,分布區(qū)狹窄,特產(chǎn)東喜馬拉雅和橫斷山區(qū)[1]。根狀莖為重要的中、藏藥材,具有清濕熱,除骨蒸、消疳熱的功效[2]。由于過(guò)度采挖,資源瀕臨枯竭,作為國(guó)家二級(jí)保護(hù)植物,列入《中國(guó)珍稀瀕危保護(hù)植物名錄》中[3]。對(duì)其繼續(xù)科學(xué)保護(hù)和合理利用已刻不容緩。

相關(guān)序列擴(kuò)增多態(tài)性 (SRAP,Sequence—related Amplified Polymorphism) 是由 Li 和 Quiros[4]于2001年發(fā)展起來(lái)的一種分子標(biāo)記。其原理是針對(duì)基因外顯子中GC含量豐富,而啟動(dòng)子、內(nèi)含子中AT含量豐富的特點(diǎn)來(lái)設(shè)計(jì)兩組引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,因不同個(gè)體的內(nèi)含子、啟動(dòng)子與外顯子間隔區(qū)長(zhǎng)度不等而產(chǎn)生多態(tài)性。該標(biāo)記具有簡(jiǎn)便、高效、產(chǎn)率高、高共顯性、重復(fù)性好、易測(cè)序、便于克隆目標(biāo)片段的特點(diǎn),已成功地應(yīng)用于多個(gè)物種遺傳多樣性分析[5-6]、遺傳圖譜的構(gòu)建[7]等方面。對(duì)不同植物類(lèi)群而言,SRAP的最佳反應(yīng)條件會(huì)有所差別,本實(shí)驗(yàn)擬摸索適合胡黃連SRAP擴(kuò)增反應(yīng)的條件,為后續(xù)基于SRAP探討胡黃連的遺傳多樣性奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料

實(shí)驗(yàn)所用樣品采自西藏定日縣 (N86°26',E28°08',4248m)胡黃連幼嫩葉片,硅膠干燥后保存于-20℃。

1.2 試劑

瓊脂糖購(gòu)自GENE TECH(SHANGHAI)COMPANY LIMITED;Tris-HCl、EDTA購(gòu)自美國(guó) AMResco公司;二甲基亞砜購(gòu)自云科生物工程公司;SRAP引物由上海生物工程有限公司合成;dNTPs、RNA酶、Taq酶購(gòu)自大連寶生物工程有限公司。

1.3 儀器

Eppendorf AG離心機(jī),Biometra PCR儀,BIO-RAD凝膠成像系統(tǒng),BIO-RAD電泳儀,Bio-Photometer plus核酸蛋白測(cè)定儀,XW-80A型漩渦混合器等。

1.4 實(shí)驗(yàn)方法

1.4.1 基因組DNA提取與檢測(cè)

采用改良的CTAB法提取基因組DNA,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)DNA完整性,根據(jù)樣品OD260/OD280計(jì)算DNA純度;根據(jù)OD260值計(jì)算樣品DNA濃度,稀釋至10 ng·μL-1,保存于-20℃冰箱中。

1.4.2 正交反應(yīng)體系建立

由于本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),模板DNA在很大的一個(gè)濃度范圍內(nèi)對(duì)PCR反應(yīng)體系均無(wú)影響,因此本文未對(duì)DNA模板濃度進(jìn)行優(yōu)化,而是在20μL反應(yīng)體系中直接選用20ngDNA作為模板。參考狗牙根[5]、丹參[8]的 SRAP 反應(yīng)條件,初設(shè)dNTP、Taq酶、Mg2+、引物濃度、模板濃度各4個(gè)水平,dNTP分別為150,200,250,300μmol·L-1;Taq酶分別為 0.5,1.0,1.5,2.0U;Mg2+分別為1.5,2.0,2.5,3.0mmol·L-1;引物濃度分別為0.2,0.3,0.4,0.5μmol·L-1;模板濃度5,10,15,20ng形成5因素4水平的試驗(yàn)方案。反應(yīng)選用引物Me4Em3,反應(yīng)體系為20μL,內(nèi)含10×PCR buffer 2μL,DNA 濃度20ng,其余成分按照表1進(jìn)行,建立16個(gè)反應(yīng)組合。反應(yīng)程序?yàn)?94℃預(yù)變性5min,反應(yīng)前5個(gè)循環(huán)94℃變性1min,35℃退火1min,72℃延伸1min。之后35個(gè)循環(huán)復(fù)性溫度提高到50℃,最后延伸1min,72℃延伸5min,4℃保存。PCR產(chǎn)物在含溴化乙錠的1.8%瓊脂糖凝膠中,以0.5×TBE為電泳緩沖液電泳分離,最后用紫外成像系統(tǒng) (Tanon GIS一2009)觀察并成像 (見(jiàn)表1)。

表1 胡黃連SRAP L16(4)正交試驗(yàn)組合

1.4.3 引物篩選

引物采用Li和 Quiros[4]已發(fā)表的引物進(jìn)行兩兩配對(duì),共產(chǎn)生30對(duì)引物組合,以隨機(jī)選取的胡黃連DNA作為模板,采用正交試驗(yàn)中初選出來(lái)的反應(yīng)體系進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

1.4.4 退火溫度篩選

本實(shí)驗(yàn)設(shè)置了 30.0,30.2,30.9,32.0,33.2,34.4, 35.6, 36.8, 38.0, 39.1, 39.8,40.0℃共12個(gè)退火梯度,共進(jìn)行兩組PCR擴(kuò)增,第一組每個(gè)PCR反應(yīng)體系中加入1μL 5%的DMSO,第二組不加,作為對(duì)照。

2 結(jié)果與分析

2.1 反應(yīng)條件的建立

16個(gè)正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果從圖1可以看出,6號(hào)以及9~16號(hào)無(wú)擴(kuò)增產(chǎn)物,其余均有擴(kuò)增產(chǎn)物。其中1,2,7,8號(hào)擴(kuò)增的條帶弱,3~5號(hào)條帶較清楚,但3號(hào)和5號(hào)擴(kuò)增條帶數(shù)少,均予以淘汰。只有4號(hào)所擴(kuò)增的條帶清晰且條帶數(shù)多。因此,確定16個(gè)組合中第4號(hào)組合的體系為最理想的SRAP-PCR反應(yīng)體系。

圖1 胡黃連正交試驗(yàn)擴(kuò)增圖

2.2 引物篩選

30條引物組合中有27條引物組合能夠擴(kuò)增出片段,這27條引物組合中,有13對(duì)引物組合的擴(kuò)增片段多、清晰、重復(fù)性較好 (見(jiàn)表2),這13對(duì)引物組合可以作為胡黃連后續(xù)研究的引物。

表2 30對(duì)SRAP引物的篩選結(jié)果

2.3 退火溫度和圖譜背景優(yōu)化

從圖2可見(jiàn),在30.0~40.0℃的退火溫度下,均有擴(kuò)增,且退火溫度越高,擴(kuò)增出的條帶越少,退火溫度在30.0~33.2℃范圍內(nèi)均擴(kuò)增出比較理想的帶型。在PCR反應(yīng)體系中添加5%DMSO和不加DMSO的兩組相比較,前者的圖譜背景比不加的要清晰。

圖2 不同退火溫度對(duì)擴(kuò)增結(jié)果的影響

3 討論

影響SRAP-PCR反應(yīng)的因素相對(duì)復(fù)雜,不同植物適合的SRAP反應(yīng)體系不同,且各因素之間存在互作效應(yīng),4個(gè)因子之間的濃度配比只有達(dá)到最佳狀態(tài)時(shí),才能得到穩(wěn)定的、可重復(fù)的擴(kuò)增結(jié)果[9],本實(shí)驗(yàn)采用了一次正交實(shí)驗(yàn),即建立了適合胡黃連的SRAP反應(yīng)體系:20μL反應(yīng)體系 (含10 × buffer),dNTP150 μmol·L-1,Mg2+3.0 mmol·L-1,Taq 酶 2U,引物 0.5μmol· L-1,DNA 20ng。

Li和Quiros[4]的程序中,為了讓上、下游引物與DNA模板能部分配對(duì),最初5個(gè)循環(huán)的退火溫度較低,設(shè)置為35℃,為了提高引物擴(kuò)增的特異性,后35個(gè)循環(huán)反應(yīng)的退火溫度升50℃。由于SRAP引物具有通用性,不同種植物所用的引物組合往往相同,因此擴(kuò)增程序差異不大。本研究對(duì)PCR結(jié)果影響較大的退火溫度進(jìn)行了梯度比較試驗(yàn),篩選出了30.0~33.2℃的最佳退火溫度。

本研究對(duì)比了在瓊脂糖中添加終濃度5%的DMSO與對(duì)照組 (不加DMSO)對(duì)電泳圖譜背景清晰度的影響,結(jié)果顯示加入終濃度5%的DMSO的電泳圖譜的背景明顯清晰。據(jù)此確定SRAP反應(yīng)最終反應(yīng)體系為 20μL反應(yīng)體系 (含 10×buffer 2μL),dNTP150μmol·L-1,Mg2+3.0mmol·L-1,Taq 酶 2U,引物 0.5μmol·L-1,DNA 20ng,1μ LDMSO,無(wú)菌水補(bǔ)齊,凝膠電泳時(shí)在瓊脂糖中添加5%的DMSO。

本實(shí)驗(yàn)建立了適用于胡黃連穩(wěn)定的、重復(fù)性強(qiáng)、中等產(chǎn)率的SRAP-PCR反應(yīng)體系,并對(duì)30條引物組合進(jìn)行了初步篩選,從30對(duì)引物組合中篩選到了13對(duì)擴(kuò)增片段多、清晰、重復(fù)性較好引物組合,結(jié)果為SRAP技術(shù)應(yīng)用到胡黃連的遺傳多樣性分析中奠定了基礎(chǔ)。

[1]吳征鎰,周浙昆,李德銖,等.世界種子植物科的分布區(qū)類(lèi)型系統(tǒng) [J].云南植物研究,2003,25(3):245-257

[2]國(guó)家藥典委員會(huì).中華人民共和國(guó)藥典 (一部)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2005:167.

[3]國(guó)家環(huán)境保護(hù)局.中國(guó)珍稀瀕危保護(hù)植物名錄 (第1冊(cè))[M].北京:科學(xué)出版社,1987.

[4]LI G,QUIROS C F.Sequence-related amplified polymorphism(SRAP),a new marker system based on a simple PCR reaction:its application to mapping and gene tagging in Brassica [J].Theor Appl Genet,2001,103:455–461.

[5]楊益潔,張新全,黃琳凱,等.野生狗牙根種質(zhì)遺傳多樣性的SRAP研究 [J].遺傳,2008,30(1):94-100.

[6]王常林,郭巧生,武玉妹.明黨參遺傳多樣性的SRAP分子標(biāo)記 [J].中國(guó)中藥雜志.2009,24(34):3180-3183.

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[8]李廷春,高正良,湯志順.丹參SRAP反應(yīng)體系的建立與優(yōu)化 [J].生物學(xué)雜志,2008,25(1):40-44.

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