宋菊敏,舒 適,劉小美,宋麗娜
(上海中醫藥大學基礎醫學院,上海 201203)
胰島素抵抗引起2型糖尿病的分子機制非常復雜。某些胰島素抵抗與胰島素受體突變有關,然而大多數胰島素抵抗可能主要由靶組織(肝臟、肌肉、脂肪)的胰島素受體后信號傳導分子的缺陷所引起。磷脂酰肌醇-3-激酶(phosphatidylinositol-3-kinase,PI3K)途徑是胰島素信號傳導的主要胞內途徑,PI3K是刺激葡萄糖轉運和攝取的重要介導分子[1]。PI3K由p85調節亞基和p110催化亞基組成,其中p85調節亞基可能在胰島素信號傳導過程中起到更為重要的作用。復方黃連降糖片在臨床上有較好的降血糖作用,為進一步了解其降血糖和治療糖尿病的可能作用機制,以及p85在胰島素信號傳導中可能起到的作用,我們對此進行了研究。
選用10周齡左右的清潔級健康雌性Wistar大鼠90只,由上海復旦大學醫學院實驗動物中心提供,體重250g±20g。每籠5只,自由飲水和攝食,光照明暗周期12 h,室溫21℃±1℃,濕度50℃±10%。
鏈脲佐菌素(Streptozotocin,STZ)購自美國Sigma公司,臨用前以0.1mol/L濃度、pH 4.4檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液配制成2%濃度STZ溶液。高脂飼料配方由基礎飼料55%、豬油16%、蛋黃粉2%、綿白糖27%組成,總熱量為19.93kj/g,正常飼料總熱量為16.20kj/g。復方黃連降糖片由黃連、大黃、肉桂等中藥煎液而成。鹽酸二甲雙胍片(商品名美迪康,深圳市中聯制藥有限公司,國藥準字H44024853)用蒸餾水配成懸濁液,濃度為51.6mg/ml。
Rt-PCR所用試劑均為美國Fermentas公司產品,p85兔抗大鼠一抗為美國Santa Cruz公司產品,過氧化物酶標記的羊抗兔二抗和DAB試劑盒均為武漢博士德公司產品,PCR9600擴增儀,復日Smart View生物電泳圖像分析系統,DYCZ-24D型雙垂直電泳槽及DYY-TC型電轉移電泳槽。引物序列:p85上游引物5’-GCATCGGAGGCTTATCGG-3’,下游引物5’-GAGGGTTTGGG TGGCAGT-3’,產物長度為332bp;β-Actin上游引物5’-GTGGGGCGCCCC AGGCACCA-3’,下游引物5’-CTTCCTTAA TGTCACGCACGATTTC-3’,產物長度為540bp。
Wistar大鼠共90只,適應性飼養1周后,其中設正常組15只,其余75只按照28mg/kg體重腹腔注射2%STZ溶液。造模第14天測定空腹血糖和糖負荷2h血糖,以空腹血糖測定結果為準(7mmol/L-10mmol/L),參考2h血糖隨機分為模型組、中藥小、中、大劑量組和西藥組各13只。分組后,正常組飼以基礎飼料,其余各組均給予高脂飼料喂養。
正常組和模型組每日以2.0ml飲用水灌胃,小、中、大劑量組每日均以復方黃連降糖片煎液灌胃,其灌胃濃度分別為0.75ml(0.5g生藥/ml)、1.5ml(0.5g生藥/ml)、1.5ml(1.0g生藥/ml),分別相當于成人用量的6倍、12倍、24倍;西藥組每日以鹽酸二甲雙胍懸濁液1.0ml(51.6mg/ml)灌胃,相當于成人用量的12倍。用藥8周測定空腹血糖、糖負荷2h血糖和空腹血清胰島素后處死大鼠,取其肝臟、右側腓腸肌及大網膜脂肪備用。
1.6.1 血糖 采用葡萄糖氧化酶法測定。
1.6.2 血清胰島素 采用放射免疫雙抗體法測定。
1.6.3 p85mRNA表達 按Trizol說明書方法提取各組織總RNA,測定RNA濃度后,取2μgRNA經M-MLV逆轉錄酶逆轉錄成cDNA,進行PCR擴增。PCR反應體系為2×PCR mix12.5μl,上、下游引物各1μl(5μmol/L),反轉錄產物2μl,DEPC水8.5μl;反應條件為94℃3min;94℃40s,58℃1min,72℃1min,40個循環;72℃5min。PCR反應產物經1.2%瓊脂糖凝膠電泳,凝膠成像儀拍照,Smart View分析凝膠圖像,得出目的基因和內參基因的亮度掃描比值。
1.6.4 p85蛋白表達 各組織總蛋白的提取參照《分子克隆實驗指南》第3版[2]的蛋白提取方法,應用組織裂解液裂解各組織得到組織總蛋白。取少量用考馬斯亮藍法測定蛋白濃度。從各組織所獲蛋白樣品經8%SDS-PAGE分離,電轉膜致PVDF膜后以5%脫脂奶粉封閉,再分別與1∶200稀釋的一抗和1∶2000稀釋的二抗反應,再用DAB顯色,最后用凝膠成像儀拍照,Smart View分析顯色圖像得出掃描密度值。
所有數據均使用SPSS 11.5統計軟件進行單因素方差分析,統計結果用平均值±標準差表示。
75只大鼠造模后成模65只,另有10只未成模大鼠被剔除。65只成模大鼠被分到模型組,中藥小、中、大劑量組和西藥組各13只。
表1顯示,治療前與治療8周模型組與正常組之間空腹血糖均有顯著差異(P<0.01),治療前各組空腹血糖與模型組均無顯著差異。治療8周后各治療組空腹血糖與模型組比較均有顯著差異(P<0.01)。治療前與治療8周模型組與正常組之間比較,2h血糖均有顯著差異(P<0.01)。治療前,各組2h血糖與模型組均無顯著差異。治療8周時,中藥中劑量組與模型組比較2h血糖顯著下降(P<0.05),其他各組均未見顯著差異。
表1 各組大鼠治療前后空腹血糖和糖負荷2h血糖變化表

表1 各組大鼠治療前后空腹血糖和糖負荷2h血糖變化表
注:與正常組比較:△P<0.05,△△P<0.01;與模型組比較:*P<0.05,**P<0.01
組別 n 治療前空腹(mmol/L)治療后空腹(mmol/L)治療前2h(mmol/L)治療后2h(mmol/L)正 常 組15 5.84±1.56 5.84±0.48 6.04±0.63 6.14±0.50模 型 組 13 7.76±2.64△△ 8.58±2.17△△ 11.17±6.13△△ 10.13±4.29△△小 劑 量 組 13 7.35±1.47 6.62±1.29** 11.37±4.50 9.01±2.29中 劑 量 組 13 7.36±1.38 6.85±0.71** 10.71±2.84 7.89±0.71*大 劑 量 組 13 7.30±1.24 6.73±0.62** 10.70±3.93 10.54±4.23西 藥 組 13 7.27±1.74 6.14±0.88**10.49±3.77 8.62±1.94
表2顯示,模型組和正常組比較,大鼠血清胰島素顯著升高(P<0.05);各用藥組與模型組相比,中藥大劑量組和西藥組血清胰島素濃度顯著降低(P<0.05),其他各組僅有降低趨勢,但沒有顯著差異。
表2 各組大鼠血清胰島素變化表

表2 各組大鼠血清胰島素變化表
注:與正常組比較:△P<0.05;與模型組比較:*P<0.05
組別n血清胰島素(μU/ml)正 常 組15 38.13±21.93模 型 組 13 58.66±25.09△小 劑 量 組 13 43.81±28.07中 劑 量 組 13 39.79±15.83大 劑 量 組 13 34.57±25.21*西 藥 組 13 34.21±23.38*
表3圖1顯示,各組大鼠肝臟p85mRNA表達的變化與正常組比較,模型組p85mRNA的表達顯著減少(P<0.01);各用藥組與模型組比較,各組的p85mRNA表達均較模型組顯著升高(P<0.05)。

圖1 大鼠肝臟p85mRNA表達電泳圖
表3 各組大鼠肝臟p85基因表達變化表

表3 各組大鼠肝臟p85基因表達變化表
注:與正常組比較:△△P<0.01;與模型組比較:*P<0.05
組別 n mRNA表達(目的/內參比值)蛋白表達(密度)正 常 組60.53±0.08 1.59±0.19模 型 組 6 0.30±0.04△△ 1.13±0.14△△小 劑 量 組 6 0.45±0.16* 1.31±0.15中 劑 量 組 6 0.44±0.10* 1.33±0.15*大 劑 量 組 6 0.46±0.15* 1.33±0.16*西 藥 組 6 0.47±0.13* 1.34±0.20*
表3圖2顯示,各組大鼠肝臟p85蛋白表達的變化與正常組比較,模型組p85蛋白表達顯著減少(P<0.01);與模型組比較,中劑量組、大劑量組和西藥組p85蛋白表達顯著升高(P<0.05),小劑量組雖有升高趨勢,但無統計學意義。

圖2 大鼠肝臟p85蛋白表達電泳圖
表4圖3顯示,各組大鼠骨骼肌p85mRNA表達的變化:與正常組比較,模型組p85mRNA的表達顯著減少(P<0.01);各用藥組與模型組比較,中劑量組和西藥組的p85mRNA表達較模型組顯著升高(P<0.01,P<0.05),另外2中藥組有升高趨勢,但無統計學意義。
表4 各組大鼠骨骼肌p85基因表達變化表

表4 各組大鼠骨骼肌p85基因表達變化表
注:與正常組比較:△△P<0.01;與模型組比較:*P<0.05,**P<0.01
組別 n mRNA表達(目的/內參比值)蛋白表達(密度)正 常 組60.86±0.21 1.33±0.12模 型 組 6 0.35±0.07△△ 0.94±0.14△△小 劑 量 組 6 0.44±0.18 1.14±0.17*中 劑 量 組 6 0.69±0.25** 1.22±0.16**大 劑 量 組 6 0.58±0.26 1.18±0.15**西 藥 組 6 0.63±0.11* 1.19±0.15**

圖3 大鼠骨骼肌p85mRNA表達電泳圖

圖4 大鼠骨骼肌p85蛋白表達電泳圖
表4圖4顯示,各組大鼠骨骼肌p85蛋白表達的變化:與正常組比較,模型組p85蛋白表達顯著減少(P<0.01);與模型組比較,小劑量組p85蛋白表達顯著升高(P<0.05),中劑量組、大劑量組和西藥組升高更為顯著(P<0.01)。
表5圖5顯示,各組大鼠脂肪p85mRNA表達的變化:與正常組比較,模型組p85mRNA的表達顯著減少(P<0.001);與模型組比較,中劑量組和西藥組的p85mRNA表達顯著升高(P<0.05),另外2組有升高趨勢,但無統計學意義。

圖5 大鼠脂肪p85mRNA表達電泳圖

圖6 大鼠脂肪p85蛋白表達電泳圖
表5 各組大鼠脂肪p85基因表達變化表

表5 各組大鼠脂肪p85基因表達變化表
注:與正常組比較:△△P<0.01;與模型組比較:*P<0.05,**P<0.01
組別 n mRNA表達(目的/內參比值) 蛋白表達(密度)正 常 組60.80±0.16 1.50±0.03模 型 組 6 0.50±0.07△△ 1.16±0.07△△小 劑 量 組 6 0.58±0.14 1.25±0.16中 劑 量 組 6 0.66±0.10* 1.33±0.06*大 劑 量 組 6 0.58±0.07 1.38±0.06**西 藥 組 6 0.65±0.08* 1.41±0.11**
表5圖6顯示,各組大鼠脂肪p85蛋白表達的變化:與正常組比較,模型組p85蛋白表達顯著減少(P<0.001);與模型組比較,中劑量組、大劑量組和西藥組p85蛋白表達顯著升高(P<0.05,P<0.01),小劑量組有升高趨勢,但無統計學意義。
PI3K由含SH2區的p85調節亞基和具有酶活性的p110催化亞基組成。在胰島素的刺激下,胰島素受體與胰島素受體底物(insulin receptor substrate,IRS)結合并使其活化,隨后p85亞基通過SH2結構域與IRS相結合,當2個SH2結構均被磷酸化后,p110的活性達到最大。P110被激活后,催化一系列磷酸肌醇磷酸化,從膜磷脂中產生磷脂酰肌醇-3,4,5-三磷酸,后者作為胰島素的第二信使,與含有PH區段的下游分子結合將信號下傳,調節肌細胞、脂肪細胞和肝細胞對葡萄糖的攝取以及糖原合成、抗脂肪分解等其他多種生物學效應[3]。
復方黃連降糖片是上海名老中醫的經驗方,由黃連、大黃、肉桂組成,以清熱瀉火為主,兼有活血化瘀之功效,加肉桂能制黃連和大黃之苦寒,防止苦寒傷陰,又能引火歸元,使陰平陽秘,達到陰陽平衡。三藥配伍,使火熱得清,津液得存,又無苦寒傷陰之弊。我們以往的實驗已證實,其對糖尿病動物模型有良好的降糖、調脂作用,并能降低血清胰島素水平,升高KK小鼠肝臟、脂肪細胞InsRmRNA的表達以及脂肪、骨骼肌細胞GLUT4mRNA的表達[4、5]。為更進一步了解其降糖、改善胰島素抵抗的分子機制,我們對2型糖尿病大鼠不同組織中p85基因表達的變化進行了研究。
本次實驗中,模型大鼠出現高血糖、高胰島素血癥等典型2型糖尿病胰島素抵抗癥狀,提示我們用小劑量STZ合并高脂飲食造模是成功的。此外,實驗動物不同組織的p85亞基,無論是其mRNA或是蛋白,在2型糖尿病模型中的表達均顯著較正常對照組減少。p85作為PI3K的主要組成部分及p110與IRS間的橋梁,其表達缺陷可能造成胰島素信號傳導PI3K途徑的障礙,使胰島素的信號在細胞內的傳遞減少或者減慢,最終引起高血糖和高胰島素血癥等糖尿病胰島素抵抗癥狀。在用復方黃連降糖片等藥物干預治療后,在糖尿病癥狀顯著改善的同時,2型糖尿病模型大鼠肝臟、骨骼肌與脂肪組織中的p85亞基的表達均有顯著提高,其中以蛋白表達的改善更為顯著,同時3個組織當中又以骨骼肌p85基因的表達提高最為顯著。以上結果提示,該復方對2型糖尿病胰島素抵抗的治療作用可能與它們能提高不同組織中p85基因的表達而改善胰島素的信號傳導有關。
[1]金 丹,陸付耳.PI3-K在2型糖尿病發病機制中的作用[J].醫學綜述,2007,13(1):21-23.
[2]J薩姆布魯克,E F弗里奇,T曼尼阿蒂斯.分子克隆實驗指南[M].金冬雁,黎孟楓,張 勵,等譯.第2版.北京:科學出版社,1993.881-887.
[3]楊亞超,周玉萍,王顏剛.胰島素抵抗的信號傳導障礙[J].中國臨床康復,2004,8(30):6747-6749.
[4]劉小美,宋菊敏,劉麗瓊,等.復方黃連降糖片對2型糖尿病模型大鼠肝臟低密度脂蛋白受體基因表達的影響[J].山東中醫雜志,2006,25(1):838-841.
[5]宋菊敏,劉小美,孔祥亮,等.復方黃連降糖片(糖尿寧)治療2型糖尿病闡析[J].上海中醫藥雜志,2008,42(5):24-25.