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高效液相色譜法測定南瓜中β-胡蘿卜素和VE的含量*

2010-11-02 06:26:19田密霞胡文忠霍曉雪王艷穎姜愛麗劉程惠范圣第
食品與發酵工業 2010年12期
關鍵詞:實驗

田密霞,胡文忠,霍曉雪,王艷穎,姜愛麗,劉程惠,范圣第

(大連民族學院生命科學學院生物技術與資源利用國家民委—教育部重點實驗室,遼寧大連,116600)

高效液相色譜法測定南瓜中β-胡蘿卜素和VE的含量*

田密霞,胡文忠,霍曉雪,王艷穎,姜愛麗,劉程惠,范圣第

(大連民族學院生命科學學院生物技術與資源利用國家民委—教育部重點實驗室,遼寧大連,116600)

采用高效液相色譜法同時測定新鮮南瓜與經冷凍干燥處理后南瓜中β-胡蘿卜素和VE的含量。結果表明:β-胡蘿卜素濃度在1~6μg/mL內線性關系良好,VE的濃度在0.375~2.25μg/mL內線性關系良好。南瓜鮮肉中β-胡蘿卜素和VE的平均回收率分別為100.78%(RSD=0.12%)和99.75%(RSD=0.3%),南瓜鮮皮中β-胡蘿卜素和VE的平均回收率分別為100.43%(RSD=0.27%)和99.25%(RSD=0.16%),而在凍干南瓜肉中β-胡蘿卜素和VE的平均回收率分別為100.62%(RSD=0.44%)和99.71%(RSD=0.15%),在凍干南瓜皮中β-胡蘿卜素和VE的平均回收率分別為100.11%(RSD=0.13%)和99.75%(RSD=0.07%)。

南瓜,β-胡蘿卜素,VE,高效液相色譜

南瓜營養豐富且全面,含人體全部必需氨基酸、多糖、果膠及礦物質,而且南瓜中富含大量的β-胡蘿卜素和豐富的維生素[1-2]。吳增茹[3]等人測定了不同品種南瓜中β-胡蘿卜素的含量,但很少有報道采用HPLC法測定南瓜中VE的含量。本實驗在比較了趙文恩等[4-6]人的方法后,并加以改進,采用高效液相色譜(HPLC)法,同時測定市售南瓜肉和南瓜皮中β-胡蘿卜素和VE的含量,節省了大量的資金和時間,以期為南瓜的日后的進一步開發提供一定的依據。

1 材料和方法

1.1 主要儀器設備

高效液相色譜儀:日本鳥津,二極管陣列檢測器,柱前加預柱保護;Labda-250型紫外可見分光光度計:美國PE;電子天平:上海 梅特勒-托利多;微型細胞破碎儀:USA SONICS VC×130;粉碎機:廣州。

1.2 實驗試劑與材料

1.2.1 試劑

分析純三氯甲烷:沈陽市華東試劑廠;色譜純甲醇:德國默克;水為經純水裝置進行去離子后的雙蒸水,之后進行微孔濾膜過濾得到后備用;標準β-胡蘿卜素:Sigma Fluka;VE:USA SUPELCO。

1.2.2 材料

鮮南瓜采購于大連開發區樂購超市,其成熟度、大小、顏色、形狀一致,無病蟲害。

1.3 實驗方法

1.3.1 樣品制備

(1)凍干皮:取鮮南瓜不同部位的表皮,切碎、混勻,稱取約100 g真空冷凍干燥,凍干樣品磨碎,過40目篩,干粉至于樣品瓶中,在干燥器中避光保存。

精確稱取干粉樣品0.2g,加入5mL三氯甲烷,用細胞破碎器2 s+3 s破碎3 min。用移液槍取下面的清液1mL于10mL棕色容量瓶中,再用甲醇定容。經0.45 μm微孔有機濾膜過濾后,外標法進行HPLC分析,全部操作均在避光下進行。

(2)鮮皮:取南瓜不同部位的表皮,切碎,混勻,稱取1.0 g加入15mL三氯甲烷,勻漿,離心(4℃,6 000 r/min,5 min),用移液槍取上清液1mL于10mL棕色容量瓶中,再用甲醇定容。經0.45μm微孔濾膜過濾后,外標法進行HPLC分析,全部操作均在避光下進行。

(3)取0.4 g凍干肉(其他步驟及試劑用量同凍干皮)和取3 g鮮肉(其他步驟及試劑用量同鮮皮)分別測定南瓜凍干肉和鮮肉中β-胡蘿卜素和VE的含量。

1.3.2 標準溶液的制備

取2.5μgβ-胡蘿卜素標準品(Sigma)用5mL 三氯甲烷溶解,轉移到50mL棕色容量瓶中,再用甲醇定容。

取1.9μgVE標準品用10mL三氯甲烷溶解,轉移到100mL棕色容量瓶中,再用甲醇定容。

1.3.3 最佳檢測波長的確定

使用Labda-250型紫外可見分光光度計在190~500 nm,對南瓜樣品溶液進行光譜掃描,選取流動相中β-胡蘿卜素和VE的最大吸收波長作為檢測波長。

1.3.4 色譜分析條件色譜柱

Hypersil ODS C18(4.6 mm ×250 mm i.d.5μm);流動相:甲醇;檢測器:DIODE ARRAY DET-ECTOR;進樣法:手動進樣,進樣體積20μL。

1.3.5 標準曲線的繪制

分別取等量的β-胡蘿卜素和VE標準樣50、100、150、200、250、300 μ L 于 10mL 棕色容量瓶中,稀釋成梯度濃度(表1),經0.45 μm微孔濾膜過濾后,在1.3.4色譜條件下檢測,每種濃度重復進樣5次,以質量濃度為橫坐標,平均峰面積為縱坐標繪制標準曲線(分析過程中,未分析標準液于5℃冷藏備用)。

表1 β-胡蘿卜素和VE標準液濃度

1.3.6 樣品的測定

取南瓜樣品按照1.3.1方法制備供試液,按照1.3.4色譜條件進行檢測,重復進樣5次,記錄峰面積,取平均值,利用標準曲線計算各樣品中β-胡蘿卜素和VE的含量。

2 結果與分析

2.1 吸收波長的選擇

使用Labda-250型紫外可見分光光度計在(190~500)nm波長內,在對南瓜對照品溶液進行光譜掃描。掃描結果表明,流動相中南瓜樣品中VE最大吸收波長為 292nm,β-胡蘿卜素最大吸收波長為450nm。

2.2 標準曲線繪制

圖1,圖2表明,進樣 20μL,南瓜中 β-胡蘿卜素在1~6μg/mL同時VE質量在0.375~2.25μg范圍內,峰面積與質量濃度有很好的線性關系。β-胡蘿卜素回歸方程為y=110.7x-31.684,R2=0.999 5;VE回歸方程為y=110.7x-31.684,R2=0.999 5。圖3,圖4分別為β-胡蘿卜素標準樣品和VE標準樣品色譜圖,β-胡蘿卜素出峰時間為35.531min,VE出峰時間9.016min。

圖1 β-胡蘿卜素含量測定的工作曲線

圖2 VE含量測定的工作曲線

圖3 β-胡蘿卜素標準樣品色譜圖

圖4 VE標準樣品色譜圖

2.3 不同提取溶劑的比較

按1.3.1方法V(三氯甲烷)∶V(甲醇)=10∶90、V(甲醇)∶V(正己烷)=80∶20、三氯甲烷3種溶劑進行試驗(平行3組),結果表明,三氯甲烷作為提取劑β-胡蘿卜素出峰不明顯,V(甲醇)∶V(正己烷)=80∶20作為提取劑雜峰較多,而甲醇作為提取劑β-胡蘿卜素和VE在出峰時間上不沖突且各自出峰均較明顯,因而最終選擇V(三氯甲烷)∶V(甲醇)=10∶90作為提取劑。

2.4 樣品的定量分析

2.4.1 β-胡蘿卜素的定量分析

對于β-胡蘿卜素的定量分析,本文采用標準β-胡蘿卜素的三氯甲烷-醇溶液做外標,利用β-胡蘿卜素的標準曲線求出樣品中β-胡蘿卜素響應峰的相應濃度,從而求出樣品中β-胡蘿卜素的含量,結果如表3所示。從表3中可知,凍干南瓜皮中含有極其豐富的β-胡蘿卜素,達789.86μg/g,而經過冷凍干燥處理的南瓜肉中 β-胡蘿卜素的含量則明顯減少,只有176.73μg/g,這一發現希望對今后南瓜皮的進一步開發提供一定的依據。

表3 β-胡蘿卜素的定量分析結果

2.4.2 VE的定量分析

對于VE的定量分析,本文同對β-胡蘿卜素的定量分析采用了相同的方法。結果顯示(表4),鮮南瓜肉中VE的含量最多,達265.66μg/g,經過冷凍干燥處理后的南瓜中,無論是皮還是肉中VE的含量明顯較少,這可能與VE較敏感,易氧化有關系,與空氣中的氧化劑、紫外線接觸越長時間,氧化越明顯[9]。

表4 VE的定量分析結果

2.5 方法精密度實驗

從表5的數據可以看出每一個RSD值均在允許誤差范圍內,實驗精密度良好,實驗數據可靠。

2.6 穩定性試驗

由于每次進樣間隔是1 h,并且所配溶液在低溫、避光保存,溶液性質較穩定,故可依據2.5精密度實驗來分析本次實驗的穩定性。顯然,由表5可以看出,本次試驗結果穩定性較好,只要注意保存條件(低溫、避光、密封)即可較長時間保持其性質不改變。

表5 方法精密度實驗結果

2.7 加標回收率實驗

精確吸取5份已知濃度(β-胡蘿卜素6.318 9μg/mL和VE1.423 2μg/mL)的凍干南瓜皮試液各1mL,分別加入1mL各混合標準溶液,再定容到10mL,按1.3.4色譜條件下進行檢測,測定峰面積,計算樣品平均回收率及相對標準偏差(RSD)。每個樣品測定5次。

GE 6只以凍干南瓜皮中的β-胡蘿卜素加標回收率實驗結果為例。

表6 凍干南瓜皮β-胡蘿卜素加標回收率實驗結果(n=5) C0=0.63μg/mL

從表6可以看出,在實驗過程中,實驗數據精密度和加標回收率都比較符合要求,實驗結果可信。

3 討論

3.1 檢測波長的選擇

通過對南瓜混合標準品(對照組)的光譜掃描圖(圖1)可以看出,南瓜β-胡蘿卜素在450nm處有最大吸收,VE在292nm處有最大吸收,故選擇450nm進行計算分析南瓜β-胡蘿卜素含量,選擇292nm處的色譜圖進行計算分析南瓜VE含量。

3.2 流動相的選擇

實驗過程中曾用以下種流動相:V(甲醇)∶V(正己烷)=90∶10;V(甲醇)∶V(正己烷)=80∶20;V(甲醇)∶V(水)=80∶10;V(甲醇)∶V(水)=80∶20;純甲醇相。實驗發現,甲醇與其他溶劑結合的流動相分離效果都不理想,只有使用純甲醇作為流動相時,β-胡蘿卜素和維生素分離效果好。

3.3 樣品含量的測定

由南瓜β-胡蘿卜素和VE混合標準品的色譜圖可以看出β-胡蘿卜素的保留時間為35.531min左右,VE的保留時間為9.016min左右。由于β-胡蘿卜素和VE的吸收峰附近極少出現雜峰,故使用外標法即可。

4 結論

本文建立了同時測定南瓜中的β-胡蘿卜素和VE的液相色譜方法。采用甲醇為流動相,能將β-胡蘿卜素和VE很好的分離。南瓜鮮肉中β-胡蘿卜素和VE的平均回收率分別為100.78%(RSD=0.12%)和99.75%(RSD=0.3%),南瓜鮮皮中 β-胡蘿卜素和VE的平均回收率分別為100.43%(RSD=0.27%)和99.25%(RSD=0.16%),而在凍干南瓜肉中β-胡蘿卜素和VE的平均回收率分別為100.62%(RSD=0.44%)和99.71%(RSD=0.15%),在凍干南瓜皮中β-胡蘿卜素和VE的平均回收率分別為100.11%(RSD=0.13%)和99.75%(RSD=0.07%)。回收率較高。

前處理方法采用加入溶劑三氯甲烷后,用細胞破碎器2s+3s破碎3min。若樣品的分離度不好再離心后,取清液1mL于10mL棕色容量瓶中,用甲醇定容。經0.45μm微孔有機濾膜過濾后,外標法進行HPLC分析,全部操作均在避光下進行。該處理方法操作簡單,而且時間短,既有效地減少了處理過程中β-胡蘿卜素和VE的損失,又提高了檢測的準確性。為以后同時分析同時其他樣品中的β-胡蘿卜素和VE奠定了一定的基礎。

[1]Yong-Kong-Park,Hwan-Soo-Cha,Mee-Weon-Park,et al.Chemical components in different parts of pumpkin[J].Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition,1997,26(4):639-646.

[2]Gyu-Seong Cho.Chemical composition of the green and ripened pumpkin(Cucurbita moschata Duch.)[J].Korean Journal of Food Science and Technology,1997,29(4):657-662.

[3]吳增茹,金同銘.用高效液相色譜法測定不同品種南瓜中的 β-胡蘿卜素的含量[J].華北農學報,1998,13(3):141-144.

[4]趙文恩,張勁強,喬憲生,等.高效液相色譜法測定蘋果果皮的類胡蘿卜素[J].果樹學報,2001,18(2):95-97.

[5]李靜娜,朱其明,肖永華.二極管陣列反向高效液相色譜法測定人血清中VE的含量[M].中國衛生檢驗雜志,2008.18(2):259-260.

[6]Katrangi N,Kaplan L A,Stein E A.Separation and quantitation of serumβ-carotene and other carotenoids by high performance liquid chromatography[J].Journal of Lipid Research,1984,25:400-406.

[7]曹紅翠.反向高效液相色譜法測定VE中α—E含量[J?.光譜實驗室,2009,26(2):351-353.

Method of HPLC to Determine β-Carotene and VEcontent in Pumpkin

Tian Mi-xia,HuWen-zhong,Huo Xiao-xue,Wang Yan-ying,Jiang Ai-li,Liu Cheng-hui,Fan Sheng-di
( Key Laboratory of Biotechnology & Bioresources Utilization,The State Ethnic Affairs Commission -Ministryf Education,College of Life Science,Dalian Nationalities University,Dalian 116600,China)

Using HPLC method determine the content of β-carotene and VEin fresh pumpkin and pumpkin by freeze-drying treatment in the same time.The results showed that the calibration curve was good linear regression in the range of(1~6)μg/mL for β-carotene and(0.375~2.25)μg/mL for VE.In fresh pumpkin pulp,the average recoveries of β-carotene and VEare 100.78%(RSD=0.12%)and 99.75%(RSD=0.3%).In fresh pumpkin peel,the average recoveries of β-carotene and VEare 100.43%(RSD=0.27%)and 99.25%(RSD=0.16%)respectively.But in pumpkin by freeze-drying pulp the average recoveries of β-carotene and VEare 100.62%(RSD=0.44%)and 99.71%(RSD=0.15%)respectively.In pumpkin by freeze-drying peel,the average recoveries of βcarotene and VEare 100.11%(RSD=0.13%)and 99.75%(RSD=0.07%)respectively.The method is simple,high precision and good repeatability,and provides a reliable scientific basis for pumpkin in determining β-carotene and VE in the same time.

pumpkin,β-carotene,VE,HPLC

碩士,工程師(胡文忠教授為通訊作者)。

*國家自然科學基金資助(30771508,20972038)資助

2010-05-27,改回日期:2010-09-24

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