替米沙坦對胰島素抵抗OLETF大鼠血清單核細胞趨化蛋白1表達的影響

姚瑞棟 田鳳石 雒 瑢 趙紫琴 鄭喜蘭

胰島素抵抗（IR）是一種慢性亞臨床炎癥過程[1]。多種炎性細胞因子能影響血糖濃度，可能是IR的啟動因素。單核細胞趨化蛋白-1（MCP-1）正是重要的炎癥趨化因子之一，本研究旨在觀察血管緊張素Ⅱ1型（AT1）受體阻滯劑替米沙坦對IR大鼠炎癥因子表達的影響，并探討AT1受體阻滯劑改善IR新的可能機制。

1 材料與方法

1.1 材料 （1）實驗動物：OLETF（otsuka long－evans tokushima fatty）SPF 級雄性大鼠 20只，4周齡，體質量 150～200 g，購自日本大冢研究所。（2）飼料：大鼠標準飼料、高脂飼料，購自中國醫學科學院放射醫學研究所。（3）儀器與試劑：全自動生化分析儀（德國ROCHE MODULAR SWA公司）；Stat-Fax 2100型酶標儀（美國Awareness公司）；血糖儀（美國強生醫療器材有限公司）；ELISA試劑盒（美國Calabasas公司）；替米沙坦（北京萬生藥業有限責任公司）。

1.2 方法

1.2.1 造模與分組 所有大鼠予以高脂飼料分籠喂養（2～4只/籠），自由攝水，明暗周期為 12 h（7：00～19：00），溫度控制在（23±2）℃，相對濕度（55±5）%，高脂喂養 8周后隨機均分為2組：模型組（MX）大鼠一直以高脂飼料喂養；替米沙坦組（MT）大鼠在高脂喂養32周后，體質量均大于560 g，成功建立了IR動物模型[2]，后用替米沙坦[5 mg/（kg·d）]于每天8：00左右灌胃1次，共干預16周。48周后所有大鼠禁食12 h，用毛細玻璃管于眼內眥靜脈竇采血3 mL，并測空腹血漿葡萄糖（FBG），離心血清后測胰島素（FINS）水平。

1.2.2 指標檢測 游離脂肪酸（FFA）、FINS、MCP-1采用ELISA法[3]測定；FBG采用葡萄糖氧化酶法[4]測定；血脂采用全自動生化分析儀測定；HOMA-胰島素抵抗指數（HOMAIRI）=（FINS×FBG）÷22.5[5]。

1.3 統計學方法 采用SPSS 15.0統計軟件處理，計量資料以±s表示，組間比較采用t檢驗，相關分析采用Pearson相關，以P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 2組 FBG、FINS、HOMA-IRI及 MCP-1結果比較 MT組大鼠行替米沙坦干預16周后，FBG、FINS、HOMA-IRI及MCP-1水平均顯著低于 MX組，差異有統計學意義（P<0.05），見表1。

表12 組大鼠FBG、FINS、HOMA-IRI及MCP-1 比較 （±s）

表12 組大鼠FBG、FINS、HOMA-IRI及MCP-1 比較 （±s）

觹P ＜ 0．05

組別n HOMA-IRI MX MT t 10 10 FBG(mmol/L)15.90±7.11 9.98±5.85 2.90*FINS(mIU/L)28.96±9.49 15.87±4.11 3.95*19.31±8.78 6.55±4.21 4.15*MCP-1(ng/L)43.90±6.73 34.65±7.60 2.88*

2.2 替米沙坦干預對IR大鼠FFA、血脂等的影響 MT組大鼠在替米沙坦干預16周后，FFA、低密度脂蛋白（LDL）、三酰甘油（TG）、膽固醇（TC）均明顯低于MX組，差異有統計學意義（P<0.05），高密度脂蛋白（HDL）則高于MX組，差異有統計學意義（P<0.05），見表 2。

表2 2組大鼠FFA及血脂水平比較 （±s）

表2 2組大鼠FFA及血脂水平比較 （±s）

觹P ＜ 0．05

組別n MX MT t 10 10 FFA(μg/L)5.32±1.84 2.85±0.68 3.97*LDL(mmol/L)1.72±0.46 0.86±0.33 5.65*TG(mmol/L)2.11±0.44 1.25±0.32 4.42*TC(mmol/L)3.48±0.98 2.55±1.18 7.47*HDL(mmol/L)2.11±0.71 2.75±0.39 2.49*

2.3 HOMA-IRI影響因素的相關分析 MCP-1與HOMA-IR、FFA、TC、TG、LDL、FINS 均呈正相關，差異有統計學意義（P<0.05），與HDL、FBG無相關性，差異無統計學意義（P>0.05），見表3。

表3 HOMA-IRI影響因素的相關分析結果

3 討論

OLETF大鼠自發持續高血糖動物模型，特點為多食、體質量易急劇增加、易患高胰島素血癥、高TG血癥及高血糖癥。IR是大鼠發生2型糖尿病過程中的一個重要的病理生理過程，與人類2型糖尿病發生發展進程相似。Leinonnen等[6]證明IR患者MCP-1、CRP、IL-6及TNF-a等炎癥因子水平較正常對照組明顯升高，認為細胞因子介導的炎癥反應與IR發病過程密切相關，在IR的發病機制中起誘導作用。

本研究中,經替米沙坦處理后大鼠HOMA-IRI、FFA、TG、TC及LDL水平均明顯降低，HDL水平明顯增高，提示替米沙坦改善IR的作用與其對血脂的調節有關，機制與調節細胞脂肪因子有關[7]；相關分析中 OLETF大鼠血清MCP-1水平與FINS、HOMA-IRI、FFA、TC、TG 及 LDL 均呈正相關，提示MCP-1水平與IR發生密切相關，上述因子共同參與了IR發生發展過程；替米沙坦組OLETF大鼠血清MCP-1表達水平顯著低于模型組，提示替米沙坦通過抑制IR大鼠血清MCP-1的表達改善機體IR。MCP-1是一種胰島素反應因子,其誘發IR的可能機制：（1）胰島素促進MCP-1的表達和分泌。Sell等[8]研究發現MCP－1下調成熟脂肪組織中的脂蛋白脂酶（LPL）及其他脂肪來源基因表達，抑制了脂肪細胞對外源性脂質的攝入，促進細胞內脂肪分解，使FFA水平升高，同時促進脂肪組織中炎癥反應的發生，激活核因子－κB（NF－κB），NF－κB 的激活又使MCP－1表達上調，從而導致單核／巨噬細胞的活化聚集及浸潤，促進了炎癥過程的發生、發展。（2）MCP-1抑制胰島素介導的組織對葡萄糖攝取，導致機體糖代謝障礙。Sartipy等[9]在3T3-L1脂肪細胞株中加入MCP-1（1 ng/mL）孵化6 h，發現脂肪細胞對葡萄糖基礎攝取率下降了25%。（3）MCP-1與其他因子共同作用促進IR的發生。Piemonti等[10]發現瘦素（leptin）、腫瘤壞死因子（TNF）-α 與 IR 的密切關系可能是通過誘導產生大量MCP-1而進行調節的。

因此，MCP-1水平過度表達與IR密切相關，長期應用替米沙坦能有效改善IR，其機制與其抑制血清因子MCP-1的表達，調節血脂有關，目前針對降低IR的治療，尚無特異性的治療手段，而替米沙坦具有降低FFA、改善血脂及抑制機體炎癥反應的雙重作用，可成為IR防治新的干預靶點。

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